Dendrolimus punctatus tetravirus (DpTV) has been identified as a new member of the genus Omegatetravirus of the family Tetraviridae that may be related serologically to Nudaurelia capensis virus ($N{\omega}V$). To establish the function of DpTV RNA genome and to better understand the mechanism of viral replication, the putative RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) domain has been cloned and expressed in Escherichia coli. The recombinant protein was purified on a Ni-chelating HisTrap affinity column and demonstrated to initiate viral RNA synthesis in a primer-independent manner but not by terminal nucleotidyle transferase activity in the presence of $Mg^{2+}$ and RNA template. Mutation of the GDD to GAA interferes with the residues at the polymerase active site and metal ions, and thus renders the polymerase inactive.
Urea in the oral cavity is hydrolyzed mainly by bacterial ureases to ammonia, which in turn, raises pH of the oral environment, maintaining oral pH homeostasis, thereby inhibiting dental caries. Streptococcus salivarius has been shown to be a major contribution to oral ureolysis. Synthesis of urease by S. salivarius appears to be constitutive, but can be greatly enhanced in the acidic environment. It has been presumed that ureolytic activity of S. salivarius strains isolated from caries-active site is greater than that of strains from caries-free site. However, no in vivo study has supported the presumption. The present study was performed to observe the ureolytic activity of S. salivarius strains isolated from different environments in the same individual, finding out whether the ureolytic activity is related to dental caries. For the purpose, S. salivarius strains were isolated from caries-active site (>C2), a caries-free site of the tooth, and the dorsum of the tongue of each of 50 patients having decayed teeth. The strains isolated from the patients who harbored S. salivarius in more than two sites were selected and then their ureolytic activities were measured. In order to examine clonal diversity of the strains, their ureC genes were amplified by polymerase chain reaction (PCR) and then restricted with EcoRV, and the protein profiles of the strains were compared by SDS-PAGE. The results were as follows: 1. Of 50 patients, 13 patients harbored S. salivarius in more than two sites; a total of 61 S. salivarius strain were isolated from the patients and selected for the study. 2. Of 17 isolates from the caries-active site of 9 patients harboring S. salivarius in more than two sites including carious lesion, 10 (58.8%) showed a high ureolytic activity (> 200 ${\mu}mol/min/mg$). While, 19 out of 44 isolates (43.2%) from the caries-free site of the teeth and the dorsum of the tongues of 13 patients were the strains with a high ureolytic activity. 3. Of 9 patients harboring S. salivarius in more than two sites including caries-active site. 6 patients were found to have the strains in the caries-active site showing a lower ureolytic activity than the strains in the other sites. 4. Of 34 isolates with ureolytic activity higher than 40 ${\mu}mol/min/mg$, 32 isolates produced 0.54-Kbp PCR products regardless of the sites of bacterial collection. In contrast, of 27 isolates with ureolytic activity lower than 40${\mu}mol/min/mg$, 26 isolates yielded 1.3-Kbp PCR products or none regardless of the sites. 5. Different clonal types of S. salivarius with relatively higher and lower ureolytic activities were found in the same individuals and even in the same sites. 6. None of strains showing different ureolytic activity appeared to be the same clonal type. The overall results suggest that ureolytic activity of the isolates does not appear to be related to differences of the environments but related to their own genetic traits.
Since its identification in 1989, hepatitis C virus has been the subject of extensive research. The biology of the virus and the development of antiviral drugs are closely related. The RNA polymerase activity of nonstructural protein 5B was first demonstrated in 1996. NS5B is believed to localize to the perinuclear region, forming a replicase complex with other viral proteins. It has a typical polymerase structure with thumb, palm, and finger domains encircling the active site. A de novo replication initiation mechanism has been suggested. To date, many small molecule inhibitors are known including nucleoside analogues, non-nucleoside analogues, and pyrophosphate mimics. NS5B interacts with other viral proteins such as core, NS3, 4A, 4B, and 5A. The helicase activity of NS3 seems necessary for RNA strand unwinding during replication, with other nonstructural proteins performing modulatory roles. Cellular proteins interacting with NS5B include VAMP-associated proteins, heIF4AII, hPLIC1, nucleolin, PRK2, ${\alpha}$-actinin, and p68 helicase. The interactions of NS5B with these proteins might play roles in cellular trafficking, signal transduction, and RNA polymerization, as well as the regulation of replication/translation processes.
