All viruses have few genes relative to their hosts. Viruses, thus, utilize many host factors for efficient viral replication in host cell. Virus-host interactions are crucial determinations of host range, replication, and pathology. Host factors participate in most steps of positive-strand RNA virus infection, including entry, viral gene expression, virion assembly, and release. Recent data show that host factors play important roles in assembling the viral RNA replication complex, selecting and recruiting viral RNA replication templates, activating the viral complex for RNA synthesis, and the other steps. These virus-host interactions may contribute to the host specificity and/or pathology. Positive-strand RNA viruses encompass over two-thirds of all virus genera and include numerous pathogens. This review focuses on the importance of host factors involved in positive strand plant RNA virus genome replication.
Potato virus X (PVX) is a flexuous rod-shaped virus containing a single plus-strand RNA. Viral RNA synthesis is precisely regulated by regulatory viral sequences and by viral and/or host proteins. RNA sequence element as well as stable RNA stem-loop structure in the 5' end of the genome affect accumulation of genomic RNA and subgenomic RNA (sgRNA). The putative sgRNA promoter regions upstream of the PVX triple gene block (TB) and coat protein (CP) gene were critical for both TB and CP sgRNA accumulation. Mutations that disrupted complementarity between a region at the 5' end of the genomic RNA and the sequences located upstream of each sgRNA initiation site is important for PVX RNA accumulation. Compensatory mutations that restore complementarity restored sgRNA accumulation levels. However, the extent of reductions in RNA levels did not directly correlate with the degree of complementarity, suggesting that the sequences of these elements are also important. Gel-retardation assays showed that the 5' end of the positive-strand RNA formed an RNA-protein complex with cellular proteins, suggesting possible involvement of cellular proteins for PVX replication. Future studies on cellular protein binding to the PVX RNA and their role in virus replication will bring a fresh understanding of PVX RNA replication.
Turnip yellow mosaic virus (TYMV) is a spherical plant virus that has a single 6.3 kb positive strand RNA as a genome. In this study, RNA1 sequence of Flock house virus (FHV) was inserted into the TYMV genome to test whether TYMV can accommodate and express another viral entity. In the resulting construct, designated TY-FHV, the FHV RNA1 sequence was expressed as a TYMV subgenomic RNA. Northern analysis of the Nicotiana benthamiana leaves agroinfiltrated with the TY-FHV showed that both genomic and subgenomic FHV RNAs were abundantly produced. This indicates that the FHV RNA1 sequence was correctly expressed and translated to produce a functional FHV replicase. Although these FHV RNAs were not encapsidated, the FHV RNA having a TYMV CP sequence at the 3'-end was efficiently encapsidated. When an eGFP gene was inserted into the B2 ORF of the FHV sequence, a fusion protein of B2-eGFP was produced as expected.
Turnip yellow mosaic virus (TYMV) is a positive strand RNA virus that infects mainly Cruciferae plants. In this study, the TYMV genome was modified by inserting an extra subgenomic RNA promoter and a multiple cloning site. This modified TYMV was introduced into Nicotiana benthamiana using a Agrobacterium-mediated T-DNA transfer system (agroinfiltration). When a gene encoding $\beta$-glucuronidase or green fluorescent protein was expressed using this modified TYMV as a vector, replication of the recombinant viruses, especially the virus containing $\beta$-glucuronidase gene, was severely inhibited. The suppression of replication was reduced by co-expression of viral silencing suppressor genes, such as tombusviral p19, closteroviral p21 or potyviral HC-Pro. As expected, two subgenomic RNAs were produced from the recombinant TYMV, where the larger one contained the foreign gene. An RNase protection assay revealed that the recombinant subgenomic RNA was encapsidated as efficiently as the genuine subgenomic RNA.
Interplay between Cymbidium mosaic virus (CymMV)/Odontoglossum ringspot virus (ORSV) and its host plant Phalaenopsis equestris remain largely unknown, which led to deficiency of effective measures to control disease of P. equestris caused by infecting viruses. In this study, for the first time, we characterized viral small interfering RNAs (vsiRNAs) profiles in P. equestris co-infected with CymMV and ORSV through small RNA sequencing technology. CymMV and ORSV small interfering RNAs (siRNAs) demonstrated several general and specific/new characteristics. vsiRNAs, with A/U bias at the first nucleotide, were predominantly 21-nt long and they were derived predominantly (90%) from viral positive-strand RNA. 21-nt siRNA duplexes with 0-nt overhangs were the most abundant 21-nt duplexes, followed by 2-nt overhangs and then 1-nt overhangs 21-nt duplexes in infected P. equestris. Continuous but heterogeneous distribution and secondary structures prediction implied that vsiRNAs originate predominantly by direct Dicer-like enzymes cleavage of imperfect duplexes in the most folded regions of the positive strand of both viruses RNA molecular. Furthermore, we totally predicted 54 target genes by vsiRNAs with psRNATarget server, including disease/stress response-related genes, RNA interference core components, cytoskeleton-related genes, photosynthesis or energy supply related genes. Gene Ontology classification showed that a majority of the predicted targets were related to cellular components and cellular processes and performed a certain function. All target genes were down-regulated with different degree by vsiRNAs as shown by real-time reverse transcription polymerase chain reaction. Taken together, CymMV and ORSV siRNAs played important roles in interplay with P. equestris by down modulating the expression levels of endogenous genes in host plant.
