The peptidyl prolyl cis-trans isomerase(PPlase, EC 5.2.2.8) from Bacillus stearothermophilus SIC1 was extracted from the cells treated with by lysozyme. PPlase was purified from the cell extracts by heat treatment, ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromatography and finally gel filtration (FPLC). The purity of purified the enzyme after Superose 12 column chromatography was examined by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE). The molecular weight of the purified PPlase was estimated as 18,000 by SDS-PAGE. The 39 amino acid residues from the N-terminus were determined by the protein sequencer. The enzyme showed the optimum pH at 8.0 and was stable at the range of pH 7.0 to 8.0. The enzyme was considerably stable after heat treatment at $60^{\circ}C$ for 30 minutes, and the enzyme was quite stable up to $65^{\circ}C$. The presence of the PPlase in the refolding solution accelerated the isomerization rate of the assay peptide.
A bacterial strain SC-22 which produced alkaline lipase was isolated from salf-fermented shrimps. Strains SC-22 was identified as Staphylococcus xylosus. An alkaline lipase excreted by Staphylococcus xylosus SC-22 was purified by ammonium sulfate predipitation and column chromatography on Sephadex G-100 and DEAE-Sephace. The specific activity of purified lipase was 756U/mg of protein with 17.2% yield. The approximate molecular weight of the purified enzyme was 47 kDa. The partially purified lipase preparation had and optimum temperature of 4$0^{\circ}C$, an optimum pH of 8.0, and a stable of 5~10. Lipase activities were enhanced by salt ions such as $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$,N $a^{2+}$ while inhibited remarkably by heavy metal ions, C $u^{2+}$ and P $b^{2+}$.EX> 2+/.
Simple procedures have been devised for purifying recombinant human interleukin-2 (hIL-2), which was expressed in Escberichia coli using sequences of glucagon molecules and enterokinase cleavage site as an N-terminus fusion partner. The insoluble aggregates of recombinant fusion protein produced in E. coli cytoplasm were easily dissolved by simple alkaline pH shift $(8\rightarrow12\rightarrow8)$. Following enterokinase cleavage, the recombinant hIL-2 was finally purified by one-step reversed-phase HPLC with high purity. The ease and high efficiency of this simple purification process seem to mainly result from the role of used glucagon fusion partner, which could be applied to the production of other therapeutically important proteins.
The kinetics of the pepsin-catalyzed hydrolysis of N-carbobenzoxy-L-glutamyl-L-tyrosine at pH 3.5 and $37^{\circ}C$ were determined by a spectrophotometric technique. The pepsin used was further purified on a Sephadex G-75 column. The kinetics data were Km = l.7 ${\times}10^{-3}M,\;-{\Delta}F^{\circ}$ = 3.99Kcal/mole, and $k^3=\;2.1{\times}10^{-2}\;sec^{-1}$. An analysis of the above data and other investigators' data obtained from some dipeptides led to the following conclusions. (1) Phenylalanyl residues in a synthetic peptide are bound to pepsin more strongly than glutamyl or tyrosyl residues, supporting the theory that a part of the binding region of the active center is hydrophobic. (2) Dipeptides are bound to pepsin principally through their side chains and the binding involves both side-chain residues. (3) The nature of amino acids in dipeptides $R_2-R_1,\;affect\;the\;k_3$ values.
The economical producing method of casein phosphopeptide (CPP) and the physicochemical properties related to the solubilization of calcium were studied. Firstly, The compositions of the purified CPP-III were 13.1% of nitrogen, 2.3∼2.4% of phosphate and the ratio of N/P was 5.4∼5.6. In consideration of economic aspects, the preparation method of the CPP- I and II which were lower purity than the CPP-III was established. The physico-chemical property of the CPP was compared with the enzymically dephosphorylated CPP. CPP and polyglutamate effectively inhibited the formation of insoluble calcium phosphates at physiological pH.
Calcium-stimulated ATPase ($Ca^{2+}$-ATPase) which has optimal pH value at 7.0 was found in the membrane fraction of human milk, and its enzymatic properties were studied. The purified $Ca^{2+}$-ATPase required 0.45 mM Ca ion for maximal activity. Among the nucleosides, $Ca^{2+}$-ATPase showed a higher substrate specificity to ATP and UTP than to CTP and GTP. $Ca^{2+}$-ATPase had apparent Km value of 0.065, and V max of 7.63 mol ATP hydrolyzed/mg pro-tein per min, respectively. $Ca^{2+}$-ATPase was potently inhibited by lanthanide, vanadate, and p-chloromercuribenzoate, and inactivated by EDTA, and CDTA and EGTA, but were unaffected by N-ethylmaleimide, $NaN_3$, ouabain, or oligomycin, and was completely inactivated by heating at $60^{\circ}C$ for 10 min. This enzyme activity was concentrated in the membrane fraction of the cream and skim milk membrane, but not founded in bovine milk.
