Sphingosine-1-phosphate (S1P) has a many function involved proliferation, differentiation and survival of many cells. In this study, to investigate whether S1P improve the developmental competence of porcine embryos, 50 nM of S1P were supplemented during in vitro maturation (with EGF or without EGF) medium and/or in vitro culture (IVC) medium. Addition of S1P was significantly increased the rate of oocytes reaching metaphase II (MII) compared to the control (83.5 vs. 64.1%) in without EGF medium, but not with EGF medium (89.5 vs. 84.6%). When treated with $1{\mu}M$ of N1N-dimethylsphingosine (DMS), a sphingosine kinase inhibitor which is blocked endogenous generation of S1P, the meiotic progression rates to MII stage (without EGF: 45.2 and with EGF: 66.7%) were significantly decreased and degeneration rates (without EGF: 51.2 and with EGF: 30.1%) were increased in both medium compared to control group during IVM periods. Also, the rates of blastocyst formation was significantly increased in the S1P treated group compared to control group (29.0 vs. 19.2%) of EGF supplemented medium, whereas there were no effect in the EGF free medium (9.0 vs. 10.5%). After 12 h IVM, the phosphorylation of ERK1 and ERK2, which is major signaling pathway of MAP kinase, were increased in the S1P group than that of control or DMS group. When supplemented of S1P during IVC, the rates of blastocyst formation and total cell number (30.2% and 40.6) were significantly increased in S1P-treated group compared with control (20.1% and 32.5), DMS (12.3% and 25.1), and S1P plus DMS group (24.7% and 33.6). The percentage of apoptosis nuclei in the S1P group was significantly decreased than other groups. Also, the rates of blastocyst formation (26.7 vs. 14%) and total cell number (42.8 vs. 32.5) were significantly increased in the S1P group than those of control group when S1P added during the entire IVM and IVC periods. Taken together, our results indicate that S1P supplementation in IVM and/or IVC medium affects beneficial effect of meiotic maturation and subsequent developmental competence of porcine embryos.
In this study, we examined the effects of molecular weight, concentrations and treat the duration of polyvinylpyrrolidone (PVP) in vitro maturation (IVM) medium (Experiment 1), and the effect of PVP in IVM, in vitro fertilization (IVF) and in vitro culture (IVC) medium on the development and cell number of porcine embryos (Experiment 2). The base mediums were NCSU 23 solution for IVM, mTBM solution for IVF and PZM3 solution for IVC. In experiment 1, the development rates to 2 cell and blastocyst stage were not differ from the different molecular weight (MW), concentration and duration of PVP in IVM medium. However, the hatching rate of blastocyst was significantly higher in the group of MW 40,000, 0.5% and $0{\sim}44hr$ than in the other groups (p<0.05). In experiment 2, the results of IVM, IVF and IVC medium with (W) or without (W/O) 0.5% MW 40,000 PVP are follows. The development rate to 2 cell stage was highest in the group of W-W/O-W (p<0.05). The development rate to blastocyst and hatching rate was higher in the group of W-W/O-W and W-W/O-W/O than that of other treatments (p<0.05).
Transcription factor called activating enhancer binding protein 2C (AP2-gamma) is found in a variety of species and expressed from oocyte stage onwards, particularly restricted to the trophectoderm. Recent studies demonstrated that ablation of Tfap2c led to failure of tight junction biogenesis, particularly the knock-down embryos of Tfap2c did not form cavity from morula to blastocyst in mouse and pig. We speculated that the Tfa2pc may also be involved in desmosome biogenesis because blastocoel formation is coincident with the establishment of desmosome. To determine this, we depleted Tfap2c injecting siRNA into one-cell zygote and analysed the expression levels of genes that are required for desmosome complex such as PkP2, Pkp3, Dsc2, and Dsg2. We found only Pkp3 was up-regulated in the knockdowned morula embryos. Interestingly, upstream region of Pkp3 had putative Tfap2c binding sites. In conclusion, our results suggest that Tfap2c is not a crucial factor but somehow it might be involved in desmosome biogenesis directly or indirectly via Pkp3.
본 연구는 체외생산된 소 배반포기배의 inner cell mass (ICM) 세포에서 epidermal growth factor-receptor (EGF-R)의 발현 유무를 immunosurgery와 indirect immunofluorescence (간접 면역 형광방법)을 이용하여 조사하고자 실시하였다. 본 실험에 사용된 ICM 세포는 체외수정 후 7∼8일째에 회수된 소 배반포기배로부터 immunosurgery 방법을 실시하여 얻어졌으며, 회수된 ICM세포는 live/dead 염색방법을 통한 생사 유무와 EGF-R 발현 유무 조사에 공시되었다. 특히, 배반포기배에 대한 immunosurgery를 위해 trophectoderm 세포에 대한 rabbit anti-bovine trophectoderm cell antibody (RABTE)를 제조하여 사용하였다. 결과를 요약하면 다음과 같다. ICM세포의 회수율은 RABTE와 guinea pig serum (complement)에 각각 15∼30분과 15∼60분동안 처리했을 경우 16.7∼74.2%였으며, 또한 처리시간이 각각 30분과 30분일 때 가장 높은 회수율(74.2%)을 얻었다. Immunosurgery 후 얻어진 ICM세포의 생존 유무를 조사하기 위해 live/dead 염색 방법을 이용하였던바, ICM세포의 생존율은 complement가 60분 처리된 군(69.3%)을 제외한 모든 처리군에서 84.0∼91.6%의 높은 생존율을 나타냈다. 또한, 회수된 ICM세포에 대한 EGF-R의 존재를 확인하였다. 따라서, ICM세포에서의 EGF-R의 발현은 인위적으로 첨가된 EGF의 이용 가능성을 높임으로서 체외에서의 착상전 배 발달을 증진시킬 수 있을 것으로 사료된다.
