The purpose of this study was to investigate the effects of nisoldipine on the pharmacokinetics of repaglinide in rats. The effect of nisoldipine on cytochrome P450 (CYP) 3A4 activity and P-glycoprotein (P-gp) were evaluated. The pharmacokinetic parameters of repaglinide were also determined in rats after oral (0.5 $mg{\cdot}kg^{-1}$) and intravenous (0.2 $mg{\cdot}kg^{-1}$) administration of repaglinide to rats without or with nisoldipine (0.3 and 1.0 $mg{\cdot}kg^{-1}$). Nisoldipine inhibited CYP3A4 enzyme activity with a 50% inhibition concentration of 5.5 ${\mu}M$. In addition, nisoldipine significantly enhanced the cellular accumulation of rhodamine-123 in MCF-7/ADR cells overexpressing P-gp. Compared to the oral control group, nisoldipine significantly increased the $AUC_{0-{\infty}}$ and the $C_{max}$ of repaglinide by 46.9% and 24.9%, respectively. Nisoldipine also increased the absolute bioavailability (A.B.) of repaglinide by 47.0% compared to the oral control group. Moreover, the relative bioavailability (R.B.) of repaglinide was 1.16- to 1.47-fold greater than that of the control group. Nisoldipine enhanced the oral bioavailability of repaglinide, which may be attributable to the inhibition of the CYP3A4-mediated metabolism in the small intestine and/or in the liver and to inhibition of P-gp in the small intestine rather than to reduction of renal elimination of repaglinide by nisoldipine. The increase in the oral bioavailability of repaglinide should be taken into consideration of potential drug interactions when co-administering repaglinide and nisoldipine.
The present study investigated the effects of hydrocortisone on the pharmacokinetics of loratadine in rats after intravenous and oral administration. A single dose of loratadine was administered either orally (4 mg/kg) or intravenously (1 mg/kg) with or without oral hydrocortisone (0.3 or 1.0 mg/kg). Compared to the control group (without hydrocortisone), after oral administration of loratadine, the area under the plasma concentration-time curve (AUC) was significantly increased by 30.2-81.7% in the presence of hydrocortisone (p<0.05). The peak plasma concentration ($C_{max}$) was significantly increased by 68.4% in the presence of 1.0 mg/kg hydrocortisone after oral administration of loratadine (p<0.05). Hydrocortisone (1.0 mg/kg) significantly increased the terminal plasma half-life ($t_{1/2}$) of loratadine by 20.8% (p<0.05). Consequently, the relative bioavailability of loratadine was increased by 1.30- to 1.82-fold. In contrast, oral hydrocortisone had no effects on any pharmacokinetic parameters of loratadine given intravenously. This suggests that hydrocortisone may improve the oral bioavailability of loratadine by reducing first-pass metabolism of loratadine, most likely mediated by P-gp and/or CYP3A4 in the intestine and/or liver. In conclusion, hydrocortisone significantly enhanced the bioavailability of orally administered loratadine in rats, which may have been due to inhibition of both CYP 3A4-mediated metabolism and P-gp in the intestine and/or liver by the presence of hydrocortisone.
Si-On You;Han-Seo Yoon;Hye-Soo Kim;Jin-Soo Park;Sung-Ho Lee
한국발생생물학회지:발생과생식
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제28권1호
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pp.21-28
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2024
Present study aimed to investigate the temporal changes in expression of some reproductive hormones in testis, originally found in hypothalamus and pituitary. Rats were sacrificed on postnatal day 23 (PND23; immature), pubertal (PND53) and PND 81 (young adult). The testicular RNAs were extracted, and semi-quantitative PCRs for gonadotropin-releasing hormone (GnRH), kisspeptin 1 (KiSS1), pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide (PACAP), LH subunits and LH receptor were performed. Transcript levels of GnRH and KiSS1 at PND23 were significantly higher than levels of PND53 and PND81 (p<0.001). PACAP mRNA level at PND23 was significantly lower than those of PND53 and PND81 (p<0.001). The mRNA levels of both testis type and pituitary type luteinizing hormone β subunit (tLHβ and pLHβ, respectively) at PND23 were significantly lower than levels of PND53 and PND81 (p<0.001). The mRNA level of glycoprotein hormone common alpha subunit (Cgα) at PND23 was significantly lower than those of PND53 and PND81 (p<0.001). Present study revealed the intratesticular expression of KiSS1 and GnRH showed a very similar trend while the expression of PACAP in the testis showed reversed pattern. The expressions of LHβ subunits (tLHβ and pLHβ) were very low during immature stage then increased significantly during puberty and early adulthood. Our attempt to study the local role(s) of intratesticular factors will be helpful to achieve precise understanding on the testis physiology and pathology.
