The objective of this study was to examine the effect of amides as a cryoprotectant for semen cryopreservation in Korean Jeju Black Bull. The semen was cryopreserved with extenders containing 5% dimethyl acetamide (DMA), 5% dimethyl formamide (DMF), 5% methyl formamide (MF) or 7% glycerol. Post-thawed sperm were evaluated for sperm motility, viability, acrosome integrity and membrane integrity. Post-thawed sperm motility was significantly higher (p<0.05) in glycerol and DMF ($64.00%{\pm}9.62$ and $59.00%{\pm}5.48$, respectively) than DMA and MF ($50.00%{\pm}3.24$ and $44.00%{\pm}4.18$, respectively). Sperm viability wassignificantly higher (p<0.05) in glycerol and DMF ($58.25%{\pm}7.35$ and $53.05%{\pm}3.77$, respectively) than others. However, for sperm motility and viability, there were no differences among glycerol and DMF. Also, swelling sperm ratio by hypo-osmetic selling test (HOST) was significantly increased (p<0.05) in glycerol and DMF treatments ($45.12%{\pm}25.08$ and $44.95%{\pm}8.58$, respectively). The percentage of capacitated sperm assessed by CTC staining, F pattern was lower (p<0.05) in DMF than others. B pattern was increased (p<0.05) in DMA, DMF and MF when compared with glycerol. AR pattern ratio was decreased (p<0.05) in glycerol and DMF when compared with DMA and MF. These results suggested that amides performed better and could be used as a cryoprotectant for semen freezing of Korean Jeju Black Bull.
Park, Seol-Hwa;Shin, Sang-Min;Yang, Byoung-Chul;Kim, Nam-Young;Woo, Jae-Hoon;Shin, Moon-Cheol;Yoo, Ji-Hyun;Son, Jun-Kyu
Journal of Embryo Transfer
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v.33
no.1
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pp.17-22
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2018
This study was conducted to determine the effect of pentoxifylline levels on sperm motility, survival rate, sperm membrane integrity of frozen semen and fresh-extended equine semen in Jeju cross-bred horses. As a result of sperm characteristic comparison depending on pentoxifylline levles at 30 minutes post-thaw, the progressive motilities were $53.25{\pm}2.87$ (4mM pentoxifylline) and $50.28{\pm}2.14$ (8mM pentoxifylline) and significantly higher compared to the control group($40.09{\pm}5.15$) and other treatment group (16mM pentoxifylline, $41.27{\pm}2.82$). The progressive fast motility were $22.44{\pm}1.62$ (4mM pentoxifylline,) and $22.74{\pm}3.07$ (8mM pentoxifylline) and significantly higher compared to the control group ($13.47{\pm}1.48$) and other treatment group (16mM pentoxifylline, $14.66{\pm}3.68$) (p<0.05). As a result of sperm characteristic comparison depending on pentoxifylline levles at 30 minutes post-thaw were $68.96{\pm}1.64$ (4mM pentoxifylline) and $67.90{\pm}6.72$ (8mM pentoxifylline) and significantly higher compared to the control group ($53.48{\pm}4.84$) and other treatment group (16mM pentoxifylline, $58.14{\pm}2.65$) (p<0.05). In conclusion, these results suggest that treatment groups with 4mM and 8mM pentoxifylline were higher compare to equine seperm mobility and the control group and treatment groups with more than 16mM pentoxifylline has a negative effect on sperm characteristics. After thawing, the total motility in post-thawed equine sperm has increased by 10 percent for 1 hour. these results suggest that pentoxifylline contributes to the improvement of the equine sperm motility and characteristics in post-thawed semen.
The beneficial effect of glycerol as a cryoprotectant, especially for sperm cryopreservation, has been shown in many studies. However, glycerol is toxic to living cells, and boar sperm in particular show greater sensitivity to glycerol than sperm from other domestic animals. Amides have been studied as alternative cryoprotectants for freezing stallion sperm. Sperm frozen in methylformamide or dimethylformamide as cryoprotectants show similar motility when thawed compared with sperm frozen in glycerol. We evaluated the cryoprotective effects of dimethylformamide on boar sperm freezing. To test the effect of amides, the concentration of boar semen was adjusted to $10^9sperm/mL$, and seminal plasma was removed using Hulsen solution. After centrifugation, the pellet was diluted in modified-Modena B extender. Lactose-egg yolk (LEY) extender was used as the cooling extender. The freezing extender was madeed aaddition of the optimal amount of glycerol and amides to LEY-Glycerol-Orvus ES Paste extender, and this extender was used for the second dilution. Diluted sperm were frozen in liquid nitrogen using the 0.5 mL straw method. Sperm frozen in extender with glycerol as a cderol were compared with those frozen in extender including the different amides. Sperm were tested for motility, viability, the sperm chromatin structure assay, and normal apical ridge after thawing. The percent of motile sperm diluted in glycerol was as high as that in the stallion study (61%). Dimethylformamide showed positive effects on sperm quality and was better than glycerol. Methylformamide provided similar sperm quality as glycerol. Therefore, dimethylformamide is useful for reducing cryoinjury in boar sperm and is expected to be useful as an alternative cryoprotectant.
Cryopreservation is commonly used for an efficient utilization of semen, oocytes and embryos but has disadvantage in the survival, development of the post-thawed eggs. The high risk in the survival, development of eggs after thawing is thought to be caused by inappropriate internal regulation of $Ca^{2+}$ and/or formation of intracellular ice crystals. In this experiment, we tested whether the $Ca^{2+}$ current (iCa), a decisive factor to $Ca^{2+}$ entry, was altered in post-thawed oocytes by using whole cell voltage clamp technique. The quality and survival rates of the oocytes derived from both fresh and frozen groups were examined by morphology and FDA-test. Vitrified oocytes (VOs) were incubated for 4 hr after thawing and then donated to this experiment. Ethyleneglycol-ficoll-galactose (EFG) was used as a cryoprotectant for vitrification. The membrane potential was held at -80 mV and step depolarizations of 250 ms were applied from -50 mV to 50 mV in 10 mV increments. The survival rates showed a higher in VOs vitrified with EFG containing $Ca^{2+}$ than in VOs vitrified with EFG under the $Ca^{2+}$-free condition (82.0% vs 14%). In group with/without $Ca^{2+}$, the survival rates were significantly (P<0.01) difference. In the fresh metaphase II oocytes (FOs), current-voltage (I-V) relationship showed that iCa began to activate at -40 mV and reached its maximum at -10 mV. With same voltage pulses, inward currents were elicited in VOs. I-V relationships observed in VOs were similar to those in FOs. Time constants of activation and inactivation of the inward current shown in VOs were not different to those in FOs. This accordance in I-V relations and time constants in FOs with those in VOs indicates that the inward currents in FOs are unaltered by vitrification and thawing. Therefore, vitrification with EFG does not play as a factor to deteriorate $Ca^{2+}$ entry across the membrane of the oocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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