In the present study, mouse follicular oocytes and 2-cell embryos(late -zygote stage embryos included) were cultured on the electric pad for electric stimulation in the culture incubator. In addition, follicular oocytes and embryos were tested for maturation and development under higher temperature condition($39^{\circ}C$).Mouse follicular oocyte maturation were not affected by anion electric stimulation and there is no significant difference in GBVD and MI between the control and experiment group after 4hr culture. In the embryo culture, it was found that more morula and blastocyst were found in the electric stimulation group rather than the control(96hr). This may seem to be caused with cytoplasmic $Ca^{2+}$ transient rise by electric stimulation(anion pad). On the other hand higher temperature incubation ($39^{\circ}C$) on the anion pad caused all the embryos degenerated within $12h{\sim}24hr$ culture. This was quite different from large animal embryos(bovine, pig, sheep), in which beneficial effect of high temperature incubation for oocyte maturation and embryo development were found.
Lee, Eun Ji;Ji, Kuk Bin;Lee, Ji Hye;Oh, Hyun Ju;Kil, Tae Young;Kim, Min Kyu
Journal of Animal Science and Technology
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v.63
no.2
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pp.281-294
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2021
Although somatic cell nuclear transfer (SCNT) is frequently employed to produce cloned animals in laboratories, this technique is expensive and inefficient. Therefore, the handmade cloning (HMC) technique has been suggested to simplify and advance the cloning process, however, HMC wastes many oocytes and leads to mitochondrial heteroplasmy. To solve these problems, we propose a modified handmade cloning (mHMC) technique that uses simple laboratory equipment, i.e., a Pasteur pipette and an alcohol lamp, applying it to porcine embryo cloning. To validate the application of mHMC to pig cloning, embryos produced through SCNT and mHMC are compared using multiple methods, such as enucleation efficiency, oxidative stress, embryo developmental competence, and gene expression. The results show no significant differences between techniques except in the enucleation efficiency. The 8-cell and 16-cell embryo developmental competence and Oct4 expression levels exhibit significant differences. However, the blastocyst rate is not significantly different between mHMC and SCNT. This study verifies that cloned embryos derived from the two techniques exhibit similar generation and developmental competence. Thus, we suggest that mHMC could replace SCNT for simpler and cheaper porcine cloning.
Ryu, Junghyun;Kim, Minjeong;Ahn, Jin Seop;Ahn, Kwang Sung;Shim, Hosup
Journal of Embryo Transfer
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v.31
no.1
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pp.1-7
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2016
Xenotransplantation involves multiple steps of immune rejection. The present study was designed to produce nuclear transfer embryos, prior to the production of transgenic pigs, using fibroblasts carrying transgenes human complement regulatory protein hCD59 and interleukin-18 binding protein (hIL-18BP) to reduce hyperacute rejection (HAR) and cellular rejection in pig-to-human xenotransplantation. In addition to the hCD59-mediated reduction of HAR, hIL-18BP may prevent cellular rejection by inhibiting the activation of natural killer cells, activated T-cell proliferation, and induction of $IFN-{\gamma}$. Transgene construct including hCD59 and ILI-18BP was introduced into miniature pig fetal fibroblasts. After antibiotic selection of double transgenic fibroblasts, integration of the transgene was screened by PCR, and the transgene expression was confirmed by RT-PCR. Treatment of human serum did not affect the survival of double-transgenic fibroblasts, whereas the treatment significantly reduced the survival of non-transgenic fibroblasts (p<0.01), suggesting alleviation of HAR. Among 337 reconstituted oocytes produced by nuclear transfer using the double transgenic fibroblasts, 28 (15.3%) developed to the blastocyst stage. Analysis of individual embryos indicated that 53.6% (15/28) of embryos contained the transgene. The result of the present study demonstrates the resistance of hCD59 and IL-18BP double-transgenic fibroblasts against HAR, and the usefulness of the transgenic approach may be predicted by RT-PCR and cytolytic assessment prior to actual production of transgenic pigs. Further study on the transfer of these embryos to surrogates may produce transgenic clone miniature pigs expressing hCD59 and hIL-18BP for xenotransplantation.
