JHL45, a novel immune modulator for anti-atopic dermatitis and allergic airway disease, was synthesized from decursin isolated from Angelica gigas. In order to conduct a pharmacokinetic study of JHL45, an analytical method, ideally one that uses a minimal amount of biological sample must first be validated. In this study, a HPLC-MS/MS method was developed and validated for the quantification of JHL45 and its major metabolite, (+)-decursinol, from 10 ${\mu}L$ of rat plasma. JHL45 was stable under the analysis conditions, and intra- and inter-day accuracies exceeded 90.06%, with a precision variability ${\leq}$ 13.16% for each analyte. The mean values for Cmax, AUC8h, half-life of JHL45 in rats after intravenous administration of 5 mg/kg JHL45 were 24.59 μg/mL, 10.02 ${\mu}g{\cdot}h/mL$, and 1.88 h, respectively. The validated method herein will be useful for further pharmacokinetic studies of JHL45, as well as in preclinical and clinical phases.
Pharmacokinetic parameters of aminoglycosides are dependent on renal function, sex, age, hematocrit, fever, lean body weight (LBW) and disease states, etc. Therefore, the individual pharmacokinetic parameters such as half life $(t^{1/2})$ and volume of distribution(Vd) are needed to achieve optimal therapy. However these parameters had not been determined in Koreans. The purpose of this study was to evaluate the Vd and $t^{1/2}$ of amikacin in Korean patients who had normal renal function, to compare the mean values of study group with that reported in the literature and to compare the measured $t^{1/2}$ with the expected $t^{1/2}$ based on actual body weight (ABW), LBW and ideal body weight (IBW), respectively. Based on data, the Vd was greater than the literature and $t^{1/2}$ was similar to the literature. The predicted $t^{1/2}$ based on IBW was the closest to actual $t^{1/2}$. And postpartum patients had greater Vd than other group and had lower correlation between actual elimination rate constant and calculated creatinine clearance but higher correlation between actual elimination rate constant and Vd than other group.
Fixed-dose combinations development requires pharmacokinetic drugdrug interaction (DDI) studies between active ingredients. For some drugs, pharmacokinetic properties such as long half-life or delayed distribution, make it difficult to conduct such clinical trials and to estimate the exact magnitude of DDI. In this study, the conventional (non-compartmental analysis and bioequivalence [BE]) and model-based analyses were compared for their performance to evaluate DDI using amlodipine as an example. Raw data without DDI or simulated data using pharmacokinetic models were compared to the data obtained after concomitant administration. Regardless of the methodology, all the results fell within the classical BE limit. It was shown that the model-based approach may be valid as the conventional approach and reduce the possibility of DDI overestimation. Several advantages (i.e., quantitative changes in parameters and precision of confidence interval) of the model-based approach were demonstrated, and possible application methods were proposed. Therefore, it is expected that the model-based analysis is appropriately utilized according to the situation and purpose.
Proceedings of the Korean Society of Toxicology Conference
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2006.11a
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pp.80-86
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2006
Bioequivalence is a term in pharmacokinetics used to access the expected in vivo biological equivalence of two proprietary preparations of a drug. Bioequivalence studies are usually performed for generic drugs. Two pharmaceutical products are bioequivalent if they are pharmaceutically equivalent and their bioavailabilioes after administration in the same molar dose are similar. Bioequivalence is usually accessed by single dose in vivo studies in healthy volunteers and the reference product is usually the innovator product that is marketed. Regulatory definition of bioequivalence is based on the statistical analysis of thebioavailability of the reference and test product. In general, two products are evaluated as bioequivalent if the 90% confidence interval of the relative mean Cmaxand AUC of the test to reference product are within 80.00% to 125.00% in the fasting state. Key process in bioequivalence study is development and validation of bioanalytical method, determination of the drug concentration in the biosamples (usually plasma or serum) obtained from volunteers, calculation of the pharmacokinetic parameters and statistical analysis of the pharmacokinetic parameters. Although current guidelines and regulations do not require the bioequivalence studies to be done under good laboratory practice (CLP), the issues to perform the bioequivalence studies under GLP environment is emerged both from the regulatory and industry side. GLP perspectives of bioequivalence studiesare needed to be discussed in respect to achieve quality assurance in bioequivalence studies.
