Kim, In-Seop;Choi, Yong-Woon;Kang, Yong;Sung, Hark-Mo;Sohn, Ki-Whan;Kim, Yong-Sung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.7
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pp.1317-1325
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2008
Viral safety is an important prerequisite for clinical preparations of plasma-derived pharmaceuticals. One potential way to increase the safety of therapeutic biological products is the use of a virus-retentive filter. In order to increase the viral safety of human antihemophilic factor IX, particularly in regard to non-enveloped viruses, a virus removal process using a polyvinylidene fluoride membrane filter (Viresolve NFP) has been optimized. The most critical factor affecting the filtration efficiency was operating pH and the optimum pH was 6 or 7. Flow rate increased with increasing operating pressure and temperature. Recovery yield in the optimized production-scale process was 96%. No substantial changes were observed in the physical and biochemical characteristics of the filtered factor IX in comparison with those before filtration. A 47-mm disk membrane filter was used to simulate the process performance of the production-scale cartridges and to test if it could remove several experimental model viruses for human pathogenic viruses, including human hepatitis A virus (HAV), porcine parvovirus (PPV), murine encephalomyocarditis virus (EMCV), human immunodeficiency virus type 1 (HIV), bovine viral diarrhea virus (BVDV), and bovine herpes virus (BHV). Non-enveloped viruses (HAV, PPV, and EMCV) as well as enveloped viruses (HIV, BVDV, and BHV) were completely removed during filtration. The log reduction factors achieved were $\geq$6.12 for HAV, $\geq$4.28 for PPV, $\geq$5.33 for EMCV, $\geq$5.51 for HIV, $\geq$5.17 for BVDV, and $\geq$5.75 for BHV. These results indicate that the virus filtration process successfully improved the viral safety of factor IX.
Kim, In-Seop;Choi, Yong-Woon;Kang, Yong;Sung, Hark-Mo;Shin, Jeong-Sup
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.5
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pp.997-1003
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2008
Viral safety is a prerequisite for manufacturing clinical antihemophilic factor VIII concentrates from human plasma. With particular regard to the hepatitis A virus (HAV), a terminal dry-heat treatment ($100^{\circ}C$ for 30 min) process, following lyophilization, was developed to improve the virus safety of a solvent/detergent-treated antihemophilic factor VIII concentrate. The loss of factor VIII activity during dry-heat treatment was of about 5%. No substantial changes were observed in the physical and biochemical characteristics of the dry-heat-treated factor VIII compared with those of the factor VIII before dry-heat treatment. The dry-heat-treated factor VIII was stable for up to 24 months at $4^{\circ}C$. The dry-heat treatment after lyophilization was an effective process for inactivating viruses. The HAV, murine encephalomyocarditis virus (EMCV), and human immunodeficiency virus (HIV) were completely inactivated to below detectable levels within 10 min of the dry-heat treatment. Bovine herpes virus (BHV) and bovine viral diarrhea virus (BVDV) were potentially sensitive to the treatment. However porcine parvovirus (PPV) was slightly resistant to the treatment. The log reduction factors achieved during lyophilization and dry-heat treatment were ${\geq}5.55$ for HAV, ${\geq}5.87$ for EMCV, ${\geq}5.15$ for HIV, 6.13 for BHV, 4.46 for BVDV, and 1.90 for PPV. These results indicate that dry-heat treatment improves the virus safety of factor VIII concentrates, without destroying the activity. Moreover, the treatment represents an effective measure for the inactivation of non-lipid-enveloped viruses, in particular HAV, which is resistant to solvent/detergent treatment.
