The enzyme squalene synthase (EC 2.5.1.21) catalyzes a reductive dimerization of two farnesyl diphosphate (FPP) molecules into squalene, a key precursor for the sterol and triterpene biosynthesis. A full-length cDNA encoding squalene synthase (designated as TcSqS) was isolated from Taxus cuspidata, a kind of important medicinal plants producing potent anti-cancer drug, taxol. The full-length cDNA of TcSqS was 1765 bp and contained a 1230 bp open reading frame (ORF) encoding a polypeptide of 409 amino acids. Bioinformatic analysis revealed that the deduced TcSqS protein had high similarity with other plant squalene synthases and a predicted crystal structure similar to other class I isoprenoid biosynthetic enzymes. Southern blot analysis revealed that there was one copy of TcSqS gene in the genome of T. cuspidata. Semi-quantitative RT-PCR analysis and northern blotting analysis showed that TcSqS expressed constitutively in all tested tissues, with the highest expression in roots. The promoter region of TcSqS was also isolated by genomic walking and analysis showed that several cis-acting elements were present in the promoter region. The results of treatment experiments by different signaling components including methyl-jasmonate, salicylic acid and gibberellin revealed that the TcSqS expression level of treated cells had a prominent diversity to that of control, which was consistent with the prediction results of TcSqS promoter region in the PlantCARE database.
As lipolytic enzymes, GDSL lipases play an important role in plant growth and development. In order to identify their functions and roles, the full-length cDNA of a GDSL lipase gene, designated BnLIP2, was isolated from Brassica napus L. BnLIP2 was 1,300 bp long, with 1,122 bp open reading frame (ORF) encoding 373 amino acid residues. Sequence analysis indicated that BnLIP2 belonged to GDSL family. Southern blot analysis indicated that BnLIP2 belonged to a small gene family in rapeseed genome. RT-PCR analysis revealed that BnLIP2 was a tissue-specific expressing gene during reproductive growth and strongly expressed during seed germination. BnLIP2 expression could not be detected until three days after germination, and it subsequently became stronger. The transcript of this gene was deficient in root of seedlings growing at different stages. When juvenile seedlings were treated by methyl jasmonate (MeJ), salicylic acid (SA) and naphthalene acetic acid (NAA), BnLIP2 expression could not be induced in root. Our study implicates that BnLIP2 probably plays an important role in rapeseed germination, morphogenesis, flowering, but independent of root growth and development.
Kim, Soon-Hag;Choi, Cheol-Young;Hwang, Joo-Yeon;Kim, Young-Youl;Park, Chan;Oh, Berm-Seok;Kimm, Ku-Chan;Scott A. Gahr;Sohn, Young-Chang
Journal of Aquaculture
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v.17
no.1
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pp.1-7
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2004
A rainbow trout uncoupling protein 3 (UCP3) cDNA clone, encoding a 310 amino acid protein, was cloned and sequenced from a liver cDNA library. Two different splice variants designated UCP3-vl and UCP3-v2, were identified through liver cDNA library screening using rainbow trout UCP3 cDNA clone as a probe. UCP3-vl has 3 insertions in the UCP3 cDNA: the first insertion (133 bp), the second (141 bp), and the third (370 bp) were located 126 bp, 334 bp and 532 bp downstream from the start codon, respectively. UCP3-v2 contained a single insertion, identical in sequence and location to the second insertion of UCP3-vl. UCP3, a mitochondrial protein, functions to modulate the efficiency of oxidative phosphorylation. UCP3 has been detected from heart, testis, spinal cord, eye, retina, colon, muscle, brown adipose tissue and white adipose tissue in mammalian animals. Human and rodent UCP3s are highly expressed in skeletal muscle and brown adipose tissue, while they show weak expression of UCP3 in heart and white adipose tissue. In contrast to mammalian studies, RT-PCR and Southern blot analysis of the rainbow trout demonstrated that UCP3 is strongly expressed in liver and heart. UCP3, UCP3-vl, and UCP3-v2 all contain an Ava III short interspersed element (SINE), located in the 3'untraslated region (UTR). PCR using primers from the Ava III SINE and the UCP3 3'UTR region indicates that the UCP3 cDNA is structurally conserved among salmonids and that these primers may be useful for salmonid species genotyping.
