포유류 배아의 초기발생과정에서 수란관이 하는 역할을 알아보기 위하여 소의 수란관내액이 생쥐 2-세포기 배아의 체외발생에 미치는 영향을 조사하였다. 대조군의 경우 5%의 배아만이 체외배양과정 중 퇴화한데 비해 5% 혹은 그 이상의 소의 수란관내액 (bOF)이 함유된 배양액 내에서 배양된 배아는 48시간이 지났을 때 모두 퇴화하였다. bOF를 65 \circ C에서 30분간 가열한 후 배양액에 첨가한 결과 bOF의 독성은 변화가 없었으나 90 \circ C에서 30분간 가열하였을때에는 독성이 거의 사라져 95% 의 배아가 정상적으로 발생하였다. bOF를 chymotrypsin으로 1시간 혹은 24시간동안 처리한 후 배양액에 첨가한 경우에도 독성이 사라져 각각 95.5%의 배아가 상실배 혹은 포배로 발생을 진행하였다. 산화방지제인 10mM 농도의 glutathione (GSH)을 bOF와 함께 배양액에 첨가한 결과 마찬가지로 bOF의 독성이 사라져 91.0%의 배아가 상실배 이상으로 발생한 반면 산화 방지능력이 없는 산화형 GSH(GSSG)를 bOF와 함께 배양액에 처리한 경우에는 bOF의 독성은 전혀 제거되지 않았다. 또한 mercaptoethanol, dithiothreitol, cysteamine 등의 다른 산화방지제도 GSSG와 마찬가지로 bOF의 독성을 제거하지 못하였다. 이와 같은 실험 결과로 미루어 소의 수란관내액에는 체외에 노출될 경우 독성을 나타내는 단백질 성분으로 된 물질이 있으며 이 물질의 독성은 대기 중의 산소의 산화작용에 의해 활성화되는 것으로 여겨진다.
Kim, Minjung;Minjeong Hong;Kim, Jisoo;Kim, Haekwon;Lee, Seung-Jae;Kang, Sung-Goo;Cho, Dong-Jae
한국발생생물학회:학술대회논문집
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한국발생생물학회 2001년도 전기 제11차 학술대회 논문집
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pp.55-56
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2001
Gelatin zymograms of bFF and bS showed GA110 and 62 kDa gelatinses in adsition to several minor ones. Of these, GA110 gelatinase was abolished by treating bFF or bS with bOF and interestingly, its enzymatic activity was enhanced by adding EDTA to bFF or bS before zymographic analyses. Experiments using specific inhibitors of MMPs indicated that GA110 and 62 kDa proteins were indeed gelatinases. Immunoblotting experiments using an antibody against human MMP-2 showed that both GA110 and 62 kDa were an MMP-2 isoform and active MMP-2, respectively. The results suggest that the interaction between bFF and bOF can occur at the time of fertilization.