We evaluated the patterns of serology and fecal viral shedding for any differences by hemagglutination inhibition (HI) and real-time PCR on Korean CPV-2 isolates (CPV-2a-I, CPV-2a-V and CPV-2b). We successfully detected fecal viral shedding from samples extracted 2-3 d.p.i., regardless of the onset of clinical signs. In addition, the pattern of viral shedding differed depending on the CPV-2 isolates used for inoculation. We also observed differences in the serological pattern that was also depended on the CPV-2 isolates inoculated. The onset and amount of fecal viral shedding were not correlated with the level of antibody titers in this study. Our study is a valuable resource for understanding the different pathobiology of the CPV-2 isolates and the correlation between the patterns of serum antibody titer and fecal viral shedding.
This paper reports a presumptive severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) infection in a cat. A cat with respiratory disease living with three individuals with coronavirus disease 2019 showed bilateral ground-glass opacities in the lung on X-ray and computed tomography. The clinical swabs were negative for SARS-CoV-2 RNA, but the serum was positive for SARS-CoV-2 antibodies. Interstitial pneumonia and prominent type 2 pneumocyte hyperplasia were noted on histopathology. Respiratory tissues were negative for SARS-CoV-2 RNA or antigen, but the cat was positive for feline parvovirus DNA. In conclusion, the respiratory disease and associated pathology in this cat could have been due to exposure to SARS-CoV-2.
Rabid raccoon dogs (Nyctereutes procyonoides koreensis) have been responsible for animal rabies in South Korea since the 1990s. A recombinant rabies vaccine strain, designated as ERAGS, was constructed for use as a bait vaccine. Therefore, new means of differentiating ERAGS from other rabies virus (RABV) strains will be required in biological manufacturing and diagnostic service centers. In this study, we designed two specific primer sets for differentiation between ERAGS and other RABVs based on mutation in the RABV glycoprotein gene. Polymerase chain reaction analysis of the glycoprotein gene revealed two DNA bands of 383 bp and 583 bp in the ERAGS strain but a single DNA band of 383 bp in the field strains. The detection limits of multiplex reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) were 80 and 8 FAID50/reaction for the ERAGS and Evelyn-Rokitnicki-Abelseth strains, respectively. No cross-reactions were detected in the non-RABV reference viruses, including canine distemper virus, parvovirus, canine adenovirus type 1 and 2, and parainfluenza virus. The results of multiplex RT-PCR were 100% consistent with those of the fluorescent antibody test. Therefore, one-step multiplex RT-PCR is likely useful for differentiation between RABVs with and those without mutation at position 333 of the RABV glycoprotein gene.
Hyun Jung Gye;Su-kyoung Kim;Hee Woong Kang;Hyun Mi Jung
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.56
no.1
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pp.133-139
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2023
The advantage of biofloc technology (BFT) in aquaculture is in the prevention of pathogenic transmission. In this study, we performed an investigation on viral, bacterial, and microsporidian parasite infections targeting a total of 194 whiteleg shrimp Litopenaeus vannamei reared in seven BFT-farms on the west coast of Korea in 2021. Hepatopancreatic and cuticular epithelium and pereiopods tissues of shrimp were tested for the four pathogens, Enterocytozoon hepatopenaei (EHP), Vibrio parahaemolyticus causing Acute Hepatopancreatic necrosis disease (VPAHPND), white spot syndrome virus (WSSV), and hepatopancreatic parvovirus (HPV). The microsporidian parasite EHP was detected in the hepatopancreatic tissue of BFT whiteleg shrimp in the Ganghwa region, whereas no other pathogenic bacteria or virus was detected on the shrimp in the seven BFT-farms. As a result of bacterial flora in the rearing water of BFT whiteleg shrimp using DNA microbiome technology, V. chemaguriensis and V. alfacsensis were contained at 0.05% and 0.01%, respectively, but no VPAHPND was detected. These findings will serve as a basis for supporting safe BFT-aquaculture of whiteleg shrimp.
