The present study was performed to evaluate how cellular and humoral immune responses were perturbed by immunization of mixed periodontal bacterial biofilms. Each group of mice was immunizared with 1) Poqhyromonas gingivalis (P. gingivaliis) grown as a planktonic culture, 2) Fusobacterium nucleatum (F. nucleatum), 3) P. gingivalis grown as a biofilm, or 4) mixed P. gingivalis plus F. nucleatum grown as a biofilm culture, respectively. Immune mouse sera were collected from each mouse. Spleens were harvested to isolate T cells and consequently stimulated with antigen presenting cells and P. gingivalis whole cell antigen to establish P. gingivalis-specific T cell lines. There were no significant differences in the mean anti- gingivalis IgG antibody titers among mouse groups. Immunization of mice with pure P. gingivalis biofilm or mixed P gingivalis plus F. nucleatum biofilm resulted in significant reduction o f antibody avidity and opsonophagocytois function. INF-$\gamma$production by P. gingivalis-specific T cell lines was also substantially recluced in mouse groups immunized with the biofilm. It was concluded that P. gingivalis biofilm perturbs the cellular and humoral immune responses in periodontal disease.
P. gingivalis를 단독면역하거나 또는 Fusobacterium nucleatum 선면역 후 P. gingivalis 항혈청을 각각 얻어냈다. 두 종류의 항혈청이 P. gingivalis biofilm을 침투해 들어가는 능력을 confocal laser scanning microscope를 이용하여 비교 감증하였다. 항혈청의 P. gingivalis에 대한 avidity index도 측정하였다. 결과적으로 F. nucleatum의 선면역은 P. gingivalis 특이 항혈청에 대해 세균성 biofilm의 침투능력을 저하시키고, 동일한 세균에 대한 avidity도 감소시켰다.
Porphyromonas gingivalis has been implicated in periodontal diseases. Accumulating evidence suggests that cardiovascular disease is the most prevalent medical problem in patients with periodontal diseases. In order to check the possibility that P. gingivalis is involved in coronary heart disease, the present study was performed to observe P. gingivalis adherence and invasion of human coronary artery endothelial cells (HCAEC) and production of cytokines and growth factors by HCAEC upon P. gingivalis infection. $^3H$-labeled P. gingivalis 381 was incubated with HCAEC for 90 min. The radioactivity of the washed HCAEC was a measure of the absorbed (adhering and invading) P. gingivalis. The absorption radioactivity of the HCAEC infected by P. gingivalis was determined to be 59.58% of the input bacterial cells. In contrast, the absorption radioactivity of the cells infected by S. gordonii Challis which was employed as a control was negligible (0.59%). DPG3, a P. gingivalis mutant defective of fimbriae, appeared to be impaired to some extent in capability of adherence/invasion as compared to that of the parental strain 381, showing 43.04% of the absorption radioactivity. The absorption radioactivity of the HCAEC infected by P. gingivalis 381 in the presence of excessive fimbriae at the concentrations of $50\;{\mu}g$ and $100\;{\mu}g/ml$ was 57.27 and 45.44%, respectively. Invasion of HCAEC by P. gingivalis 381 was observed by an antibiotic (metronidazole) protection assay and transmission electron microscopy (TEM). In the antibiotic protection assay, invasion by the bacterium was measured to be 0.73, 1.09, and 1.51% of the input bacterial cells after incubation for 30, 60, and 90 min, respectively. Invasion by DPG3 was shown to be 0.16% after 90-min incubation. In comparison of invasion efficiency at 90 min of the incubation, the invasion efficiency of DPG3 was 0.37% while that of its parental strain 381 was 2.54%. The immunoblot analysis revealed fimbriae of P. gingivalis did not interact with the surface of HCAEC. These results suggest that fimbriae are not the major contribution to the adherence of P. gingivalis to HCAEC but may be important in the invasion of HCAEC by the bacterium. The presence of cytochalasin D ($1\;{\mu}g/ml$) and staurosporine ($1\;{\mu}M$) reduced the invasion of HCAEC by P. gingivalis 381 by 78.86 and 53.76%, respectively, indicating that cytoskeletal rearrangement and protein kinase of HCAEC are essential for the invasion. Infection of P. gingivalis induced HCAEC to increase the production of TNF-${\alpha}$. by 60.6%. At 90 min of the incubation, the HCAEC infected with P. gingivalis cells was apparently atypical in the shape, showing loss of the nuclear membrane and subcellular organelles. The overall results suggest that P. gingivalis may cause coronary heart disease by adhering to and invading endothelial cells, and subsequently damaging the cells.