A rapid and simple LC-MS/MS analytical method in determining Jaspine B has been developed and validated in rat plasma. The standard curve value was 25 - 5000 ng/mL and the linearity, inter-day and intra-day accuracy and precision were within 15.0 % of relative standard deviation (RSD). The mean recoveries of Jaspine B ranged from 87.5 % to 91.2 % with less than 3.70 % RSD and the matrix effects ranged from 91.1 % to 108.2 % with less than 2.6 % RSD. The validated LC-MS/MS analytical method of Jaspine B was successfully applied to investigate the dose-escalated pharmacokinetic study of Jaspine B in rats following an intravenous injection of Jaspine B at a dose range of 1 - 10 mg/kg. The initial plasma concentrations and area under plasma concentration curves showed a good correlation with intravenous Jaspine B dose, indicating the dose independent pharmacokinetics of Jaspine B in rats. In conclusion, this analytical method for Jaspine B can be easily applied in the bioanalysis and pharmacokinetic studies of Jaspine B, including its administration at multiple therapeutic doses, or for making pharmacokinetic comparisons for the oral formulations of Jaspine B in small experimental animals as well as in vivo pharmacokinetic-pharmacodynamic correlation studies.
Cho, Kyung Hee;Lee, Hee Joo;Choie, Hyung Sik;Lee, Kyoung Ryul;Dueker, Stephen R.;Shin, Young G.
YAKHAK HOEJI
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v.57
no.6
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pp.412-419
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2013
Drug discovery and development processes are time consuming and costly endeavors. It has been reported that on average it takes 10 to 15 years and costs more than $ 1billion to bring a molecule from discovery to market. Compounds fail for various reasons but one of the significant reasons that accounts for failures in clinical trials is poor prediction/understanding of pharmacokinetics and drug metabolism in human. In an effort to improve the number of compounds that exhibit optimal absorption, distribution, metabolism, elimination (ADME), and pharmacokinetic properties in human, drug metabolism, pharmacokinetic scientists have been continually developing new technologies and compound screening strategies. Over the last few years, accelerator mass spectrometry (AMS) and its applications to preclinical/clinical pharmacokinetics and ADME studies have significantly increased, particularly for new chemical/biological entities that are difficult to support with conventional radiolabel studies. In this review, the application of AMS for micro-dosing, micro-tracer absolute bioavailability, mass balance and metabolite profiling studies will be discussed.
Nam, So Jeong;Lee, Taeho;Choi, Min-Koo;Song, Im-Sook
Mass Spectrometry Letters
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v.9
no.2
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pp.61-65
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2018
KPLA-012, a benzopyranyl 1,2,3-triazole compound, is considered a potent $HIF-1{\alpha}$ inhibitor based on the chemical library screening, and is known to exhibit anti-angiogenetic and anti-tumor progressive effects. The aim of this study was to investigate the pharmacokinetic properties of KPLA-012 in ICR mice and to investigate in vitro characteristics including the intestinal absorption, distribution, metabolism, and excretion of KPLA-012. The oral bioavailability of KPLA-012 was 33.3% in mice. The pharmacokinetics of KPLA-012 changed in a metabolism-dependent manner, which was evident by the low recovery of parent KPLA-012 from urine and feces and metabolic instability in the liver microsomes. However, KPLA-012 exhibited moderate permeability in Caco-2 cells ($3.1{\times}10^{-6}cm/s$) and the metabolic stability increased in humans compared to that in mice (% remaining after 1 h; 47.4% in humans vs 14.8% in mice). Overall, the results suggest that KPLA-012 might have more effective pharmacokinetic properties in humans than in mice although further studies on its metabolism are necessary.