Kim Y. S.;Song S. H.;Cho S. K.;Kwack D. O.;Kim C. W.;Park C. S.;Chung K. H.
Reproductive and Developmental Biology
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v.29
no.3
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pp.201-205
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2005
The objective of this study was to investigative the effects of amino acids supplementation on maturation, fertilization and embryo development of pig oocytes. Essential amino acids (EA), non-essential amino acids (NA) or both amino acids (EA + NA) were supple-mented to North Carolina State University (NCSU) 23 medium containing porcine follicular fluid (pFF). When the amino acids were supplemented to the maturation medium, the maturation rates were higher (p<0.05) in the NA group than control ($83.3{\pm}0.04\%\;versus\;70.0{\pm}0.05\%$, but the subsequent cleavage rates and development to morula and blstocyst stage between aminoacid supplement groups and control were not different. The developmental rates to morula and blastocysts stage were not significantly different regardless of amino acid supplementation to culture medium. In addition, supplementation of amino acids did not significantly affect the rate of fertilization and polyspermy. When the amino acids were supplement to culture medium, the number of trophectodermal (TE) cells was significantly (p<0.05) higher in amino acid supplement group than that of control ($18.6{\pm}0.5\;versus\;16.1{\pm}0.6$), whereas the numbers of inner cell mass (ICM) cells were not different among the treaonent groups and control ($29.0{\pm}0.9\~31.5{\pm}1.2$). Total cell number was also significantly (p<0.05) higher in EANA group ($50.0{\pm}1.0$) than that of control group ($44.2{\pm}1.1$). These results indicate that the amino acid supplementation to maturation and culture medium may not significantly stimulate early embryo development, but may improve the TE cell number of blastocyst stage in the pig.
The objective of this study was to examine the effect of embryos development following IVF of in vitro-matured porcine oocytes treated with epidermal growth factor (EGF). When cumulus-enclosed oocytes were incubated in TCM 199 medium supplemented with (1) control group, (2) 10 ng/ml EGF, (3) 10${\mu}g$ml FSH and 10% FBS, or (4) 10 ng/ml EGF, 10 ${\mu}g$/ml FSH, and 10% FBS for 42 hr, the late developmental rates on NCSU (0.4% BSA) medium after fertilization were higher in (3) and (4) groups (13.4, 18.3%) than in (2) group (5.2%, p < 0.005), but (2) group is significantly higher than the development to blastocyst of oocytes of (1) group (1.2%). Also, when the cell number of total, ICM, and TE of those blastocysts at 6 day produced in vitro was investigated by double staining (PI and bisbenzimide), total cell number of (4) group (58.80${\pm}$ 11.90) was higher than that of (2) and (3) groups (42.17${\pm}$9.97, 49.07${\pm}$9.77, P < 0.05). ICM cell number of blastocysts of (4) group (11.69${\pm}$5.56) was higher than that of (2) and (3) groups (5.00${\pm}$4.24, 6.77${\pm}$4. 92, P < 0.05). Furthermore, the proportion of ICM in (4) group (19.0${\pm}$1.6) was higher than that in (2) and (3) groups (11.1${\pm}$3.0, 12. 7${\pm}$2.1). These results suggested that in vitromatured porcine oocytes treated with EGF alone can be developed to blastocyst, but high proportion on the development to blastocyst and number of total cell and ICM in blastocyst can be obtained when supplemented with additional FSH and FBS.
The aim of this study was to investigate the impact of a reported p53 inhibitor, pifithrin-${\alpha}$ (PFT-${\alpha}$), on preimplantation porcine in vitro fertilized (IVF) embryo development in culture. Treatment of PFT-${\alpha}$ was administered at both early (0 to 48 hpi), and later stages (48 to 168 hpi) of preimplantation development, and its impact upon the expression of five genes related to apoptosis (p53, bak, bcl-xL, p66Shc and caspase3), was assessed in resulting d 7 blastocysts, using real-time quantitative PCR. Total cell numbers, along with the number of apoptotic nuclei, as detected by the in situ cell death detection assay, were also calculated on d 7 in treated and non-treated control embryos. The results indicate that PFT-${\alpha}$, when administered at both early and later stages of porcine IVF embryo development, increases the incidence of apoptosis in resulting blastocysts. When administered at early cleavage stages, PFT-${\alpha}$ treatment was shown to reduce the developmental competence of porcine IVF embryos, as well as reducing the quality of resulting blastocysts in terms of overall cell numbers. In contrast, at later stages, PFT-${\alpha}$ administration resulted in marginally increased blastocyst development rates amongst treated embryos, but did not affect cell numbers. However, PFT-${\alpha}$ treatment induced apoptosis and apoptotic related gene expression, in all treated embryos, irrespective of the timing of treatment. Our results indicate that PFT-${\alpha}$ may severely compromise the developmental potential of porcine IVF embryos, and is a potent apoptotic agent when placed into porcine embryo culture media. Thus, caution should be exercised when using PFT-${\alpha}$ as a specific inhibitor of p53 mediated apoptosis, in the context of porcine IVF embryo culture systems.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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