Kim, Chang-Jong;Lee, Seung-Jun;Seo, Moo-Hyun;Cho, Nam-Young;Sohn, Uy-Dong;Lee, Moo-Yeol;Shin, Yong-Kyoo;Sim, Sang-Soo
Archives of Pharmacal Research
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v.25
no.5
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pp.675-680
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2002
In order to investigate the underlying mechanism of HCI in oesophagitis, the inflammatory response to HCI was observed in RBL-2H3 mast cells. Rat basophilic leukemia (RBL-2H3) cells were used to measure histamine release, arachidonic acid (AA) release, reactive oxygen species (ROS) and peroxynitrite generation induced by HCI. Exogenous HCl increased the level of histamine release and ROS generation in a dose dependent manner, whereas it decreased the spontaneous release of [$^3$H] M and the spontaneous production of peroxynitrite. Mepacrine (10 $\mu$M), oleyloxyethyl phosphorylcholine (10 $\mu$M) and bromoenol lactone (10 $\mu$M) did not affect both the level of histamine release and ROS generation induced by HCI. U73122 (1 $\mu$M), a specific phospholipase C (PLC) inhibitor did not have any influence on level of histamine release and ROS generation. Propranolol (200 $\mu$M), a phospholipase D (PLD) inhibitor, and neomycin (1 mM), a nonspecific PLC and PLD inhibitor, significantly inhibited both histamine release and ROS generation. Diphenyleneiodonium (10 $\mu$M), a NADPH oxidase inhibitor, and tiron (5 mM), an intracellular ROS scavenger significantly inhibited the HCI-induced histamine release and ROS generation. These findings suggest that the inflammatory responses to HCI is related to histamine release and ROS generation, and that the ROS generation by HCI may be involved in histamine release via the PLD pathway in RBL-2H3 cells.
During the screening of inhibitors against phospholipase C (PLC) and the formation of inositol phosphates (IP$_{t}$) at NIH3T3${\gamma}$1 cells from microbial secondary metabolites, we selected a fungal strain MT60109 which was capable of producing an inhibitor. By the taxonomic studies, this fungus was identified as Pseudallescheria sp. MT60109 and an inhibitor of PLC was purified by BuOH extraction and chromatographic techniques from the culture broth of Pseudallescheria sp. MT60109. The inhibitor was identified as thielavin B by the physico-chemical properties and spectroscopic analysis of UV, FAB-MS, $^{1}$H, $^{13}$C-NMR, $^{1}$H-$^{1}$H COSY and HMBC. Thielavin B showed potent inhibitory activity against PLC purified from bovine brain with an IC$_{50}$ of 20 $\mu$M. And it also inhibited the formation of inositol phosphates in platelet-derived growth factor (PDGF) -stimulated NIH3T3${\gamma}$1 cells with an IC$_{50}$ of 20 $\mu$M.
Sphingosine is known to regulate a wide range of cell physiology including growth, differentiation, and apoptosis. In this study, we examined the effect of sphingosine on the phospholipase D (PLD) activity in rat thymocytes. Sphingosine potently stimulated PLD in the absence of extracellular calcium, while depletion of intracellular calcium by BAPTA/AM treatment completely blocked activation of PLD by sphingosine. Sphingosine-induced increase of the intracellular calcium concentration was confirmed using a fluorescent calcium indicator Fluo-3/AM. A phosphoinositide-specific phospholipase C inhibitor U73122 partially inhibited the stimulation of PLD by sphingosine. When mouse PLD2 gene was transfected into mouse thymoma EL4 cells, which lack intrinsic PLD activity, sphingosine could stimulate PLD2 significantly while overexpression of human PLD1 had no effect. Taken together, the sphingosine-stimulated PLD activity in rat thymocytes is dependent on the mobilization of intracellular calcium and appears to be due to the PLD2 isoform.
