It designed a study to examine the efficiency of DNA and RNA extraction from archival formalin-fixed, paraffin-embedded tissues using an non-heating and heating method. Archival paraffin blocks of liver, kidney, colon were randomly selected. Each paraffin block was prepared in 20 microtubes. For each paraffin blocks were tested non-heating DNA extraction to 10 microtubes and heating protocol under pH 7.0 and $100^{\circ}C$ to 10 microtubes. Evaluation of the results of DNA extraction was carried out by measuring concentration by UV spectrophotometry and then PCR amplification. DNA extraction content that non-heating method was liver $5{\pm}0.7{\mu}g/mL$, kidney $2{\pm}0.3{\mu}g/mL$, colon $6{\pm}0.4{\mu}g/mL$ and heating method was liver $12{\pm}0.6{\mu}g/mL$, kidney $7{\pm}0.5{\mu}g/mL$, colon $10.{\pm}0.3{\mu}g/mL$. Successful RNA extraction was observed, by ${\beta}$-actin amplification, in 46.7% sections for samples treated by the heating method versus 30.0% using non-heating DNA extraction. The extracted nucleic acid showed better values for samples heated at $100^{\circ}C$. Therefore heating extraction of nucleic acid is reliable, quick and efficiency.
A partial cDNA encoding a Korean radish isoperoxidase was obtained from a cDNA library prepared from 9 day old radish root. In order to obtain Korean radish isoperoxidase cDNA, 5' RACE (rapid amplification cDNA end) PCR was performed and a cDNA (prxK1) encoding a complete structural protein was obtained by RT (reverse transcription)-PCR. Sequence analysis revealed that the length of the cDNA was 945 base pairs, and that of the mRNA transcript was ca. 1.6 kb. The deduced amino acid of the protein were composed of 315 amino acid residues and the protein was 92% homologous to turnip peroxidase, and 46% to 50% homologous to other known peroxidases. The 945 bp cDNA encoding Korean radish isoperoxidase was overexpressed in Escherichia coli up to approximately 9% of total cellular protein. The recombinant fusion protein exhibited 43 kDa on SDS-PAGE analysis and the activity level of the recombinant nonglycosylated protein was two fold higher in IPTG induced cell extracts than that of uninduced ones.
Warts, or verrucae, are benign epithelial proliferations of the skin and mucosa caused by infection with human papillomaviruses (HPV). It is now recognized that there are many different HPV types. Especially type3 is most frequently observed in flat wart. Other types, such as type2, 10, 14, 27, 28, 29, 38, and 41 are rarely encounted in flat wart. We describe here a simple and economic method for detection and identification of epidermodysplasia verruciformis-associated HPV. The method is based on polymerase chain reaction (PCR) amplification and restriction analysis. The method has been developed with cloned HPV DNA and DNA from clinical samples. Clinical samples are from either frozen tissue or paraffin-embedded tissue. Genomic fragments were obtained from two different HPV types (3 and 10). The amplification fragments were identified by a form of miniature fingerprinting, with a set of restriction enzymes that gave a unique digestion pattern for each HPV type. We have tested 74 clinical samples. Only type3 among these clinical samples is detected, and one sample is involved in neither type3 nor type10.
Intraspecific genetic relationship of 19 variation types of the Yam (Dioscorea alata) classified by their external morphological characteristics such as leaf and tuber shape were assessed by DNA using random and specific primer. Twenty two out of 113 primers (100 random[10-mer] primers, two 15 mer [M13 core sequence, and (GGAT)$_4$ sequence]) had been used in PCR-amplification. Only 12 primers, however, were success in DNA amplification in all of the analyzed plants, resulting in 93 randomly and specifically amplified DNA fragments. The analyzed taxa showed very high polymorphisms(69 bands, 71.0 %), allowing individual taxon to be identified based on DNA fingerprinting. Monomorphic bands among total amplified DNA bands of each primer was low under the 50%. Similarity indices between accessions were computed from PCR(polymerase chain reaction) data, and genetic relationships among intraspecific variations were closely related at the levels ranging from 0.66 to 0.90. These DNA data were not matched well with those of morphological characters since they were divided into two major groups at the similarity coefficient value of 0.70. Therefore, Grouping of species into variation types by mainly morphological charactistics was suggested unreasonable.