Periodontopathogens including Porphyromonas gingivalis interact with host periodontal cells and the excessive subsequent host responses contribute a major part to the development of periodontal diseases. Cyclooxygenase(COX)-2-synthesized $PGE_2$ has detrimental activities in terms of periodontal pathogenesis. The present study investigated induction of COX-2 expression by P. gingivalis in human monocytic THP-1 cells. Live P. gingivalis increased expression of COX-2, but not that of COX-1, which was demonstrated at both mRNA and protein levels. Elevated levels of $PGE_2$ were released from P. gingivalis-infected THP-1 cells. Pharma-cological inhibition of p38 mitogen-activated protein kinase(MAPK) and extracellular signal-regulated kinase(ERK) substantially attenuated P. gingivalis-induced COX-2 mRNA expression. Indeed, activation of p38 MAPK and ERK was observed in P. gingivalis-infected THP-1 cells. Also, P. gingivalis induced activation of nuclear $factor-{\kappa}B\;(NF-{\kappa}B)$ which is an important transcription factor for COX-2. These results suggest that COX-2 expression is up regulated in P. gingivalis-infected monocytic cells, at least in part, via p38 MAPK, ERK, and $NF-{\kappa}B$.
Antigen-specific T cell clones were obtained from mice immunized with Fusobacterium nucleatum ATCC 10953(F .nucleatum) and/or Porphyromonas gingi valis 381(P. gingivalis). 10 Balb/c mice per group were immunized with F. nucleatum followed by P. gingivalis, or with P. gingivalis alone by intraperitoneal injection of viable microorganisms. Spleen T cells were isolated and stimulated in vitro with viable P. gingivalis cells to establish P. gingivalisspecific T cell clones. T cell phenotypes and cytokine profiles were determined along with T cell responsiveness to F .nucleatum or P. gingivalis. Serum IgG antibody titers to F. nucleatum or P. gingivalis were also determined by ELISA. All the T cell clones derived from mice immunized with F. nucleatum followed by P. gingivalis demonstrated Th2 subsets, while those from mice immunized with P. gingivalis alone demonstrated Th1 subsets based on the flow cytometric analysis and cytokine profiles, All T cells clones from both groups were cross-reactive to both P. gingivalis and F. nucleatum antigens. Phenotypes of T cell clones were all positive for CD4. Mean post-immune serum IgG antibody levels to F. nucleatum or P . gingivalis were significantly higher than the pre-immune levels(p <0.01, respectively). There were no significant differences in the antibody titers between the two groups. It was concluded that P. gingivalis-specific T cells initially primed by cross-reactive F. nucleatum antigens were polarized to Th2 subsets, while T cells stimulated with P. gingivalis alone maintained the profile of Th1 subset.
P. gingivalis has been implicated as a strong pathogen in periodontal disease and known to have three serotypes of P. gingivalis. The purpose of this study is to investigate on the relationship between virulence, metabolic acids and genetic heterogeneity of P. gingivalis. P. gingivalis W50 standard strain and five strains of P. gingivalis serotype b Korean isolates were used in this study. For in vitro virulence test, lyophilized whole cell P. gingivalis were suspended, and sonicated with ultrasonic dismembranometer. Sonicated samples were applied to cultured cells derived from periodontal ligament, and cell activity was assayed with growth and survival assay. The metabolic acids were also extracted, and determined by High Performance Liquid Chromatography. Pst I-digested bacterial genomic DNA was electrophoresed, and densitometric analysis was performed to study the genetic heterogeneity. All of the P. gingivalis serotype b produced butyric acid. In cell activity study, butyric acid inhibited the cell activity irrespective of its concentration. Densitometric analysis showed restriction fragment length polymorphism. These results suggested that there existed heterogeneity of the metabolic acids and the virulence of P. gingivalis and such heterogeneity might be related to genetic heterogeneity.
Cyclooxygenase-2 (COX-2)-mediated prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) plays a key role in development and progression of inflammatory responses and Porphyromonas gingivalis is a common endodontic pathogen. In this study, we investigated induction of COX-2 and $PGE_2$ by P. gingivalis in human dental pulp cells (HDPCs). P. gingivalis increased expression of COX-2, but not that of COX-1. Increased levels of $PGE_2$ were released from P. gingivalis-infected HDPCs and this $PGE_2$ increase was blocked by celecoxib, a selective COX-2 inhibitor. P. gingivalis activated all three types of mitogen-activated protein kinases (MAPKs). P. gingivalis-induced activation of nuclear $factor-{\kappa}B$ ($NF-{\kappa}B$) was demonstrated by the results of phosphorylation of $NF-{\kappa}B$ p65 and degradation of inhibitor of ${\kappa}B-{\alpha}$ ($I{\kappa}B-{\alpha}$). Pharmacological inhibition of each of the three types of MAPKs and $NF-{\kappa}B$ substantially attenuated P. gingivalis-induced $PGE_2$ production. These results suggest that P. gingivalis should promote endodontic inflammation by stimulating dental pulp cells to produce $PGE_2$.