Bae, Jung Eun;Kim, Chan Kyung;Kim, Sungpo;Yang, Eun Kyung;Kim, In Seop
Korean Journal of Microbiology
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v.48
no.4
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pp.314-318
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2012
Most types of collagen used for biomedical applications, such as cell therapy and tissue engineering, are derived from animal tissues. Therefore, special precautions must be taken during the production of these proteins in order to assure against the possibility of the products transmitting infectious diseases to the recipients. The ability to remove and/or inactivate known and potential viral contaminants during the manufacturing process is an ever-increasingly important parameter in assessing the safety of biomedical products. The purpose of this study was to evaluate the efficacies of the 70% ethanol treatment and pepsin treatment at pH 2.0 for the inactivation of bovine viruses during the manufacture of collagen type I from bovine hides. A variety of experimental model viruses for bovine viruses including bovine herpes virus (BHV), bovine viral diarrhea virus (BVDV), bovine parainfluenza 3 virus (BPIV-3), and bovine parvovirus (BPV), were chosen for the evaluation of viral inactivation efficacy. BHV, BVDV, BPIV-3, and BPV were effectively inactivated to undetectable levels within 1 h of 70% ethanol treatment for 24 h, with log reduction factors of ${\geq}5.58$, ${\geq}5.32$, ${\geq}5.11$, and ${\geq}3.42$, respectively. BHV, BVDV, BPIV-3, and BPV were also effectively inactivated to undetectable levels within 5 days of pepsin treatment for 14 days, with the log reduction factors of ${\geq}7.08$, ${\geq}6.60$, ${\geq}5.60$, and ${\geq}3.59$, respectively. The cumulative virus reduction factors of BHV, BVDV, BPIV-3, and BPV were ${\geq}12.66$, ${\geq}11.92$, ${\geq}10.71$, and ${\geq}7.01$. These results indicate that the production process for collagen type I from bovine hides has a sufficient virus-reducing capacity to achieve a high margin of virus safety.
Kim, Dong-Myong;Kang, Ho-Chang;Cha, Hyung-Joon;Bae, Jung Eun;Kim, In Seop
Korean Journal of Microbiology
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v.52
no.2
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pp.140-147
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2016
A process for manufacturing virally-safe porcine bone hydroxyapatite (HA) has been developed to serve as advanced xenograft material for dental applications. Porcine bone pieces were defatted with successive treatments of 30% hydrogen peroxide and 80% ethyl alcohol. The defatted porcine bone pieces were heat-treated in an oxygen atmosphere box furnace at $1,300^{\circ}C$ to remove collagen and organic compounds. The bone pieces were ground with a grinder and then the bone powder was sterilized by gamma irradiation. Morphological characteristics such as SEM (Scanning Electron Microscopy) and TEM (Transmission Electron Microscopy) images of the resulting porcine bone HA (THE Graft$^{(R)}$) were similar to those of a commercial bovine bone HA (Bio-Oss$^{(R)}$). In order to evaluate the efficacy of $1,300^{\circ}C$ heat treatment and gamma irradiation at a dose of 25 kGy for the inactivation of porcine viruses during the manufacture of porcine bone HA, a variety of experimental porcine viruses including transmissible gastroenteritis virus (TGEV), pseudorabies virus (PRV), porcine rotavirus (PRoV), and porcine parvovirus (PPV) were chosen. TGEV, PRV, PRoV, and PPV were completely inactivated to undetectable levels during the $1,300^{\circ}C$ heat treatment. The mean log reduction factors achieved were $${\geq_-}4.65$$ for TGEV, $${\geq_-}5.81$$ for PRV, $${\geq_-}6.28$$ for PRoV, and $${\geq_-}5.21$$ for PPV. Gamma irradiation was also very effective at inactivating the viruses. TGEV, PRV, PRoV, and PPV were completely inactivated to undetectable levels during the gamma irradiation. The mean log reduction factors achieved were $${\geq_-}4.65$$ for TGEV, $${\geq_-}5.87$$ for PRV, $${\geq_-}6.05$$ for PRoV, and $${\geq_-}4.89$$ for PPV. The cumulative log reduction factors achieved using the two different virus inactivation processes were $${\geq_-}9.30$$ for TGEV, $${\geq_-}11.68$$ for PRV, $${\geq_-}12.33$$ for PRoV, and $${\geq_-}10.10$$ for PPV. These results indicate that the manufacturing process for porcine bone HA from porcine-bone material has sufficient virus-reducing capacity to achieve a high margin of virus safety.
