Park, Hyo-Jin;Kim, In-Su;Kim, Jin-Woo;Yang, Seul-Gi;Kim, Min-Ji;Koo, Deog-Bon
Journal of Animal Reproduction and Biotechnology
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v.34
no.3
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pp.212-221
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2019
Sestrin-2 (SESN2) as a stress-metabolic protein is known for its anti-oxidative effects as a downstream factor of PERK pathways in mammalian cells. However, the expression patterns of SESN2 in conjunction with the UPR signaling against to ER stress on porcine oocyte maturation in vitro, have not been reported. Therefore, we confirmed the expression pattern of SESN2 protein, for which to examine the relationship between PERK signaling and SESN2 in porcine oocyte during IVM. We investigated the SESN2 expression patterns using Western blot analysis in denuded oocytes (DOs), cumulus cells (CCs), and cumulus-oocyte complexes (COCs) at 22 and 44 h of IVM. As expected, the SESN2 protein level significantly increased (p < 0.01) in porcine COCs during 44 h of IVM. We investigated the meiotic maturation after applying ER stress inhibitor in various concentration (50, 100 and 200 μM) of tauroursodeoxycholic acid (TUDCA). We confirmed significant increase (p < 0.05) of meiotic maturation rate in TUDCA 200 μM treated COCs for 44 h of IVM. Finally, we confirmed the protein level of SESN2 and meiotic maturation via regulating ER-stress by only tunicamycin (Tm), only TUDCA, and Tm + TUDCA treatment in porcine COCs. As a result, treatment of the TUDCA following Tm pre-treatment reduced SESN2 protein level in porcine COCs. In addition, SESN2 protein level significantly reduced in only TUDCA treated porcine COCs. Our results suggest that the SESN2 expression is related to the stress mediator response to ER stress through the PERK signaling pathways in porcine oocyte maturation.
We purified a protein carboxyl O-methyltransferase (protein methylase II) from porcine spleen to homogeneity. The molecular weight of the porcine spleen protein methylase II (ps-PM II) was estimated to be 27,500 daltons on SDS-PAGE. Amino acid sequence of N-terminal 28 residues for ps-PM II was identified. Amino-terminal three amino acid residues of ps-PM II were deleted when compared to those of other protein carboxyl methytransferase. S-Adenosyl-L-homocysteine competitively inhibits ps-PM II with a K, value of $1.63{\times}10^{-7}M$. Myelin basic protein exhibited the highest methyl-accepting capacity among the proteins tested.
In this study, we report the cloning of the porcine UPII genomic DNA, which contains a putative full-length open reading frame encoding the UPII protein. A comparison of the porcine UPII gene coding sequence with the previously published mouse UPII sequence demonstrates that only the exon sequences are partially conserved. Northern and immunohistochemical analyses show that the porcine UPII gene is expressed only in the urothelium and that the protein specifically localizes to urothelial superficial cells. (omitted)
The objectives of this study were to determine the interaction between porcine myofibrillar proteins and various gelatins (bovine hide, porcine skin, fish skin, and duck skin gelatins) and their impacts on gel properties of porcine myofibrillar proteins. Porcine myofibrillar protein was isolated from pork loin muscle (M. longissimus dorsi thoracis et lumborum). Control was prepared with only myofibrillar protein (60 mg/mL), and gelatin treatments were formulated with myofibrillar protein and each gelatin (9:1) at the same protein concentration. The myofibrillar protein-gelatin mixtures were heated from $10^{\circ}C$ to $75^{\circ}C$ ($2^{\circ}C/min$). Little to no impacts of gelatin addition on pH value and color characteristics of heat-induced myofibrillar protein gels were observed (p>0.05). The addition of gelatin slightly decreased cooking yield of heat-induced myofibrillar protein gels, but the gels showed lower centrifugal weight loss compared to control (p<0.05). The addition of gelatin significantly decreased hardness, cohesiveness, gumminess, and chewiness of heat-induced myofibrillar gels. Further, sodium dodecyl poly-acrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) showed no interaction between myofibrillar proteins and gelatin under non-thermal conditions. Only a slight change in the endothermic peak (probably myosin) of myofibrillar protein-gelatin mixtures was found. The results of this study show that the addition of gelatin attenuated the water-holding capacity and textural properties of heat-induced myofibrillar protein gel. Thus, it could be suggested that well-known positive impacts of gelatin on quality characteristics of processed meat products may be largely affected by the functional properties of gelatin per se, rather than its interaction with myofibrillar proteins.