The attachment of sugar to flavonoids enhances their solubility. Glycosylation is performed primarily by uridine diphosphate-dependent glycosyltransferases (UGTs). The UGT from Bacillus cereus, BcGT-1, transferred three glucose molecules into kaempferol. The structural analysis of BcGT-1 showed that its substrate binding site is wider than that of plant flavonoid monoglucosyltransferases. In order to create monoglucosyltransferase from BcGT-1, the error-prone polymerase chain reaction (PCR) was performed. We analyzed 150 clones. Among them, two mutants generated only kaempferol O-monoglucoside, albeit with reduced reactivity. Unexpectedly, the two mutants harbored mutations in the amino acids located outside of the active sites. Based on the modeled structure of BcGT-1, it was proposed that the local change in the secondary structure of BcGT-1 caused the alteration of triglucosyltransferase into monoglucosyltransferase.
The nucleotide sequence of the estI gene encoding acetylxylan esterase I of Bacillus stearothermophilus was determined and analyzed. The estI gene was found to consist of a 810 base pair open reading frame coding for a polypeptide of 270 amino acids with a deduced molecular weight of 30 kDa. This was in well agreement with the molecular weight (29 kDa) estimated by SDS-PAGE of the purified esterase. The coding sequence was preceded by a putative ribo some binding site 10 bp upsteam of the ATG codon. Further 53 bp upstream, the transcription initiation signals were identified. The putative $_{-}$10 sequence (TCCAAT) and $_{-}$35 seqence (TTGAAT) corresponded closely to the respective consensus sequences for the Bacillus subtiis major RNA polymerase. The G+C content of the coding region of the estI was 51% whereas that of the third position of codone was 60.2%. The N-terminal amino acid sequence of the EstI deduced from the nucleotide sequence perfectly matched the corresponding region of the purified esterase described previously. Comparison with the amino acid sequence of other esterases and lipases reported so far allowed us to identify a sequence, GLSMG at positions 123 to 127 of the EstI which was reported to be the highly conserved active site sequence for those enzymes. The nucleotide sequence of the estI revealed 55.7% homology to that of the xylC coding for the acetylxylan esterase of Caldocellum saccharolyticum.
In earlier studies, the genes encoding Escherichia coli thioredoxin and Corynebacterium nephridii thioredoxin C-3 were fused via a common restriction site in the nucleotide sequence coding for the active site of the proteins to generate two chimeric thioredoxins, designated E-C3 (N to C-terminal) and C3-E. The hybrid thioredoxins were overexpressed in E. coli from the cloned chimeric thioredoxin genes by a T7 promoter/polymerase system. To investigate the structure-function relationship of thioredoxin, we purified the E-C3 hybrid thioredoxin through ammonium sulfate fractionation, DEAE-cellulose chromatography, and Sephadex G-50 gel filtration. Its purity was examined on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and the molecular weight of the purified E-C3 hybrid thioredoxin was estimated to be 12,000. On native polyacrylamide gels, the purified E-C3 hybrid thioredoxin shows a much lower mobility than E. coli thioredoxin. E-C3 hybrid thioredoxin exhibits a 40-fold lower catalytic efficiency with E. coli thioredoxin reductase than E. coli thioredoxin. It was shown to catalyze the reduction of insulin disulfide by dithiothreitol. The purified E-C3 hybrid thioredoxin was also characterized in other aspects.
Mismatches in a DNA duplex are mainly due to DNA duplication errors that are generated by improper function of DNA polymerase. MutS, MutL and MutH are crucial proteins for the initiation of the methyl-directed mismatch repairing in bacteria. MutS has an ATPase activity md recognize the mismatched or unpaired bases on DNA. After binding to a mismatch, MutS recruits MutL to mediate the activation of MutH an endonuclease, which cleaves the 5' site of d(GATC) on the un-methylated strand. Both MutL and MutS also have essential roles in the subsequent removal and re-synthesis of the daughter strand. We have determined the crystal structures of either intact or active fragments of each of these proteins, both alone and complexed with ligands (DNA, ADP and ATP). The biochemical and mutagenesis studies based on the detailed 3-D structures led to new insights into the role of the ATPase activity of MutS in the mismatch recognition and directions for future investigation of mismatch repair.
