A simplified method for the purification of cholera toxin was developed. The 569B strain of Vibrio cholerae, a recognized hyper-producer of cholera toxin, was propagated in a bioreactor under conditions that promote the production of the toxin. The toxin was separated from the bacterial cells using 0.2-${\mu}m$ crossflow microfiltration, the clarified toxin was passed through the membrane into the permeate, and the bacterial cells were retained in the retentate. The 0.2-${\mu}m$ permeate was then concentrated 3-fold and diafiltered against 10 mM phosphate buffer, pH 7.6, using 30-kDa crossflow ultrafiltration. The concentrated toxin was loaded onto a cation exchange column, the toxin was bound to the column, and most of the impurities were passed unimpeded through the column. The toxin was eluted with a salt gradient of phosphate buffer, pH 7.0, containing 1.0 M NaCl. The peak containing the toxin was assayed for cholera toxin and protein and the purity was determined to be 92%. The toxin peak had a low endotoxin level of $3.1\;EU/{\mu}g$ of toxin. The purified toxin was used to prepare antiserum against whole toxin, which was used in a $G_{M1}$ ganglioside-binding ELISA to determine residual levels of toxin in an oral inactivated whole-cell cholera vaccine. The $G_{M1}$ ganglioside-binding ELISA was shown to be very sensitive and capable of detecting as little as 1 ng/ml of cholera toxin.
Bangladeshi indigenous chickens of mixed ages vaccinated twice at a three week interval with either conventional vaccines-$F_1$ (ocular) and M (mukteswar, Intramuscular), or heat resistant $V_4$ vaccine administered by either the ocular or oral routes, all showed satisfactory hemagglutination inhibition antibody (HI) responses and protection against Newcastle Disease (NCD) challenge persisting for four months. The antibody response to $F_1$ and M was higher than for $V_4$, which was similar whether administered by the ocular or oral routes. All vaccinated treatments have a significant level of protection compare to the control group (p<0.01). No significant difference (p>0.05) in the protection against controlled challenge with virulent NCD virus was found between vaccinated groups.
The fast development of vaccines against the novel coronavirus disease is among the most critical steps taken to control this potentially fatal viral disease. Like other vaccines, the coronavirus disease 2019 (COVID-19) vaccines can also cause unwanted reactions. Erythema multiforme (EM) is among the oral mucocutaneous side effects of COVID-19 vaccines. This study aimed to comprehensively review the reported cases of EM since the global onset of COVID-19 vaccination. Data from 31 relevant studies regarding the type and dose of COVID-19 vaccines administered, time of initiation of symptoms, age, and gender of patients, site of involvement, patients' medical history, and treatment options were extracted. In total, 90 patients were identified with EM as a side effect of COVID-19 vaccination across studies. EM had the highest frequency after receiving the first dose of mRNA vaccines in older individuals. The first symptoms of EM appeared in less than 3 days in 45% and after 3 days in 55% of patients. EM is not a common side effect of COVID-19 vaccination, and fear of its occurrence should not impede vaccination.
Kim, Jong-man;Yoon, Young-dhuk;Park, Jeung-moon;Kim, Bong-hwan
Korean Journal of Veterinary Research
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v.26
no.1
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pp.103-108
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1986
The oil emulsion and alhydrogel pilli vaccines were prepared from a strain(O9: K35, K99, F41) of enterotoxigenic Escherichia coli isolated from calves with diarrhea and their immunogenicity was tested in guinea-pigs, pregnant goats and cows. Serum antibody responses to K99 and F41 antigens in guinea-pigs given experimental oil and gel vaccines peaked at 4 and 6 weeks after vaccinations. At that time, the mean hemagglutination inhibition titers to K99 and F41 antigens in guinea-pigs given oil vaccine were 1:25 and 1:1, 218 and those given gel vaccine were 1:54 and 1:724 respectively. Agglutinin titers in pregnant goats given the oil vaccine were significantly higher(mean 1:2,347) compared to those of control group(mean 1:160). Less than 12.5% of goatlings from vaccinated goats developed scours compared to nearly 100% in control group after oral challenge with enterotoxigenic Escherichia coil within 24 hours after birth. The highest agglutinin titers of cow serum and colostrum and of the serum of calves 48 hours after birth from cows given oil vaccine were 1:256, 1:512 and 1:64 respectively. On the other hand, those titers of serum and colostrum and of the serum of nursing calves from nonvaccinated cows were 1:8, 1:16 and 1:20 respectively. The protective efficacy of the oil emulsion vaccine was 72.1% under field conditions. These results strongly indicated that the vaccine could be applied for protection of diarrhea caused by enterotoxigenic Escherichia coli in calves.