Park, Ji-Hyun;Lee, Su-Jin;Kim, Bo-Ryung;Woo, Eun-Teak;Lee, Ji-Sun;Han, Eun-Hyang;Lee, Youn-Hyung;Park, Young-Doo
Horticultural Science & Technology
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v.29
no.6
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pp.623-632
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2011
To increase the anti-carcinogens phenylethylisothiocyanate (PEITC), myrosinase (MYR), and glutathione S-transferase (GST), genes related to PEITC pathway were isolated and the gene expressions were regulated by Agrobacterium transformation. Isolated cDNAs, MYR, and GST genes were 1,647 bp and 624 bp, respectively, and the protein expression was confirmed through pET system. Thereafter, we constructed a sense-oriented over-expressing myrosinase (pBMY) and RNAi down-regulated GST (pJJGST) binary vectors for the Chinese cabbage transformation. After the transformation, thirteen over-expressing transgenic Chinese cabbage plants (IMS) with pBMY and five down-regulated ones (IGA) with pJJGST were selected by PCR analysis. Selected $T_0$ transgenic plants were generated to $T_1$ plants by self-pollination. Based on the Southern blot analysis on these $T_1$ transgenic plants, 1-4 copies of T-DNA were transferred to Chinese cabbage genome. Thereafter, RNA expression level of myrosinase gene or GST gene was analyzed through real-time RT PCR of IMS, IGA, and non-transgenic inbred lines. In case of IMS lines, myrosinase gene was increased 1.03-4.25 fold and, in IGA lines, GST gene was decreased by 26.42-42.22 fold compared to non-transgenic ones, respectively. Analysis of PEITC concentrations using GC-MS it showed that some IMS lines and some IGA lines increased concentrations of PEITC up to 4.86 fold and up to 3.89 fold respectively compared to wild type. Finally in this study IMS 1, 3, 5, 12, and 15 and IGA 1, 2, and 4 were selected as developed transgenic lines with increasing quantities of anti-carcinogen PEITC.
The objectives of this study were to isolate and the sequence of novel $F3'H$ gene related to an anthocyanin pathway, and to confirm the expression patterns of the gene involved in the flower color variations of chrysanthemum mutants. In this study, we isolated the full-length cDNAs and the genomic DNAs of an $F3'H$ gene from a wild type (WT) chrysanthemum (cv. Argus) and its three color mutants. The sequence analysis revealed a putative open reading frame of 1,527 bp that encodes a polypeptide of 509 amino acids. Sequence homology ranged from 97% to 99% between 'Argus' and its three color mutants. The sequence analysis from the genomic DNA revealed that the chrysanthemum $DgF3'H$ gene consisted of three exons and two introns spanning a 3,830 bp length. The sizes of the gene for three mutants ranged from a shorter size of 3,828 bp to a longer size of 3,838 bp when compared to the size of WT. The total size of the two introns was 2,157 bp for WT, but those for three color mutants ranged from 2,154 bp to 2,159 bp. A result of an RT-PCR analysis indicated that the color variations of the mutants AM1 and AM2 can be partly explained by the structural modification derived from the sequencial changes in the gene caused by gamma ray. A Southern blot analysis revealed that the $DgF3'H$ gene existing as multiple copies in the chrysanthemum genome. A systemic study will be further needed to provide a genetic mechanism responsible for the color mutation and to uncover any involvement of genetic elements for the expression of the $DgF3'H$ gene for the color variation in chrysanthemum.