Ingrid Pernet;Corinne Reymermier;Anne Guezennec;Jacqueline Viac;Branca, Jean-Eric;Joelle Guesnet;Eric Perrier
대한화장품학회:학술대회논문집
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대한화장품학회 2003년도 IFSCC Conference Proceeding Book I
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pp.85-96
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2003
Normal human skin, constantly challenged by environmental micro-organisms, has an innate ability to fight invading microbes through antimicrobial peptides. These peptides, described in both plant and animal kingdoms are able to inactivate a broad spectrum of micro-organisms. Mammalian defensins constitute one of the most common antimicrobial peptide family. Among the three human beta-defensins hBD1, hBD2 and hBD3 produced in epithelia, only hBD2 and hBD3 are inducible and additionally have been described as expressed by differentiated keratinocytes at site of inflammation and infection. The aims of these studies were to define a cell culture model in which the basal production of hBD could be detected and up-regulated in order to enhance skin auto-protection against micro-organisms. A specific Polymerase Chain Reaction method have been developed for hBD2 and hBD3 mRNA detection in non-differentiated monolayer keratinocytes cell culture. We have been able to demonstrate that in vitro, hBD2 and hBD3 expression in normal human keratinocytes could be detected and enhanced by TNF-alpha and IFN-gamma, in hypercalcic culture conditions. This research opened the possibility of the development of cosmetic active compounds, able to induce the expression of skin natural antibiotic peptides responsible about microflora ecology of the skin.
This study was done to produce a mutated protein inactivated cytotoxicity of Shigatoxin 2e (Stx2e) of E.coli O139 isolates by deletional mutagenesis of Stx2e A subunit gene encoding active-site cleft of enzymatic domain in ST2e holotoxin. Cytotoxicity of the toxoid expressed from the mutant Stx2e gene was compared with wild type Stx2e for development of vaccine candidate. A recombinant plasmid pED18 containing Stx2e gene ot E.coli O139 isolates was used to generate mutation plasmid. Deletion mutagenesis was conducted for Stx2e A subunit gene encoding enzymatically active domain by polymerase chain reaction (PCR) using ot designed primer to induce deletional mutation. DNA sequence analysis was confirmed that the pentamer (Typ 202- Ser 206) that lies within the proposed active-site cleft in the second region was completely deleted. A DNA fragment of 1.1 kb that encode the new mutant Stx2eA gene was inserted into plasmid pRSET vector digested with EcoRV-Hind III and named pEDSET The PEDSET was transformed in E. coli for expression of mutant protein and the protein was confirmed by SDS-PACE and Western-blotting. The protein expressed by the mutant was tested to confirm the reduction of cytotoxic activities on Vero cell using microcytotoxicity assay compared with wild type Stx2e, the cytotoxicity of deletional mutant protein was at least reduced by 3,000-fold on Vero cell.
Characterization and electron microscopic visualization of the plasmid and the gene expression of Escherichia coli were carried out. Transcriptional units of active structural genes were observed after lysis of Escherichia coli cells. The ribosomes attached to the E. coli genome on mRNA molecule as polyribosomes. From this gradient of polyribosome length, we estimated location of mRNA synthesis initiation site. In this experiment, a granule is ofen present which may correspond to a RNA polymerase at the promoter site. pOX1, pOX7, pOX7A, $pOX7{\Delta}1$, pSTP36, pSTP21, pBR322, and pJH12 were visualized by way of electron microscope, and their estimated sizes were determined to be $5.70{\pm}0.08{\mu}m,\;2.15{\pm}0.10{\mu}m,\;2.14{\pm}0.12{\mu}m,\;7.39{\pm}0.08{\mu}m,\;4.03{\pm}0.04{\mu}m,\;1.50{\pm}0.03{\mu}m\;and\;1.25{\pm}0.09{\mu}m$ respectively. One micrometer of measured length corresponded to about 3.0 Kb. Mica-press adsorption method that allows selectivs visualization of the plasmid DNA released in situ from the bacterial cell is rapid and useful for visualization of plasmids. The released plasmid DNA was adsorbed preferently on mica in a divalent cation-free solution. Miller chromatin-spreading method was useful to observe the plasmid and transcripts. BAC method and cytochrome C monolayer were useful to observe the plasmid DNA. Our ability to visualize ultrastructural aspects of the expression of E. coli has given us a unique tool with which to study the regulation the level of an individual gene.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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