1997년 3월 전라남도 및 경상남도의 해산어 육상 및 가두리 양식장에서 양성 중이던 넙치가 HRV(hirame rhabdovirus, Rhabdovirus olivaceus) 감염증과 유사한 증상을 나타내어 그 원인을 조사한 결과 새로운 rhabdovirus가 분리 되었다. 분리 바이러스(DF-9708)는 RTG-2 및 EPC 세포주에서 $15^{\circ}C$로 배양하였을 때 랩도바이러스 특유의 세포변성효과(CPE)를 나타내었으나 CHSE-214에서는 증식되지 않았다. 투과전자현미경으로 감염 세포내의 바이러스 입자 형태를 관찰해본 결과 bullet-shape의 크기 $70nm{\times}100\sim150nm$으로 인벨롭을 가진 바이러스였다. 분리바이러스는 pH 3 및 diethyl ether의 처리 조건에서는 감염성을 상실하였고, 열($50^{\circ}C$ 5 min, $60^{\circ}C$ 1 min)에도 약한 성상을 나타내었다. DNA 저해제인 IUdR $10^{-4}$M 처리에 의해서는 바이러스 감염가에 영향을 받지 않았다. 분리 바이러스는 Anti-HRV(8401-H) rabbit serum에 의해서만 중화 되었고, 전염성 조혈기 괴사증 바이러스(IHNV), 연어과 레오바이러스(CSV), 바이러스성 선회병 바이러스(RVS) 및 전염성 췌장괴사증 바이러스(IPNV) 등의 국내에서 분리되어지는 바이러스 항체로는 중화되지 않았다. 초원심법으로 정제한 분리 바이러스를 전기영동 한 결과 polymerase(L), glycoprotein(G), nucleoprotein(N) 및 2개의 matrix proteins(M1 및 M2)으로 구성되어져 있었으며, 각 단백질의 분자량은 L, 160 kDa; G, 55 kDa; N, 45 kDa; M1, 26 kDa; M2, 22 kDa의 크기로 계산되었다. 새롭게 분리된 바이러스는 외부증상으로는 기존의 HRV 감염과 유사한 점을 나타내었으나 그 바이러스학적 특성에 있어 약간의 차이점이 있어 본 분리바이러스를 우선 Nubchi rhabdovirus(NRV)(HRV-like)로 부르기로 한다.
When patients with cancers are treated with chemotherapeutic agents a long time, some of the cancer cells develop the multidrug resistance (MDR) phenotype. MDR cancer cells are characterized by the overexpression of multidrug resistance1 (MDR1) gene which encodes P-glycoprotein (Pgp), a surface protein of tumor cells that functions to produce an excessive efflux and thereby an insufficient intracellular concentration of chemotherapeutic agents. A variety of studies have sought potent MDR modulators to decrease MDR1 gene expression in cancer cells. Our previous study has shown that curcumin exhibits characteristics of a MDR modulator in KB-V1 multidrug-resistant cells. The aim of this study was to further investigate the effect of curcumin on MDR1 gene expression in patient leukemic cells. The leukemic cells were collected from 78 childhood leukemia patients admitted at Maharaj Nakorn Chiang Mai Hospital, Chiang Mai, Thailand, in the period from July 2003 to February 2005. There were 61 cases of acute lymphoblastic leukemia (ALL), 14 cases of acute myeloblastic leukemia (AML), and 3 cases of chronic myelocytic leukemia (CML). There were 47 males and 31 females ranging from 1 to 15 years old. Bone marrows were collected. The leukemic cells were separated and cultured in the presence or absence of $10{\mu}M$ curcumin for 48 hours. MDR1 mRNA levels were determined by RT-PCR. It was found that curcumin reduced MDR1 gene expression in the cells from 33 patients (42%). Curcumin affected the MDR1 gene expression in 5 of 11 relapsed cases (45%), 10 of 26 cases of drug maintenance (38%), 7 of 18 cases of completed treatment (39%), and 11 of 23 cases of new patients (48%). The expression levels of MDR1 gene in leukemic patient cells as compared to that of KB-V1 cells were classified as low level (1-20%) in 5 of 20 cases (25%), medium level (21-60%) in 14 of 32 cases (44%), and high level (61-100%) in 14 of 20 cases (70%). In summary, curcumin decreased MDR1 mRNA level in patient leukemic cells, especially in high level of MDR1 gene groups. Thus, curcumin treatment may provide a lead for clinical treatment of leukemia patients in the future.