This experiment was carried out to produce herbicide resistant potatoes hawing only chimeric phosphinothricin acetyltransferase (PAT) genes without using antibiotic selectable marker. The pDY502 vector having only PAT gene was reconstructed for transformation of potato. The reconstructed vector was introduced to Agrobacterium tumefaciens MP90 disarmed, and they were used for potato transformation. Hormonal requirement for plant regeneration from leaves and stem explants of potato was investigated. From this experiment, MS medium treated with IBA 0.1 mg/L + BA 0.5 mg/L was the best for potato regeneration, and the ratio of shoot regeneration was 54% for leaf and 46% for stem in that condition. For transformation, explants of potato leaves and stems were cocultured with A. tumefaciens MP90 containing reconstructed vector harvoring only PAT gene. When the potato explants were placed on various concentrations of bialaphos and all the potato explants were dead on medium with over 5.0mg/L bialaphos. By this selection methods, the explants cocultured with Agrobacterium produced the putative transgenic shoots on medium with 5mg/L bialaphos treatment after 3-4 weeks. Second selection was performed by transferring the shoot tips of putative transgenic to medium containing 20mg/L of bialaphos. The shoot tips grew well on the second selection medium, indicating the production of successful transgenic plants. But normal shoots were dead in same cytotoxic medium. Incorporation of the PAT gene into transgenic potatos were confirmed by PCR analysis of DNA and Southern hybridization. These results show that the PAT gene can serve as a selectable marker and herbicide resistant genes for transformation of potato.
Kim, Hye Min;Lee, Sang Mi;Park, Hyo Young;Kang, Man-Jong
Reproductive and Developmental Biology
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v.38
no.2
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pp.71-77
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2014
The specific genetic modification in porcine somatic cells by gene targeting has been very difficult because of low efficiency of homologous recombination. To improve gene targeting, we designed three kinds of knock-out vectors with ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase gene (${\alpha}1,3$-GT gene), DT-A/pGT5'/neo/pGT3', DT-A/NLS/pGT5'/neo/pGT3' and pGT5'/neo/ pGT3'/NLS. The knock-out vectors consisted of a 4.8-kb fragment as the 5' recombination arm (pGT5') and a 1.9-kb fragment as the 3' recombination arm (pGT3'). We used the neomycin resistance gene (neo) as a positive selectable marker and the diphtheria toxin A (DT-A) gene as a negative selectable marker. These vectors have a neo gene insertion in exon 9 for inactivation of ${\alpha}1,3$-GT locus. DT-A/pGT5'/neo/pGT3' vector contain only positive-negative selection marker with conventional targeting vector. DT-A/NLS/pGT5'/neo/pGT3' vector contain positive-negative selection marker and NLS sequences in upstream of 5' recombination arm which enhances nuclear transport of foreign DNA into bovine somatic cells. pGT5'/neo/pGT3'/NLS vector contain only positive selection marker and NLS sequence in downstream of 3' recombination arm, not contain negative selectable marker. For transfection, linearzed vectors were introduced into porcine ear fibroblasts by electroporation. After 48 hours, the transfected cells were selected with $300{\mu}g/ml$ G418 during 12 day. The G418-resistant colonies were picked, of which 5 colonies were positive for ${\alpha}1,3$-GT gene disruption in 3' PCR and southern blot screening. Three knock-out somatic cells were obtained from DT-A/NLS/ pGT5'/neo/pGT3' knock-out vector. Thus, these data indicate that gene targeting vector using nuclear localization signal and negative selection marker improve targeting efficiency in porcine somatic cells.