대부분의 포유동물에서 수란관내로 배란된 난자는 정자에 의해 수정이 된 후 개체발생을 시작한다. 그러나 수정이 되지 못한 난자들은 난구세포와 함께 수란관내에서 퇴화하여 제거되는데, 그 기작에 대해서는 구체적으로 알려져 있지 않다. 따라서 본 연구는 포유동물의 수란관내 물질이 난자-난구 복합체에 미치는 영향을 알아보고자 사람의 난포액과 소의 수란관 조직 추출액을 생쥐의 난자-난구 복합체에 처리하고 난자의 생존율 및 난구세포의 세포자연사(apoptosis)를 조사하였다. 수란관 조직 추출액을 처리한 미성숙난자는 난포액만을 처리한 난자와 비교하여 난자의 성숙률에 차이를 보이지 않았다. 그러나 난구세포에서 난포액만을 처리한 경우 확장을 일으키면서 배양접시 바닥에 붙어서 배양 후 72시간까지 분열 증식을 계속하는 것이 관찰된 반면, 수란관 조직 추출액을 처리한 난구세포는 확장이 억제되며 72시간 배양 후 모두 죽었다. 한편 난포액과 수란관 조직 추출액을 함께 처리한 난구세포는 배양 후 24시간에 화장을 일으켰으나 72시간 후에는 수란관 조직 추출액 만을 처리했을 때 와 마찬가지로 모든 난구세포가 죽었다. 이러한 난구세포의 죽음이 세포자연사에 의한 것인지를 알아보기 위하여 DAPI로 핵을 염색한 후 관찰한 결과 세포자연사의 특징인 응축되고 분절화된 핵을 관찰 할 수 있었고, 특히 수란관 조직 추출액을 처리한 난구세포에서 많이 관찰되었다. 또한 TUNEL 방법으로 세포자연사를 확인한 결과 응축되고 분절화된 핵을 가진 난구세포에서 염색되는 것을 확인하였다. 본 연구의 결과들을 종합해 볼 때 소의 수란관 조직 추출액에 의한 생쥐 난구세포의 죽음은 세포자연사에 의한 것으로 판단되며, 이로 미루어 수란관 조직세포에는 난구세포의 세포자연사를 유도할 수 있는 물질을 포함하고 있는 것으로 사료된다.or teacher educators to re-conceptualize teacher education in Korea. 것이 필요하다.량은 264,000$m^2$, 79,200$m^3$이였으며, 우려기준의 40% 농도 이상의 경우 복원 면적과 물량은 779,000$m^2$, 233,700㎥, 배경치 농도 이상의 복원 목표 설정의 경우에는 각각 969,200$m^2$, 290,760$m^3$ 이였다. 토양오염 우려기준 농도의 40%를 복원 목표로 하는 경우와 배경치 농도를 복원 목표로 하는 경우, 복원 물량은 우려기준 농도를 복원 목표로 하는 경우의 3.0배와 3.7배정도 증가하는 것으로 나타나 복원 목표치 설정시 우려기준 농도의 40%와 배경농도의 차이에 다른 복원 물량의 차이는 적어서, 복원 목표 설정시 배경치 농도로 복원계획을 세우는 것이 가장 바람직한 것으로 판단되었다.amma}$D)안정동위원소값이 광화I시기에는 각각 11∼9.${\textperthansand}$, -92∼-86${\textperthansand}$, 광화 II시기에는 각각 0.3${\textperthansand}$(${\gamma}^{18}O_{H2O}$),-93${\textperthansand}$({\gamma}$D)이며, 리본-호상구조를 보이는 것으로 보아 대봉광상의 광화유체에 대한 기원과 진화과정을 두 가지로 생각할 수 있다. 1) 마그마유체로부터 광화작용이 진행됨에 따라 계속적인 순환수의 혼입이 있었으며 2) 조기 마그마${\pm}$변성유체에서 유체압력의 차에
난구세포는 lactate와 pyruvate를 쉽게 생성하고, 이로 인해 배양액내 에너지원의 농도를 변화시켜 난자의 수정과 배양에 영향을 주는 것으로 알려져 있다. Glucose, lactate 및 pyruvate의 농도가 상이한 M16, MTF 및 CZB배양액에서 난구세포를 포함한 생쥐난자의 체외 수정과 발달을 관찰하여, 이들 기질의 영향에 대하여 살펴보고 배양액의 유용성을 재검토하고자 하였다. Glucose를 제거한 배양액 (CZ2 배양액)에서 수정율과 배반포 형성율은 다른 배양액에 비해 유의하게 감소되었으나 (p<0.05), 생쥐 난관액과 동일한 기질 농도로 조성된 MTl (난간액이 난구세포를 포함하고 있을 때) 및 MT2배양액 (난관액이 난구세포를 포함하고 있지 않을 때)과 glucose를 포함한 modified CZB배양액에서는 영향이 없었다. 이와 같은 결과로 기질의 농도를 생리적 수준으로 조정한 배양액의 이용은 난구세포를 포함한 생쥐 난자의 체외수정과 그 발달을 향상시키지 못하고, glucose의 제거는 악영향을 나타내는 것으로 사료된다.