Proceedings of the National Institute of Ecology of the Republic of Korea
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v.4
no.4
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pp.154-158
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2023
The Asiatic black bear, Ursus thibetanus, is among the most threatened or endangered species in Asia. For its conservation and management, sex identification of U. thibetanus using non-invasive samples (e.g., hair and/or feces) is potentially valuable. In this study, a non-invasive molecular method for sex identification of U. thibetanus samples collected from various countries was first utilized, and it was based on polymerase chain reaction (PCR) amplification of the amelogenin gene via PCRs. Thirty-three bear DNA samples, extracted not only from blood (n=9) but also from hair (n=18) and feces (n=6), were used. We performed sex-specific PCR amplifications of the amelogenin gene using a primer set, SE47 and SE48. The primer set could successfully amplify a single X-specific band for females and both X- and Y-specific bands for males from all blood (100%) and hair (100%) samples. In addition, the primer set could distinguish the sex of bears in four out of a total of six fecal samples (approximately 67%). This study's findings suggest that this molecular method can be applied to sex identification of Asiatic black bears from various Asian regions using non-invasive samples, such as hair and feces.
Background: Single nucleotide polymorphisms (SNPs) are widely used genetic markers with applications in human disease diagnostics, animal breeding, and evolutionary studies, but existing genotyping methods can be labor-intensive and costly. The aim of this study is to develop a simple and rapid method for identification of a single nucleotide change. Methods: A modified Polymerase Chain Reaction Amplification of Multiple Specific Alleles (PAMSA) and high resolution melt (HRM) analysis was performed to discriminate a bovine polymorphism in the NCAPG gene (rs109570900, 1326T > G). Results: The inclusion of tails in the primers enabled allele discrimination based on PCR product lengths, detected through agarose gel electrophoresis, successfully determining various genotypes, albeit with some time and labor intensity due to the use of relatively costly high-resolution agarose gels. Additionally, high-resolution melt (HRM) analysis with tailed primers effectively distinguished the GG genotype from the TT genotype in bovine muscle cell lines, offering a reliable way to distinguish SNP polymorphisms without the need for time-consuming AS-PCR. Conclusions: Our experiments demonstrated the importance of incorporating unique mismatched bases in the allele-specific primers to prevent cross-amplification by fragmented primers. This efficient and cost-effective method, as presented here, enables genotyping laboratories to analyze SNPs using standard real-time PCR.
Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus (MRSA) strains are resistant to a wide range of antibiotics and are a major cause of nosocomial infections. Accurate and rapid typing of MRSA is needed to implement effective infection control measures. Arbitrarily Primed PCR (AP-PCR) is a very useful method in rapid typing. AP-PCR is not necessary information about target DNA sequence because this is basically DNA amplification and could be useful in epidemiological typing by classified band pattern. In this study, MRSA were isolated and identified from ICU, Neu, IM and Ped environments and investigated molecular typing by AP-PCR. Ped, the MRSA pattern determines the la, IIa type, 1M is Ib type, Neu is IIa type and ICU determines the IIa, lIb types. All MRSA in this study were typeable by AP-PCR, which was easy to perform and reproduce with evidence of MRSA for purposes of nosocomial infection control.
The purpose of this study was to develop the diagnosis techniques for sex determination of rabbit embryos at preimplantation stage. To detect male specific sequences using polymerase chain reaction, two genes functional on sex determination including SRY and ZFX/Y genes were targeted using multiple oligonucleotide primer sets. Three of them for conserved SRY gene were used for appropriate amplification pattern, and then only one primer set #3 proved to be most efficient, showing male-specific strong signal ofamplified sequences. Using this male specific bandsfrom human, cattle, pig and mouse, the gender of rabbit was determined. As an another system for sex determination system, amplified 910bp fragment from ZFX/Y was digested with several restriction endonuclease and showed gender specific restriction fragments only by Hinf I. Using two different system for sex identification of rabbit in this study, blind tests for 17 samples was conducted and showed identical results from two different methods. And then, amplification limit of PCR reaction for template DNA was estimated using various amounts of DNA for both SRY and ZFX/Y systems, resulted as 20pg and 800pg, respectively. With this results, test for gender identification of rabbit embryos were performed using SRY derived amplification system. From total 22 embryos selected for its developmental state 18 were identified as male embryos, showing significant difference from expected sex ratio 1:1. This biased sex ratio was interpreted as to have been caused by the fact, reported by the fact, reported by several researchers, that male embryos develop more rapidly and are more resistant against the in vitro manipulation than female embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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