Replication of positive-strand RNA virus is mediated by a virus-encoded RNA-dependent RNA polymerase (RdRp). To study the replication of Ectropis obliqua virus (EoV), a newly identified insect virus belonging to the family Iflaviradae, we expressed the RNA polymerase domain in Escherichia coli and purified it on a Ni-chelating HisTrap affinity column. It is demonstrated that EoV RdRp initiated RNA synthesis in a primer and poly (A)-dependent manner in vitro. Furthermore, the effect of primer concentration, temperature, metal ions ($Mg^{2+}$, $Mn^{2+}$, and $K^+$) on enzymatic activity were determined. Our study represented a first step towards understanding the mechanism of EoV replication.
The poliovirus is a small, and non-enveloped virus. The RNA genome of poliovirus is continuous, linear, and has a single open reading frame. This polyprotein precursor is cleaved proteolytically to yield mature products. Most of the cleavages occur by viral protease. The mature proteins derived from the P1 polyprotein precursor are the structural components of the viral capsid. The initial cleavage by 2A protease is indirectly involved in the cleavage of a cellular protein p220, a subunit of the eukaryotic translation initiation factor 4F. This cleavage leads to the shut-off of cap-dependent host cell translation, and allows poliovirus to utilize the host cell machinery exclusively for translation its own RNA, which is initiated by internal ribosome entry via a cap-independent mechanism. The functional role of the 2B, 2C and 2BC proteins are not much known. 2B, 2C, 2BC and 3CD proteins are involved in the replication complex of virus induced vesicles. All newly synthesized viral RNAs are linked with VPg. VPg is a 22 amino acid polypeptide which is derived from 3AB. The 3C and 3CD are protease and process most of the cleavage sites of the polyprotein precursor. The 3C protein is also involved in inhibition of RNA polymerase II and III mediated transcription by converting host transcription factor to an inactive form. The 3D is the RNA dependent RNA polymerase. It is known that poliovirus replication follows the general pattern of positive strand RNA virus. Plus strand RNA is transcribed into complementary minus strand RNA that, in turn, is transcribed for the synthesis of plus strand RNA is transcribed into complementary minus strand RNA that, in turn, is transcribed for the synthesis of plus strand RNA strands. Poliovirus RNA synthesis occurs in a membranous environment but how the template RNA and proteins required for RNA replication assemble in the membrane is not much known. The RNA requirements for the encapsidation of the poliovirus genome (packaging signal) are totally unknown. The poliovirus infection cycle lasts approximately 6 hours.
Cowper chlorotic mottle virus (CCMV) is the 'controlled' quarantine virus as plant pathogenic virus that are classed as group VI (+) ssRNA virus that belongs to the genus Bromovirus and family Bromoviridae, When plants that are Phaseolus vulgaris, Clitoria ternatea, Nicotiana tabaccum, Glycine max, Vigna unguiculata and Vigna siensis, and Arachis hypogaea is imported in domestic. In this study, inspection system is implemented to analyze CCMV accurately and rapidly by developing RT-PCR, nested PCR, and gene insertion positive control. It is expected that the method developed in this study will contribute to the plant quarantine to be consistently utilized in the field.
Turnip yellow mosaic virus (TYMV) is a positive strand RNA virus. We have modified TYMV coat protein (CP) by inserting a c-Myc epitope peptide at the N- or C-terminus of the CP, and have examined its effect on assembly. We introduced the recombinant CP constructs into Nicotiana benthamiana leaves by agroinfiltration. Examination of the leaf extracts by agarose gel electrophoresis and Western blot analysis showed that the CP modified at the N-terminus produced a band co-migrating with wild-type virions. With C-terminal modification, however, the detected bands moved faster than the wild-type virions. To further examine the effect, TYMV constructs producing the modified CPs were prepared. With N-terminal modification, viral RNAs were protected from RNase A. In contrast, the viral RNAs were not protected with C-terminal modification. Overall, the results suggest that virion assembly and RNA packaging occur properly when the N-terminus of CP is modified, but not when the C-terminus is modified.
Coxsackievirus B3 (CVB3) is the main cause of acute myocarditis and dilated cardiomyopathy. Plant extracts are considered as useful materials to develop new antiviral drugs. We had previously selected candidate plant extracts, which showed anti-inflammatory effects. We examined the antiviral effects by using a HeLa cell survival assay. Among these extracts, we chose the Amomi Cardamomi (Amomi) extract, which showed strong antiviral effect and preserved cell survival in CVB3 infection. We investigated the mechanisms underlying the ability of Amomi extract to inhibit CVB3 infection and replication. HeLa cells were infected by CVB3 with or without Amomi extract. Erk and Akt activities, and their correlation with virus replication were observed. Live virus titers in cell supernatants and viral positive- and negative-strand RNA amplification were measured. Amomi extract significantly increased HeLa cell survival in different concentrations ($100-10{\mu}g/ml$). CVB3 capsid protein VP1 expression (76%) and viral protease 2A-induced eIF4G1 cleavage (70%) were significantly decreased in Amomi extract ($100{\mu}g/ml$) treated cells. The levels of positive- (20%) and negative-strand (80%) RNA were dramatically decreased compared with the control, as revealed by reverse transcription-PCR. In addition, Amomi extract improved mice survival (51% vs 26%) and dramatically reduced heart inflammation in a CVB3-induced myocarditis mouse model. These results suggested that Amomi extract significantly inhibited Enterovirus replication and myocarditis damage. Amomi may be developed as a therapeutic drug for Enterovirus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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