Bunsueb, Sudtida;Tangsrisakda, Nareelak;Wu, Alexander T.H.;Iamsaard, Sitthichai
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제47권3호
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pp.180-185
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2020
Objective: Tyrosine phosphorylation is an essential process in many biological systems, including the male reproductive system. The presence of tyrosine-phosphorylated (TyrPho) proteins has been well documented in male reproductive organs, but research in fertile females is still limited. Methods: The ovary, oviduct, and uterus of adult female Sprague-Dawley rats in the estrus phase were used to localize TyrPho proteins using an immunohistochemical technique. These proteins were separated and their expression patterns were examined by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and Western blot analysis, respectively. Results: TyrPho proteins were localized in the cytoplasm of the oocyte except the antral fluid; in the granulosa cells, theca cells, and stromal cells of the ovary; at the apical surface of oviductal epithelial cells; and in the basal epithelium and submucosa of the uterine wall. Moreover, we found that 72-, 43-, and 28-kDa TyrPho proteins were localized in the ovary, while 170-, 55-, and 43-kDa proteins were localized in the oviduct. In the uterus, we detected four major bands, corresponding to 61-, 55-, 54-, and 43-kDa TyrPho proteins. Conclusion: Given that these TyrPho proteins were found in major reproductive organs in the estrus phase, these proteins may play important roles in female fertility.
Lv, Lihua;Yue, Wenbin;Liu, Wenzhong;Ren, Youshe;Li, Fuzhong;Lee, Kyung-Bon;Smith, George W.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권7호
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pp.969-976
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2009
Use of oocytes from prepubertal animals for in vitro embryo production holds potential application for reducing generation intervals and increasing genetic progress through embryo transfer. The objective of these studies was to compare the effect of three sperm pretreatments (prior to in vitro fertilization) and seven embryo culture protocols on fertilization rate and (or) subsequent development of in vitro fertilized embryos derived from oocytes harvested from ovaries of 1-6 month old prepubertal Boer goats in China. Cleavage rates were highest for embryos fertilized with heparin-treated versus calcium ionophore- or caffeine-treated sperm. Similar rates of blastocyst development were observed using heparin- and ionophore-treated sperm, which were higher than obtained with caffeine-treated sperm. No differences in cleavage or blastocyst rates were observed following embryo culture in basal medias (synthetic oviductal fluid (SOF), Charles Rosenkrans 1 (CR1) or tissue culture medium-199 (TCM-199)) containing 10% fetal bovine serum (FBS). Cumulus or oviductal cell co-culture did not enhance cleavage or blastocyst rates relative to culture in SOF+10% FBS. Replacement of FBS in SOF medium with 0.3% BSA increased cleavage rates, but did not increase rates of blastocyst development. Sequential culture in SOF+0.3% BSA followed by SOF+10% FBS increased blastocyst yield versus continuous culture in SOF+10% FBS and tended to increase blastocyst yield versus continuous culture in SOF+0.3% BSA. These results demonstrate a pronounced effects of sperm pretreatments and in vitro embryo culture systems on rates of blastocyst development and provide a potential protocol (sperm pretreatment with heparin and sequential embryo culture in SOF+0.3% BSA followed by SOF+10% FBS) for generation of the significant numbers of in vitro produced blastocysts from oocytes of prepubertal Boer goats necessary for application of embryo transfer in rural regions of China for distribution of Boer goat genetics.