Acellular dermal matrix (ADM), produced by decellularization from human cadaveric skin, has been used for various biomedical applications. A manufacturing process for ADM ($SureDerm^{TM}$) using tri-n-butyl phospahate (TnBP) and deoxycholic acids as the decellularization solution has been developed. The manufacturing process for $SureDerm^{TM}$ has 70% ethanol treatment and ethylene oxide gas sterilization for inactivating infectious microorganisms. The purpose of this study was to examine the efficacy of the 70% ethanol treatment, decellularization process using 0.1% TnBP and 2% deoxycholic acids, and EO gas sterilization process in the inactivation of viruses. A variety of experimental model viruses for human pathogens, including the human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1), bovine herpes virus (BHV), bovine viral diarrhoea virus (BVDV), hepatitis A virus (HAV), and porcine parvovirus (PPV) were all selected for this study. Enveloped viruses such as HIV-1, BHV, and BVDV were effectively inactivated to undetectable levels by 70% ethanol treatment. However HAV and PPV showed high resistance to 70% ethanol treatment with the log reduction factors of 1.85 and 1.15, respectively. HIV-1, BHV, and BVDV were effectively inactivated to undetectable levels by decellularization process. All the viruses tested were completely inactivated to undetectable levels by EO gas treatment. The cumulative log reduction factors of HIV-1, BHV, BVDV, HAV, and PPV were $\geq12.71$, $\geq18.08$, $\geq14.92$, $\geq6.57$, and $\geq7.18$, respectively. These results indicate that the production process for $SureDerm^{TM}$ has a sufficient virus-reducing capacity to achieve a high margin of the virus safety.
Kim, In-Seop;Choi, Yong-Woon;Lee, Sung-Rae;Cho, Hang-Bok;Eo, Ho-Gueon;Han, Sang-Woo;Chang, Chong-Eun;Lee, Soung-Min
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.11
no.4
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pp.619-627
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2001
n order to increase the virus safety of a human intravenous immunoglobulin (IVIg) that was manufactured by a successive process of cold ethanol fractionation, polyethylene glycol precipitation, and pasteurization ($60^{\circ}C$ heat treatment for 10h), a low pH incubation process (pH 3.9 at $25{\circ}C$ for 14 days) was employed as the final step. The efficacy and mechanism of the fraction III cold ethanol fractionation, pasteurization, and low pH treatment steps in the removal and/or inactivation of blood-borne viruses were closely examined. A variety of experimental model viruses for human pathogenic viruses, including the Bovine herpes virus (BHV), Bovine viral diarrhoea virus (BVDV), Murine encephalomyocarditis virus (EMCV), and Porcine parvovirus (PPV), were selected for this study. The mechanism of reduction for the enveloped viruses (BHV and BVDV) during fraction III fractionation was both inactivation and partitioning, however, it was partitioning in the case of the nonenveloped viruses (EMCV and PPV). The log reduction factors achieved during fraction III fractionation were ${\geqq}$6.7 for BHV, ${\geqq}4.7$ for BVDV, 4.5 for EMCV, and 4.4 for PPV. Pasteurization was found to be a robust and effective step in inactivating all the viruses tested. The log reduction factors achieved during the pasteurization process were ${\geqq}7.5$ for BHV, ${\geqq}4.8$ for BVDV, 3.0 for EMCV, and 3.3 for PPV. A low pH incubation was very effective in inactivating the enveloped viruses as well as EMCV. The log reduction factors achieved during low pH incubation were ${\geqq}7.4$ for BHV, ${\geqq}3.9$ for BVDV, 5.2 for EMCV, and 2.0 for PPV. These results indicate that the low pH treatment successfully improved the viral safety of the final products.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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