Porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) is the etiological agent of PRRS characterized by reproductive losses in sows and respiratory disorders in piglets. The PRRSV is a small enveloped virus containing a positive-sense, single-stranded RNA genome and divided into two genotype, type 1 (European) and type 2 (North American), respectively, by nucleotide identity. In this study, ORF7 gene of the type 1 and type 2 PRRSV was cloned and expressed in Baculovirus expression system. Also, monoclonal antibodies (MAbs) against ORF7 were produced and characterized. The expressed ORF7 proteins in the recombinant virus were confirmed by indirect fluorescence antibody (IFA) test using His6 and PRRSV-specific antiserum. A total of eight MAbs were produced and characterized. One (3G12) MAb was type 1 PRRSV ORF7-specific and two (6B10 and 16H8) were type 2 PRRSV ORF7-specific. Other five (1A1, 2A4, 4B4, 12C4 and 13F11) MAbs reacted with both type 1 and type 2 PRRSV. Some PRRSV ORF7-specific MAbs recognized the porcine tissues infected with PRRSV by IFA or immunohistochemistry (IHC) assay. From this experiment, it was confirmed that MAbs produced in this study were PRRSV ORF7-specific and could be used as reliable reagents for type 1/type 2 PRRSV detection.
In this study PRRSV was isolated from serum of an infected pig and designated as CNV-1, ORF4 gene was sequenced, and the nucleotide sequence, deduced amino acid sequence and the amino acid sequence of the neutralizing domain was compared with other PRRSV Strains. ORF4 gene of the Korean isolate PRRSV CNV-1 was shown to be 537bp in length, which is the same as US strain ISU55 but 21bp longer than another US strain MN1b, and 15bp shorter than European strain LV. The homologies of the nucleotide sequences between the Korean isolate CNV-1 and the US strains ISU55, MN1b and European strain LV were 91.8%, 88.1%, 67.6%, respectively, and the homologies of the deduced amino acid sequences were 94.4%, 84.4%, 68.5%, respectively. The neutralizing domain of the CNV-1 was shown to be 36 amino acids in length which is the same as ISU55, MN1b, but 4 amino acids shorter than that of the neutralizing domain reported in LV. The homologies of the amino acid sequences of the neutralizing domain between the Korean isolate CNV-1 and the US strains ISU55, MN1b and European strain LV were 92.5%, 85%, 57.5%, respectively. The molecular characteristics of ORF4 gene of the Korean isolate PRRSV CNV-1 shown in this study suggests that the CNV-1 is genetically closer to the US strains. Also the wide variation of the neutralizing domain between the CNV-1 and LV suggests that there is substantial immunogenic variation between the two strains.
Objective: Foot and mouth disease (FMD) and porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) are major diseases that interrupt porcine production. Because they are viral diseases, vaccinations are of only limited effectiveness in preventing outbreaks. To establish an alternative multi-resistant strategy against FMD virus (FMDV) and PRRS virus (PRRSV), the present study introduced two genetic modification techniques to porcine cells. Methods: First, cluster of differentiation 163 (CD163), the PRRSV viral receptor, was edited with the clustered regularly interspaced short palindromic repeats-CRISPR-associated protein 9 technique. The CD163 gene sequences of edited cells and control cells differed. Second, short hairpin RNA (shRNAs) were integrated into the cells. The shRNAs, targeting the 3D gene of FMDV and the open reading frame 7 (ORF7) gene of PRRSV, were transferred into fibroblasts. We also developed an in vitro shRNA verification method with a target gene expression vector. Results: shRNA activity was confirmed in vitro with vectors that expressed the 3D and ORF7 genes in the cells. Cells containing shRNAs showed lower transcript levels than cells with only the expression vectors. The shRNAs were integrated into CD163-edited cells to combine the two techniques, and the viral genes were suppressed in these cells. Conclusion: We established a multi-resistant strategy against viral diseases and an in vitro shRNA verification method.
To investigate the genotypic diversity of the porcine reproductive and respiratory syndrome viruses (PRRSV) in Korea, we examined 92 clinical samples from three provinces by RT-PCR and a nested PCR, and the complete open-reading frame 7 (ORF 7) sequences of 15 samples selected from 72 PCR-positive specimens were analyzed. When we compared nucleotide (amino acid) sequences of 80 isolates from Korea and overseas countries, the sequences of 7 samples belonged to North American (NA)-genotype, and those of 8 samples, to European (EU)-genotype. The nucleotide (amino acid) identities between two genotypes were 63.7% (59.8%) to 65.1% (63.1%). When compared with NA prototype VR-2332, the 7 strains of NA-genotype shared 89.8% (93.6%) to 91.2% (96.0%) identity of nucleotide (amino acid) sequence. The 8 strains of EU-type shared 93.6% (92.3%) to 94.3% (93.8%) identity of nucleotide (amino acid) sequence as compared to EU prototype Lelystad. In phylogenetic tree analysis by neighbor-joining method, all of the 8 EU-type strains were clustered into group 4 distinct from ED-prototype Lelystad (group 1). In NA-genotype, 24 domestic isolates reported previously and the 7 strains of NA-type determined in this study were clustered into group 1, while US prototype VR 2332 was classified into different group (group 2). These results suggest that emergence of EU-genotype and the dual-infection of NA- and EU-genotypes may be prevalent in the pig farms in Korea. The high degree of genetic diversity of field PRRSVs should be taken into consideration for control and preventive measures.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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