치주질환과 구취를 유발시키는 중요한 원인균인 P. gingivalis에 대한 피톤치드의 항균효과와 항균작용은 이미 연구되어 있으나, 정상인의 구강상주균에 대한 연구는 아직 희귀한 편이다. 이에 본 연구에서는 건강한 정상인의 타액에 편백 피톤치드를 첨가하였을 때 사멸되지 않고 생존하는 타액세균을 분리하여 구강 유해균과 함께 배양한 후 구강 유해균에 대한 생존 타액세균의 억제효과를 파악함으로써 향후 프로바이오틱으로 작용할 수 있는 구강상주균의 균종을 동정하여 다음과 같은 결론을 얻었다. 1. 정상인의 전타액에 1% 피톤치드를 적용하였을 때 잔존 생균수는 감소하는 경향을 보였다. 2. 피톤치드 적용 후 생존한 주 세균종은 S. thermophilus (53%)로 나타났다. 3. 피톤치드 적용 후 생존한 균을 P. gingivalis A7A1-28과 P. gingivalis W83에 교차배양한 결과 생존균의 대부분(72.5%) 이 P. gingivalis A7A1-28과 P. gingivalis W83의 성장을 억제하였다. 4. 생존 S. thermophilus의 85.8%, S. sanguinis는 75.8%가 P. gingivalis 를 억제하는 것으로 나타났다. 이상의 결과로 미루어, P. gingivalis 등 구강 내 유해균을 직접 억제할 수 있는 것으로 알려진 피톤치드로 처리할 경우 피톤치드에 생존하는 구강상주균이 P. gingivalis에 대해 부가적으로 억제작용을 할 수 있기 때문에 피톤치드의 사용은 치주질환을 예방하고, 그 결과 치주질환 및 구취환자의 구강 환경을 크게 개선할 수 있을 것으로 생각된다.
본 연구의 목적은 인간의 동맥경화증에서 Porphyromonas gingivalis (P. gingivalis)와 인체 열충격단백 60의 T-세포 및 교차성 B-세포 epitope를 규명하고 수립된 T-세포주의 T-세포 주요조직적합체 양상을 파악하려는 데 있다. P. gingivalis 열충격단백-반응성 T 세포주와 환자의 혈청을 이용하여 P. gingivalis 열충격단백60 분자를 구성하는 104개의 중복성 합성 펩타이드의 T-세포 epitope과 B-세포 epitope을 규명하였다. 인체 열충격단백60에 대한 B-세포 epitope도 같은 방법으로 파악하였다. P. gingivalis, P. gingivalis 열충격단백60 또는 인체 열충격단백60에 대한 IgG 항체는 모든 동맥경화증 환자에서 상승하였다. P. gingivalis 열충격단백60의 3, 15, 24, 33, 45, 53, 64, 84, 88, 99번 펩타이드가 주요한 T-세포 epitope였고 이것들은 T-세포 및 B-세포 공동 epitope이기도 했다. 또한 인체 열충격단백60 교차반응 B-세포 epitope은 15, 29, 53, 56, 69, 74번 펩타이드로 판명되었다. 대부분 환자의 주요조직적합체는 $HLA-DRB1^{\ast}1504$와 $HLA-DZB1^{\ast}0603$으로 나타났다. 결론적으로 P. gingivalis 열충격단백60은 제 2급 주요조직적합제-제한적으로 분해되고 전달되었으며 이 단백질이 공통적인 T-세포 및 B-세포 epitope를 가지면서 동시에 인체 열충격단백60과 교차성 B-세포 epitope을 가지면서 동맥경화증의 면역조절기능에 관여한다고 볼 수 있다.
Purpose: Porphyromonas gingivalis and Tannerella forsythia have been implicated as the major etiologic agents of periodontal disease. These two bacteria are frequently isolated together from the periodontal lesion, and it has been suggested that their interaction may increase each one's virulence potential. The purpose of this study was to identify proteins on the surface of these organisms that are involved in interbacterial binding. Methods: Biotin labeling of surface proteins of P. gingivalis and T. forsythia and liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) analysis was performed to identify surface proteins involved in the coaggregating activity between P. gingivalis and T. forsythia. Results: It was found that three major T. forsythia proteins sized 161, 100, and 62 kDa were involved in binding to P. gingivalis, and P. gingivalis proteins sized 35, 32, and 26 kDa were involved in binding to T. forsythia cells. Conclusions: LC-MS/MS analysis identified one T. forsythia surface protein (TonB-linked outer membrane protein) involved in interbacterial binding to P. gingivalis. However, the nature of other T. forsythia and P. gingivalis surface proteins identified by biotin labeling could not be determined. Further analysis of these proteins will help elucidate the molecular mechanisms that mediate coaggregation between P. gingivalis and T. forsythia.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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