Optimal conditions for collecting, storing and drying temperature to utilize slaughter porcine blood for blood meals and the effects of blood meal on growth in broiler chicks were investigated. Dry matter and protein contents of slaughter procine blood were 19.5% and 77%(dry basis), respectively. As for the composites of amino acids in the blood, aspartic acid, arginine, glycine, histidine, leucine, lysine, phenylalanin threonine were shown high. There was no significant difference between the collections by bloodletting and vacuumming in terms of microbial contamination. Storage of slaughter porcine blood showed no differences in protein, DNA and triglyceride contents and pH between the storage methods of freezing (-20$^{\circ}C$) and refrigerating (-4$^{\circ}C$). In case of room temperature storage, however, the decrease in pH and the appearance of new protein due to microbial contaminations increased as the storage periods were prolonged. When drying was done by flash methods, the drying period got shortened as the temperature became higher, yet protein and triglyceride were destoryed more. When drying was done over 120$^{\circ}C$, even at the same degree, the breakdowns of protein and triglyceride increased more as drying period got longer. In feeding trials of broiler chicks, dietary supplementation of the flash dried blood meal at 2% level showed significant difference in growth rate(P<.05%). These results indicated that the appropriate handling and manufacturing of slaughter porcine blood enabled the blood to be used as a protein source for broiler chicks.
Protein methylase inhibitor which is a modulator of biological methylation has been purified and characterized from porcine liver soluble fraction by cell fractionation, Sephadex G25 chromatography, reverse phase HPLC, size exclusion HPLC. The results are summarized as follows. 1) The purified inhibitor shows apparent homogeneity, as judged by HPLC. 2) A molecular weight of the purified inhibitor which is composed of 18 amino acid residues is about 1,400 daltons. 3) A single absorption peak of ultraviolet spectrum was observed at 260nm. 4) The inhibitor was not inactivated by heating at $100^{\circ}C$ until 60min. and its activity was not influenced by treatment with digestive enzymes, such as trypsin, pepsin, pronase, chymotrypin, lysozyme, DNase, and RNase. 5) The purified inhibitor inhibited protein rnethylase I, II, III and phospholipid methyltransferase activities. 6) The purified inhibitor inhibited noncompetitively protein methylase II from porcine liver, spleen, and testis. 7) The $K_{i}$ values for protein methylase II from porcine liver, spleen, and testis were 300nM, 250nM, 297nM, respectively.
The aim of this study was to investigate what protein(s) of porcine epididymal fluid (pEF) are able to enhance the nuclear maturation of porcine germinal vesicle (GV) oocytes in vitro. Proteins of pEF were fractionated by affinity, ion exchange, and gel filtration chromatography. Porcine cumulus-oocytes complexes (COC) from follicles were cultured in tissue culture medium (TCM 199) containing various fractions obtained by chromatography. Porcine COCs were also cultured in TCM 199 containing various meiosis inhibitors and pEF. After 24 or 48 h culture, oocytes were examined for evidence of GV breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II. When porcine COCs were cultured in the medium with meiosis inhibitor such as, dibutyryl cAMP (dbcAMP) and forskolin (Fo), more than 80% of oocytes were unable to resume meiosis. However, porcine COCs supplemented with pEF were able to overcome the inhibitory effect of dbcAMP and Fo. Maturation rate of oocytes was significantly (p<0.05) increased in the media supplemented with cationic protein(s) during in vitro maturation than in those with anionic protein(s) (44.1% vs 20.0%). When oocytes were cultured in the TCM 199 with fractions obtained by gel filtration, the maturation rate of oocytes was significantly (p<0.05) higher in fraction 11 containing 18 kDa than other fractions. The present study suggests that 1) dbcAMP and Fo prevent the spontaneous maturation of oocyte after isolation from follicles, and that pEF contain a substance(s) that improves meiosis resumption in vitro of porcine COCs, 2) cationic 18 kDa protein(s) are responsible for promotion of Mil stage.