White and black sesame produced in Korea were defatted with ethyl ether or n-hexane. Defatted sesame meal was extracted with water and salt solution, and protein extraction was precipitated at various pH 1 through 12, with trichloro acetic acid (TCA), tannic acid and ammonium sulfate, respectively. Protein was purified by Sephadex A-25, G-75, G-100 and G-200, and identified its protein fraction by polyacrylamide gel electrophoresis. Amino acids composition of protein in white sesame was analyzed by automatic amino acid analyzer. Protein contents of white sesame, black sesame and sesame meal are 20.5%, 19.2%, and 44.7%, respectively. n-Hexane was the most suitable solvent for extraction of oil from sesame. Crude protein precipitation was better in higher pH. The protein extraction was more effective with the solution containing sodium chloride tinder the pH 8. Globulin in total protein was high and prolamin was less than in other cereal proteins. Glutamic acid contents of white sesame and sesame globulin were 17.1%, and 20%, respectively. Both proteins contained relatively high levels of essential amino acids. 12-13 bands were found in water soluble protein and 2 bands in salt soluble protein were detected by the disc gel electrophoresis, and were identified in both of white and black sesame. The salt soluble protein of white sesame could be purified by Sephadee G-100 and G-200.
From the sea-urchin, Hemicentrotus pulcherrismus, we have purified by four column chromatographic steps for DNA polymerase $\alpha$ activity. The molecular weight of DNA polymerase u was determined to be around 137,000-138,000 by Sephadex G-200 gel filtration and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The purified enzyme had the optimal activity at pH 7.4. This enzyme showed to be a function of the metal ion $K^+,\;Na^+$\;and\;Mg^{2+}$ employed as activators, the optimum $K^+$\;or\;Na^+ concentration were 20 mM or 25mM and the optimum $Mg^{2+}$ concentration was 10 mM. The enzyme activity was inhibited by N-ethyl-maleimide, aphidicolin, cytosine $\beta-D-arabinofuranoside$ 5'-triphoshate (ara CTP) and phosphonoacetic acid.
Proceedings of the Korean Society of Soil and Groundwater Environment Conference
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2001.02a
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pp.14-28
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2001
As basic study for purpose bioremedation in oil-contaminated environment, Primarily, we isolated biosurfactant producer- strains utilized of oil-agar plate, and measured surface tension and emulsifying activity. We investigated in oil-contaminated soil and sea water. In this laboratory, Pseudomonas sp. EL-012S strain isolated from oil-contaminated soil was able to product novel biosurfactant under the optimal culture condition. Its condition was n-hexadecane 2.0%, NH$_4$NO$_3$0.4%, Na$_2$HPO$_4$0.6%, KH$_2$PO$_4$0.4%, MgSO$_4$.7$H_2O$ 0.02%, CaCl$_2$.2$H_2O$ 0.001%, FeSO.7$H_2O$ 0.001%, initial pH 7.0 and aeration at 3$0^{\circ}C$, respectively. This biosurfactant was produced in both late-exponential and early-stationary phase. The biosurfactant from Pseudomonas sp. EL-012S was composed of carbohydrate, lipid and protein. The purified-biosurfactant was examined two (biosurfactant type I, II) with the silica gel G60 column chromatography and the purified biosurfactant confirmed thin layer chromatography, high performed liquid chromatography and gas chromatography. The biosurfactant type I involved in carbohydrate-lipid-protein characteristics lowered surface tension of water to 27dyne/cm and interfacial tension 4.5dyne/cm aginst to n-hexadecane and the biosurfactant type B involved in carbohydrate lipid characteristics lowered surface tension of water to 30dyne/cm and interfacial tension 8dyne/cm against to n-hexadecane. Specially type I had the properties such as strong emulsifying activity, emulsion stability, pH-stability, thermo-stability, high cleaning activity and forming ability.
n-Butanol extracts from Phellodendron amurense have about 50% inhibitory activity against hyaluronidase. The anti-inflammatory compound was isolated from P. amurense by Sephadex LH-20 and MCI-gel CHP-20 column chromatography with gradient elution. As a the result, its structure was identified as Jatrorrhizine by the interpretation of spectroscopic analyses including $^1H$- and $^{13}C$-NMR. In anti-inflammatory activity, the expression of nitric oxide (NO) was inhibited as above 60% at 100 ${\mu}g/mL$ concentration of extracts and then purified Jatrorrhizine from P. amurense. The inhibitory activities against the expression of inducible NO syntase (iNOS) and cyclooxygenase-2 (COX-2) were 45% and 29%. It seems that the extracts and purified Jatrorrhizine from P. amurense were expected anti-inflammatory effect in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated Raw264.7 cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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