Xu, Feng;Cheng, Hua;Cai, Rong;Li, Lin Ling;Chang, Jie;Zhu, Jun;Zhang, Feng Xia;Chen, Liu Ji;Wang, Yan;Cheng, Shu Han;Cheng, Shui Yuan
Molecules and Cells
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v.26
no.6
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pp.536-547
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2008
Anthocyanidin synthase (ANS, leucoanthocyanidin oxygenase), a 2-oxoglutarate iron-dependent oxygenase, catalyzed the penultimate step in the biosynthesis of the anthocyanin class of flavonoids, from the colorless leucoanthocyanidins to the colored anthocyanidins. The full-length cDNA and genomic DNA sequences of ANS gene (designated as GbANS) were isolated from Ginkgo biloba for the first time. The full-length cDNA of GbANS contained a 1062-bp open reading frame (ORF) encoding a 354-amino-acid protein. The genomic DNA analysis showed that GbANS gene had three exons and two introns. The deduced GbANS protein showed high identities to other plant ANSs. The conserved amino acids (H-X-D) ligating ferrous iron and residues (R-X-S) participating in 2-oxoglutarate binding were found in GbANS at the similar positions like other ANSs. Southern blot analysis indicated that GbANS belonged to a multi-gene family. The expression analysis by real-time PCR showed that GbANS expressed in a tissue-specific manner in G. biloba. GbANS was also found to be up-regulated by all of the six tested abiotic stresses, UV-B, abscisic acid, sucrose, salicylic acid, cold and ethylene, consistent with the promoter region analysis of GbANS. The recombinant protein was successfully expressed in E. coli strain with pET-28a vector. The in vitro enzyme activity assay by HPLC indicated that recombinant GbANS protein could catalyze the formation the cyanidin from leucocyanidin and conversion of dihydroquercetin to quercetin, suggesting GbANS is a bifunctional enzyme within the anthocyanidin and flavonol biosynthetic pathway.
Background: High risk human papillomaviruses (HPVs) are the leading cause of cervical cancer (CC) and Pap smear screening has not been successful in preventing CC in Tunisia. HPV vaccination that targets HPV16 and 18 offers a new efficient prevention tool. Identification of HPV types in CC is thus essential to determine the impact of HPV vaccine implementation. The aim of this study is to provide specific data from Tunisia. Materials and Methods: A total of 89 histological confirmed paraffin embedded samples isolated from patients with CC diagnosed between 2001 and 2011 were collected from five medical centres from Northern and Southern Tunisia. HPV DNA was detected using a nested PCR (MY09/MY11-GP5+/GP6+) and genotyping was assessed using a reverse blot line hybridisation assay that enables the detection of 32 HPV types. Results: HPV DNA was detected in all samples. Twelve high risk types were detected; HPV16 and/or 18 were predominant, accounting together for 92.1% of all the CC cases (HPV16: 83.1%). Single infections accounted for 48.8% of the cases and were mostly linked to HPV 16 (32.6%) and less frequently to HPV 18 (2.4%). The other high risk HPV single infections were linked to HPV 35 (4.6%), 45 (4.6%), 58 (2.3%) and 59 (2.3%). Multiple infections with mixing of 2 to 4 genotypes predominately featrued HPV16 and/or 18 with HPV 35 and 45 (96.6 %) and less frequently with HPV 59, 40, 66, 73 and 58. There was no statistically significant variation in the relative distribution of HPV types with age. Conclusions: These results strongly indicate that prophylactic HPV vaccines can have a major impact in preventing CC in Tunisia.
Camptothecin is an anti-cancer monoterpene indole alkaloid. The gene encoding 1-hydroxy-2-methyl-2-(E)-butenyl 4-diphosphate reductase (designated as CaHDR), the last catalytic enzyme of the MEP pathway for terpenoid biosynthesis, was isolated from camptothecin-producing Camptotheca acuminata. The full-length cDNA of CaHDR was 1686 bp encoding 459 amino acids. Comparison of the cDNA and genomic DNA of CaHDR revealed that there was no intron in genomic CaHDR. Southern blot analysis indicated that CaHDR belonged to a low-copy gene family. RT-PCR analysis revealed that CaHDR expressed constitutively in all tested plant organs with the highest expression level in flowers, and the expression of CaHDR could be induced by 100 ${\mu}M$ methyl-jasmonate (MeJA), but not by 100 mg/L salicylic acid (SA) in the callus of C. acuminata. The complementation of CaHDR in Escherichia coli ispH mutant MG1655 demonstrated its function.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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