Recent reports claimed that glucosylsphingosine (GS) is highly accumulated and specifically evoking itch-scratch responses in the skins of atopic dermatitis (AD) patients. However, it was unclear how GS can trigger itch-scratch responses, since there were no known molecular singling pathways revealed yet. In the present study, it was verified for the first time that GS can activate mouse serotonin receptor 2a (mHtr2a) and 2b (mHtr2b), but not 2c (mHtr2c) that are expressed in HEK293T cells. Specifically, effects of GS on all mouse serotonin receptor 2 subfamily were evaluated by calcium imaging techniques. The GS-induced intracellular calcium increase was dose-dependent, and antagonists such as ketanserin (Htr2a antagonist) and RS-127445 (Htr2b antagonist) significantly blocked the GS-induced responses. Moreover, the proposed GS-induced responses appear to be mediated by phospholipase C (PLC), since pretreatment of a PLC inhibitor U-73122 abolished the GS-induced responses. Additionally, the GS-induced calcium influx is probably mediated by endogenous TRPC ion channels in HEK293T cells, since pretreatment of SKF-96365, an inhibitor for TRPC, significantly suppressed GS-induced response. In conclusion, the present study revealed for the first time that GS can stimulate mHtr2a and mHtr2b to induce calcium influx, by utilizing PLC-dependent pathway afterwards. Considering that GS is regarded as a pruritogen in AD, the present study implicates a novel GS-induced itch signaling pathway.
The nerve growth factor (NGF) induces neuronal differentiation and neurite outgrowth of PC12 cells, whereas epidermal growth factors (EGF) stimulate growth and proliferation of the cells. In spite of this difference, NGF-or EGF-treated PC12 cells share various properties in cellular-signaling pathways. These include the activation of the phosphoinositide (PI)-3 kinase, 70 kDa S6 kinase, and in the mitogen-activated protein (MAP) kinase pathway, following the binding of these growth factors to intrinsic receptor tyrosine kinases (RTKs). Therefore, many studies have been attempted to access the critical signaling events in determining the differentiation and proliferation of PC12 cells. In this study, we investigated the cytosolic phospholipase $A_2$ ($cPLA_2$) in neurite behavior in order to identify the differences of signaling pathways between the NGF-induced differentiation and the EGF-induced proliferation of PC12 cells. We have showed here that the $cPLA_2$ was translocated from cytosol to membrane only in NGF-treated cells. We also demonstrated that this translocation is associated with NGF-induced activation of phospholipase $C-{\gamma}(PLC-{\gamma})$, which elevates intracellular $Ca^{2+}$ concentration. These results reveal that the translocation of $cPLA_2$ may be a requisite event in the neuronal differentiation of PC12 cells. Various phospholipase inhibitors were used to confirm the importance of these enzymes in the differentiation of PC12 cells. Neomycin B, a PLC inhibitor, dramatically inhibited the neurite outgrowth, and two distinct $PLA_2$ inhibitors, 4-bromophenacyl bromide (BPB) and arachidonyltrifluoro-methyl ketone ($AACOCF_3$) also suppressed the neurite outgrowth of the cells, as well Taken together, these data indicated that $cPLA_2$ is involved in NGF-induced neuronal differentiation and neurite outgrowth of PC12 cells.
The present study was performed to determine whether estradiol, via cAMP mediation, induces prostaglandin synthesis by modulating phospholipase $A_2$ activity which hydrolyzes phospholipids into arachidonic acids, a precursor for prostaglandin synthesis, during the implantation process in rats. Uterine phospholipase $A_2$ activity was elevated on day 5 of pregnancy when implantation normally occurs in rats. Moreover, phospholipase $A_2$ activity was higher in the implant sites than in the non-implant sites of uterus on day 6. In delayed implantation model, phospholipase $A_2$ activity was increased at 12 hrs after estradiol administration and at 8 hrs after dbcAMP administration. In addition, higher activity of phospholipase $A_2$ was induced by the treatment of estradiol plus theophylline, compared with estradiol-only treated group. The simultaneous treatment of indomethacin with estradiol or dbcAMP did not alter phospholipase $A_2$ activity compared with estradiol or dbcAMP-only treated group although significant suppression was observed in uterine PGE and $PGF_{2{\alpha}}$ concentrations. These results suggest that estradiol or cAMP stimulates uterine phospholipase $A_2$ activity, thereby increasing prostaglandin synthesis during the implantation process in rats.