.betha.-1,4-D-Glucan glucanohydrolase(EC 3.2.1.4;F-II-IV) purified from Trichoderma koningii was identified as a glycoprotein containing 9% carbohydrate. Isoelectric point of the enzyme was estimated to be 4.9 and molecular weight was determined to be approximately 58,000. The porducts of p-nitrophenyl-cellobioside ($PNPG_{2}$) catalyzed by the enzyme were p-nitrophenol(PNP) and p-nitrophenyl-glucoside($PNPG_{1}$). The Km value for $PNPG_{2}$ was estimated to be 0.97 mM in case of the holoside lindage and 10.4 mM in case of the aglycon linkage and their kcat values were $1.8*10^{5}$$ min^{-1}$ and $7.5*10^{5}$$min^{-1}$ respectively. The product of p-nitrophenyl cellotriose($PNPG_{3}$) was only $PNPG_{1}$. The Km value for $PNPG_{3}$ was 69.5 .$\mu$M and kcat was $1*10^{8}$$min^{-1}$ which implicates that the enzyme have higher affinity and higher hydrolysis rate toward $PNPG_{3}$ than toward $PNPG_{2}$. The enzyme showed its optimal activity at pH 4.0-4.5 and at 60.deg.C. The effect of gluconolactone on the activity toward $PNPG_{2}$ showed competitive inhibition pattern but glucose and cellobiose did not. The enzyme contained a high content of acidic and hydroxylated amino acids in contrast to basic amino acids.
Moon-Jo Lee;June-Ki Kim;Kyung-Soo Nam;Jin-Woo Park;Cher-Won Hwang;Dong-Soo Kim;Cheorl-Ho Kim
Journal of Life Science
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제9권1호
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pp.26-34
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1999
A thermostable pullulanase has been isolated and purified from Thermus caldophilus GK-24 to a homogeneity by gel-filtration and ion-exchange chromatography. The specific activity of the purified enzyme was 431-fold increase from the crude culture broth with a recovery of 11.4%. The purified enzyme showed $M_{r}$ of 65 kDa on denaturated and natural conditions. The pI of the enzyme was 6.1 and Schiff staining was negative, suggesting that the enzyme is not a glycoprotein. The enzyme was most active at pH 5.5. The activity was maximal at $75^{\cire}C$ and stable up to $95^{\cire}C$ for 30 min at pH 5.5. The enzyme was stable to incubation from pH 3.5 to pH 8.0 at $4^{\cire}C$ for 24hr. The presence of pullulan protected the enzyme from heat inactivation, the extent depending upon the substrate concentration. The activity of the enzyme was simulated by $Mn^{2+}$ ion, }$Ni^{2+}$, $Ca^{2+}$, $Co^{2+}$ ions. The enzyme hydrolyzed the ${\alpha}$-1,6-linkages of amylopectin, glycogens, ${\alpha}$, ${\beta}$-limited dextrin, and pullulan. The enzyme caused the complete hydrolysis of pullulan to maltotriose and the activity was inhibited by $\alpha$, $\beta$, or $\gamma$-cyclodextrins. The $NH_{2}$-terminal amino acid sequence [(Ala-Pro-Gln-(Asp of Tyr)-Asn-Leu-Leu-Xaa-ILe-Gly-Ala(Ser)] was compared with known sequences of various sources and that was compared with known sequences of various sources and that was different from those of bacterial and plant enzymes, suggesting that the enzymes are structurally different.