In an attempt to evaluate the function of MAP kinase in porcine oocytes and to develop a method of the assessment of its activity, myelin basic protein (MBP) was used as a substrate to detect the MAP kinase activity of porcine oocytes which had undergone maturation in vitro. The existence of MAP kinase and MAP kinase kinase (MAPKK) was verified in immature porcine germinal vesicle (GV) oocytes at 0 h culture via Western blotting. Porcine oocytes exhibited a low level of MAP kinase activity during the first 20 h of culture, which increased at 25 h, during which time a breakdown in the nuclear membrane occurred. Significantly higher increases (p<0.05) of MAP kinase activity were detected at 30 h of culture. Using the gel phosphorylation method, MBP was phosphorylated at two positions corresponding to mammalian MAP kinase-extracellular signal-regulated kinase (ERK 1) (44 kDa) and ERK 2 (42 kDa). The absolute levels of those proteins did not increase during 40 h of culture, suggesting that the detected increase in MAP kinase activity was the result of phosphorylation rather than changes in the total amount of protein. MAPKK and MAP kinase were dephosphorylated in first-stage (MI) meiotic oocytes by the addition of cycloheximide, a protein synthesis inhibitor. These results of this study indicate that the MAP kinase cascade does exists in porcine oocytes and that its activation leads to oocyte maturation.
The objective of this study was to investigate the effects of hot- and cold-boning on sarcomere length, drip loss and protein solubility of post-rigor porcine longissimus muscle. A total of ten pigs(borrow, 100$\pm$5 kg) were randomly selected at a commercial plant and the carcasses were split in half after slaughter. The longissimus muscle of the left side was dissected and chilled at 0$^{\circ}C$ after trimming of subcutaneous fat whereas the right side carcasses were served for cold-boning after chilling for 24 hrs. The temperature, pH and sarcomere length of porcine longissimus muscle were measured at postmortem 1, 3, 6, 12 and 24 hours. Drip loss, cooking loss, Minolta L*a*b*, shear force and protein solubility were measured at postmortem 24 hrs. The pH of cold-boning samples was rapidly decreased whereas temperature and sarcomere length of hot-boning samples were rapidly decreased during 24 hrs of chilling. Hot-boning muscles showed significantly (P<0.05) higher pHu and shorter sarcomere compared with cold boning muscles because of cold shortening. However, there were no significant differences in drip loss, cooking loss and shear force value between hot- and cold boned samples. The samples of hot-boning showed lower Minolta L* value and higher sarcoplasmic protein solubility compared with cold boned samples. These results suggest that the pale color changing of porcine longissimus muscle could be inhibited by hot-boning due to rapid chilling of the muscle although sarcomere length could be shortened because of cold shortening. Also these results show that hot-boning of porcine carcass could have a high protein solubility without negative effects of drip loss or tenderness of porcine longissimus muscle.
Protein carboxyl O-methyltransferase (E.C.2.1.1.24) may play a role in the repair of aged protein that is spontaneously incorporated with isoaspartyl residues. The porcine brain carboxyl O-methyltransferase was cloned in the pET32 vector, and overexpressed in E.coh (BL21) that harbors pETPCMT, which encodes 227 amino acids, including tagging proteins at the N-terminus. The protein sequence of the cloned porcine brain PCMT (r-pbPCMT) shares a 98% identity with that of human erythrocyte PCMT and rat brain PCMT. It is 100% identical with that of bovine brain. The r-pbPCMT was purified using Ni-NTA affinity chromatography and digested by enterokinase in order to remove the protein tags. Then Superdex 75HR gel filtration chromatography was performed. The r-pbPCMT exhibited similar in vitro substrate specificities with the PCMT that was purified from porcine brain. The molecular weight of the enzyme was estimated to be 24.5 kDa on the SDS polyacrylamide gel electrophoresis. The $K_m$ value was $1.1{\times}10^{-7}\;M$ for S-adenosyl-L-methionine. S-adnosyl-L-homocysteine was a competitive type of inhibitor with the $K_i$ value of $1.38{\times}10^{-4}\;M$. The enzyme has optimal activity at pH 6.0 and $37^{\circ}C$. These results indicate that the expressed enzyme is functionally similar to the natural protein. It also suggests that it may be a suitable model to further understand the function of the mammalian enzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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