Fasanmade, Adedigbo A.;Owuor, Edward D.;Ee, Rachel P.L.;Qato, Dima;Heller, Mark;Kong, Ah Ng Tony
Archives of Pharmacal Research
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v.24
no.2
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pp.126-135
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2001
Quinacrine (QU), a phospholipase-A2 (PLA-2) inhibitor has been used clinically as a chemotherapeutic adjuvant. To understand the mechanisms leading to its chemotherapeutic effect, we have investigated QU-induced apoptotic signaling pathways in human cervical squamous carcinoma HeLa cells. In this study, we found that QU induced cytochrome c-dependent apoptotic signaling. The release of pro-apoptotic cytochrome c was QU concentration- and time-dependent, and preceded activation of caspase-9 and -3. Flow cytometric FACScan analysis using fluorescence intensities of $DiOC_6$/ demonstrated that QU-induced cytochrome c release was independent of mitochondrial permeability transition (MPT), since the concentrations of QU that induced cytochrome c release did not alter mitochondrial membrane potential (${\blacktriangle}{\Psi}_m$). Moreover, kinetic analysis of caspase activities showed that cytochrome c release led to the activation of caspase-9 and downstream death effector caspase-3, Caspase-3 inhibitor (Ac-DEVD-CHO) partially blocked QU-induced apoptosis, suggesting the importance of caspase-3 in this apoptotic signaling mechanism. Supplementation with arachidonic acid (AA) sustained caspase-3 activation induced by QU. Using inhibitors against cellular arachidonate metabolism of lipooxygenase (Nordihydroxyguaiaretic Acid, NDGA) and cyclooxygenase (5,8,11,14-Eicosatetraynoic Acid, ETYA) demonstrated that QU-induced apoptotic signaling may be dependent on its role as a PLA-2 inhibitor. Interestingly, NDCA attenuated QU-induced cytochrome c release, caspase activity as well as apoptotic cell death. The blockade of cytochrome c release by NDCA was much more effective than that attained with cyclosporin A (CsA), a MPT inhibitor. ETYA was not effective in blocking cytochrome c release, except under very high concentrations. Caspase inhibitor z-VAD blocked the release of cytochrome c suggesting that this signaling event is caspase dependent, and caspase-8 activation may be upstream of the mitochondrial events. In summary, we report that QU induced cytochrome c-dependent apoptotic signaling cascade, which may be dependent on its role as a PLA-2 inhibitor. This apoptotic mechanism induced by QU may contribute to its known chemotherapeutic effects.
In order to investigate whether phospholipase C (PLC) activity in oat celIs is regulated by Gprotein, we have characterized PLC in plasma membranes of oat tissues. To identify the purified plasma membrane, $K^+$-stimulated, $Mg^{2+}$-dependent ATPase activity was measured. The activity of ATPase was shown to be proportional to the concentration of membrane protein. To examine the PLC activity regulated by G-protein, we used the inside-out and outside-out plasma membrane mixture isolated from the oat cells. The plasma membrane mixture showed higher PLC activity than the one of the outside-out plasma membrane. This suggests that PLC activity is located at the cytoplasmic surface of plasma membrane. PLC activity in plasma membrane mixture was dependent on $Ca^{2+}$ with maximum activity at 100 ${\mu}m$$Ca^{2+}$ and it was inhibited by 1 mM EGTA. Using Sep-pak $Accell^{TM}$ Plus QMA chromatography, we found that inositol 1,4,5-trisphosphate ($IP_3$) was produced in the presence of 10 ${\mu}m$$Ca^{2+}$. The PLC activity in the membrane was enhanced by an activator of G-protein ($GTP{\gamma}S$) and not by an inhibitor ($GDP{\beta}S$). This indicates that a G-protein is involved in the activation of PLC in the plasma membrane of oat cells.
The present study showed that receptor-mediated activation of rabbit kidney proximal tubule cells by angiotensin II, the $Ca^{2+}$ ionophore A23187, or the protein kinase C activator phorbol myristate acetate (PMA) all stimulated phospholipase D (PLD). This was demonstrated by the increased formation of phosphatidic acid, and in the presence of 0.5% ethanol, phosphatidylethanol (PEt) accumulation. Angiotensin II leads to a rapid increase in phosphatidic acid and diacylglycerol, and phosphatidic acid formation preceeded the formation of diacylglycerol. This result suggests that some phosphatidic acid seems to be formed directly from phosphatidylcholine hydrolyzed by Pill. On the other hand, EGTA substantially attenuated angiotensin II and A23187-induced PEt formation, and when the cells were pretreated with verapamil angiotensin II-induced Pill activation was completely abolished. These results provide the evidence that calcium ion influx is essential for the agonist-induced Pill activation. In addition, staurosporine, an inhibitor of protein kinase C, strongly inhibited PMA-induced PEt formation, but was ineffective on angiotensin II-induced PEt accumulation. $GTP{\gamma}S$ also stimulates PEt formation in digitonin-permeabilized cells, but pretreatment of the cells with pertussis toxin failed to suppress angiotensin II-induced PEt formation. From these results, we conclude that in the rabbit kidney proximal tubule cells the mechanisms of angiotensin II- and PMA-induced Pill activation are different from each other and mediated via a pertussis toxin-insensitive trimeric G protein.
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