The present study was to investigate the effect of glipizide on the pharmacokinetics of losartan in rats. Losartan was administered intravenously (3 mg/kg) and orally (9 mg/kg) in the presence and absence of glipizide (0.3 and 1 mg/kg) to rats. The pharmacokinetic parameters of losartan were significantly altered by the presence of glipizide compared with the control group (given losartan alone). Presence of glipizide significantly (p<0.05, 0.3 mg/kg) increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of losartan by 48.2% and peak plasma concentration ($C_{max}$) of losartan by 47.4%. Consequently, the absolute bioavailability (AB%) of losartan in the presence of glipizide was 38%, which was enhanced significantly (p<0.05) compared to that in the oral control group (25%). The relative bioavailability (RB%) of losartan increased by 1.18- to 1.48-fold in the presence of glipizide. However, there was no significant change in the peak plasma concentration ($T_{max}$) and terminal half-life ($T_{1/2}$) of losartan in the presence of glipizide. In contrast, glipizide did not affect the pharmacokinetics of intravenous losartan. In conclusion, the presence of glipizide significantly enhanced the oral bioavailability of losartan, implying that glipizide might be mainly to inhibit the cytochrome P450 (CYP) 2C9-mediated metabolism, resulting in reducing gastrointestinal and/or hepatic first-pass metabilism of losartan rather than in reducing P-glycoprotein-mediated efflux and renal elimination of losartan. Concurrent use of glipizide with losartan should require close monitoring for potential drug interactions.
Cyclosporine (CsA) and tacrolimus (FK506) have a narrow therapeutic range, and their pharmacokinetic (PK) characteristic varies among individual. They are also substrates for cytochrome P450 (CYP) 3A4, 3A5 genes, and P-glycoprotein, the product of the multidrug resistance 1 (MDR1). The aims were to investigate the relationship between CYP3A and MDR1 genotypes and their PK parameters among healthy subjects. We investigated the genotype for CYP3A and MDR1 gene in human using a polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP) method. After oral administration of CsA and FK506 (100 mg and 1 mg, respectively), whole blood samples were taken up to 24 hours. Blood CsA and FK506 concentrations were measured by LC/MS/MS. Each PK parameters were compared using Kruskal-Wallis test according to the CYP3A and MDR1 genotype. We found that the values of AVC for CsA were significantly different among CYP3A5 and MDR1 exon 26 (C3435T) genotypes (P=0.037 and P=0.049). On the other hand, the AUC for FK506 was significantly different only among CYP3A5 genotypes (P=0.013). The results clearly demonstrate the effects of CYP3A5 and MDR1 exon 26 on Cys and FK506 disposition.
Many quaternary ammonium salts are incompletely absorbed after their oral administration and may also be actively secreted into the intestine. However, the underlying mechanism(s) that control the transport of these cations across the intestinal epithelium is not well understood. In this study, the mechanism of absorption of quaternary ammonium salts was investigated using Caco-2 cell monolayers, a human colon carcinoma cell line. Tributylmethylammonium (TBuMA) was used as a model quaternary ammonium salts. When TBuMA was administrated at a dose of 13.3 imole/kg via iv and oral routes, the AUC values were $783.7{\pm}43.6\;and\;249.1{\pm}28.0{\mu}mole\;min/L$ for iv and oral administration, indicating a lower oral bioavailability of TBuMA $(35.6\%)$. The apparent permeability across Caco-2 monolayers from the basal to the apical side was 1.3 times (p<0.05) greater than that from the apical to the basal side, indicating a net secretion of TBuMA in the intestine. This secretion appeared to be responsible for the low oral bioavailability of the compound, probably mediated by p-gp (p-glycoprotein) located in the apical membrane. In addition, the uptake of TBuMA by the apical membrane showed a $Na^+$ dependency. Thus, TBuMA appears to absorbed via a $Na^+$ dependent carrier and is then secreted via p-gp related carriers.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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