For the effective administration of naloxone, we attempted to investigate the naloxone sustained-release implants. Using the biodegradable polymer, poly[(diethyl glutamate)-co-(ethyl glycinate)phosphazenes](PGGP), the implantable devices containing naloxone hydrochloride(NLX HCl) and naloxone base(NLX) were prepared. The release rates of NLX and NLX HCl were compared. Influences of NLX contents on release rates were examined. For pharmacokinetic studies, NLX and NLX HCl loaded devices were implanted subcutaneously in rabbits and then the plasma concentrations of NLX were determined by HPLC(ECD). NLX-containing devices were implanted with various doses and pharmacokinetic parameters according to dose were calculated. The relative bioavailabilities were evaluated and compared. Incorporation of NLX in the polymer leaded to a slow release. There were no differences of release rates based on drug contents. In pharmacokinetic parameters determined in 216 hours, NLX loaded devices resulted in enhanced bioavailability with the higher AUC (p<0.01) than NLX HCl loaded devices and MRT was significantly (p<0.05) increased. This result demonstrates that NLX is more suitable for sustained release devices than NLX HCl. Therefore it is anticipated that the effective concentrations of naloxone could be maintained for longer periods and bioavailabilities could be improved by naloxone sustained-release implants, with varying drug base/hydrochloride.
A rapid, selective and sensitive reversed-phase HPLC method for the determination of glipizide in human serum was validated and applied to the pharmacokinetic study of glipizide. Glipizide and internal standard, tolbutamide, were extracted from human serum by liquid-liquid extraction with benzene and analyzed on a Nova Pak $C_{18}\;60{\AA}$ column with the mobile phase of acetonitrile-potassium dihydrogen phosphate (10 mM, pH 3.5) (4:6, v/v). Detection wavelength of 275 nm and flow rate of 0.7 ml/min were fixed for the study. The assay robustness for the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate was confirmed by $3^3$ factorial design using a fixed glipizide concentration (500 ng/ ml) with respect to its peak area and retention time. And also, the ruggedness of this method was investigated at three different laboratories using same quality control (QC) samples. This method showed linear response over the concentration range of 10-1000 ng/ml with correlation coefficient greater than 0.999. The lower limit of quantitation using 0.5 ml of serum was 10.0 ng/ml, which was sensitive enough for pharmacokinetic studies. The overall accuracy of the quality control samples ranged from 82.6 to 105.0% for glipizide with overall precision (% C.V.) being 1.13-13.20%. The percent recovery for human serum was in the range of 85.2 93.5%. Stability studies showed that glipizide was stable during storage, or during the assay procedure in human serum. The peak area and retention time of glipizide were not significantly affected by the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate under the conditions studied. This method showed good ruggedness (within 15% C.V.) and was successfully used for the analysis of glipizide in human serum samples for the pharmacokinetic studies at three different laboratories, demonstrating the suitability of the method.
A rapid, selective and sensitive reversed-phase HPLC method for the determination of a major metabolite of terfenadine, fexofenadine, in human serum was developed, validated, and applied to the pharmacokinetic study of terfenadine. Fexofenadine and internal standard, haloperidol were extracted from human serum by liquid-liquid extraction with acetonitrile and analyzed on a $Symmetry^{TM}$ C8 column with the mobile phase of 1% triethylamine phosphate (pH 3.7)-acetonitrile (67:33, v/v, adjusted to pH 5.6 with triethylamine). Detection wavelength of 230 nm for excitation, 280 nm for emission and flow rate of 1.0 mL/min were fixed for the study. The assay robustness for the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate was confirmed by $3^{3}$ factorial design using a fixed fexofenadine concentration (50 ng/mL) with respect to its peak area and retention time. In addition, the ruggedness of this method was investigated at three different laboratories using same quality control (QC) samples. This method showed linear response over the concentration range of 10-500 ng/mL with correlation coefficients greater than 0.999. The lower limit of quantification using 0.5 mL of serum was 10 ng/mL, which was sensitive enough for the pharmacokinetic studies of terfenadine. The overall accuracy of the quality control samples ranged from 95.70 to 114.58% for fexofenadine with overall precision (% C.V.) being 3.53-14.39%. The relative mean recovery of fexofenadine for human serum was 90.17%. Stability studies (freeze-thaw, short-term, extracted serum sample and stock solution) showed that fexofenadine was stable during storage, or during the assay procedure in human serum. However, the storage at $-70^{\circ}C$ for 4 weeks showed that fexofenadine was not stable. The peak area and retention time of fexofenadine were not significantly affected by the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate under the conditions studied. This method showed good ruggedness (within 15% C.V.) and was successfully used for the analysis of fexofenadine in human serum samples for the pharmacokinetic studies of orally administered Tafedine tablet (60 mg as terfenadine) at three different laboratories, demonstrating the suitability of the method.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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