This study was carried out to determine the effect of bovine follicular fluid(bFF), hormones, and fetal bovine serum(FBS) supplemented in the medium on the in vitro fertilization and development of bovine embryos. The ovaries were obtained from a local abattoir and placed in physiological saline kept at 30~32˚C and brought to the laboratory within 3~4 hours. The oocytes and follicular fluid were collected by aspiration from visible follicles, and the oocytes of grades I on the basis of the morphology of cumulus cells attached and the homogeneity of cytoplasmic granules were selected and used for maturation. The basal media used for oocyte maturation, fertilization and embryo development in vitro were Ham' F-10, TALP and TCM-199, respectively. The hormones supplemented in maturation medium were consisted of 35 pg /ml FSH, 10 pg /ml LH and 1 pg/mi estradiol-l7$\beta$. The bFF collected from 5~9 mm follicles was centrifuged, filtered and inactivated by heat-treatment at 56˚C for 30 min. FBS also was inactivated with the same method and kept at -20˚C until use. The embryos were co-cultured with the monolayer of bovine oviductal epithelial cells at 39˚C under 5% $CO_2$ in air for 9 days. The results obtained were summarized as follows: The fertilization rate of oocytes was found 87.4% from 10% FBS and hormones treatment for IVM, and 37.1% of these TVF embryos were developed to blastocyst stage in 10% FBS groups. Compared with this control system, the fertilization rate was decreased significantly(P<0.05) in the maturation without either FBS or hormones. These IVF embryos were developed to morula stage at the similar rate, but to blastocyst at significantly(P<0.05) lower rate in the embryo culture with or without FBS supplementation. The fertilization rate(82.9%) in hormones and 10% inactivated bFF was similar with 10% FBS and hormone groups(87.4%), but decreased significantly(P<0.05) in 20 or 30% bFF (61.0 or 66.0%), respectively. In vitro developmental competence to blastocyst stage in 10% FBS and 20% inactivated bFF(37.1% and 31.4%) was higher than in 10 or 30% inactivated bFF(20.0 or 19.2%) or 10, 20 and 30% fresh bFF(19.1, 21.0 and 17.5%) The results indicated that the in vitro fertillzation and development rate of the embryos should be improved in 10% FBS or 20% inactivated culture system and 20% inactivated bFF might be available economically for bovine oocyte maturation and embryo culture instead of fetal bovine serum.
Objective: The aim of this study was to compare the effects of $36.5^{\circ}C$ and $38.5^{\circ}C$ incubation temperatures on the maturation of bovine oocytes and developmental competence of embryos. Methods: In experiment 1, oocytes were maturated in bicarbonate-buffered TCM-199 for 22 hours in a humidified atmosphere of 5% $CO_2$ in the air at either $36.5^{\circ}C$ or $38.5^{\circ}C$ and nuclear maturation status were determined. In experiment 2, in vitro fertilized oocytes were allocated randomly into synthetic oviductal fluid medium with or without a mixture of 1 mM L-glutathione reduced and 1,500 IU superoxide dismutase and cultured in a humidified atmosphere of 5% $CO_2$, 5% $O_2$, and 90% $N_2$ in the air at $38.5^{\circ}C$ for 8 days. Results: There were no significant differences between incubation temperatures in terms of oocyte maturation parameters such as cumulus expansion, first polar body extrusion and nuclear maturation. Incubation temperatures during in vitro maturation had no effects on developmental competence of embryos, but supplementation of antioxidants increased (p<0.05) developmental competence of the embryos. Blastocysts from oocytes matured at $38.5^{\circ}C$ had comparatively higher inner cell mass, but low overall and trophectoderm cell numbers (p<0.05). Conclusion: The results of present study showed that maturation of bovine oocytes at $36.5^{\circ}C$ may provide a suitable thermal environment for nuclear maturation and subsequent embryo development.
체외에서 포유동물의 난자와 정자의 배양에 관한 연구는 난자의 성숙과정과 수정현상에 대한 많은 새로운 정보를 제공하였다. 동시에 체외수정의 연구로부터 얻은 결과는 또다른 의문을 제기하였다. 특히 동결융해정액을 이용한 돼지체외수정의 경우 낮은 정자의 침입율과 전핵형성율 및 높은 다정자침입(polyspermy)율은 아직도 해결해야할 문제점으로 남아있다. 돼지난자의 성숙에 관한 연구의 성과는 수정후 낮은 전핵형성율을 개선시켰으나 타동물종에 비하면 아직도 매우 낮게 나타나고 있다. 한편 동결정액의 처리를 위하여 caffeine이나 Ca2+와 같은 물질을 수정용 배지내에 첨가하는 등 수정능력획득의 유기를 위하여 여러 가지 방법이 연구되고 있지만 정자의 침입율은 아직도 낮고, polyspermy의 발생율은 높게 나타내고 있다. 따라서 정자의 침입율을 향상시키고 polyspermy를 억제하기 위하여 난관세포와의 공동배양, 난포액을 첨가한 배양액 내에서 정자의 전배양 및 정자농도의 조절은 매우 효과적인 방법으로 이용되어왔다. 그러나 수정란의 체외생산성 향상과 이와 관련된 연구를 보다 효과적으로 수행하기 위해서는 위에서 지적한 문제에 영향을 미치는 요인에 대한 보다 근본적인 이해가 요구된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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