Eun-Jung Song;Erica Espano;Jeong-Hyun Nam;Jiyeon Kim;Kyu-Suk Shim;Eunju Shin;Young In Park;Chong-Kil Lee;Jeong-Ki Kim
IMMUNE NETWORK
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v.20
no.4
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pp.31.1-31.14
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2020
The effectiveness of current influenza vaccines is considered suboptimal, and 1 way to improve the vaccines is using adjuvants. However, the current pool of adjuvants used in influenza vaccination is limited due to safety concerns. Aloe vera, or aloe, has been shown to have immunomodulatory functions and to be safe for oral intake. In this study, we explored the potential of orally administered processed Aloe vera gel (PAG) as an adjuvant for influenza vaccines in C57BL/6 mice. We first evaluated its adjuvanticity with a split-type pandemic H1N1 (pH1N1) Ag by subjecting the mice to lethal homologous influenza challenge. Oral PAG administration with the pH1N1 Ag increased survival rates in mice to levels similar to those of alum and MF59, which are currently used as adjuvants in influenza vaccine formulations. Similarly, oral PAG administration improved the survival of mice immunized with a commercial trivalent influenza vaccine against lethal homologous and heterologous virus challenge. PAG also increased hemagglutination inhibition and virus neutralization Ab titers against homologous and heterologous influenza strains following immunization with the split-type pH1N1 Ag or the commercial trivalent vaccine. Therefore, this study demonstrates that PAG may potentially be used as an adjuvant for influenza vaccines.
Ha, Yu-Mi;Gong, Soo-Jung;Nguyen, Thi-Hoai;Ra, Chae-Hun;Kim, Ki-Hong;Nam, Yoon-Kwon;Kim, Sung-Koo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.5
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pp.964-967
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2008
Two structural protein genes, VP19 and VP466, of white spot syndrome virus (WSSV) were cloned and expressed in Sf21 insect cells using a baculovirus expression system for the development of injection and oral feeding vaccines against WSSV for shrimps. The cumulative mortalities of the shrimps vaccinated by the injection of rVP19 and rVP466 at 15 days after the challenge with WSSV were 50.2% and 51.8%, respectively. For the vaccination by oral feeding of rVP19 and rVP466, the cumulative mortalities were 49.2% and 89.2%, respectively. These results show that protection against WSSV can be generated in the shrimp, using the viral structural protein as a protein vaccine.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2003.06a
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pp.55-62
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2003
The mucosal immune system provides a first line of defense against invasion of infectious agents via inhalation, ingestion and sexual contact. For the induction of protective immunity at these invasion sites, one must consider the use of the CMIS, which interconnects inductive tissues, including PP and NALT, and effector tissues of the intestinal, respiratory and genitourinary tracts. In order for the CMIS to induce maximal protective mucosal immunity, co-administration of mucosal adjuvant or use of mucosal antigen delivery vehicle has been shown to be essential. When vaccine antigen is administered via oral or nasal route, antigen-specific Th 1 and Th2 cells, cytotoxic T lymphocytes(CTLs) and IgA B cell responses are effectively induced by the CMIS. In the early stages of induction of mucosal immune response, the uptake of orally or nasally administered antigens is achieved through a unique set of antigen-sampling cells, M cells located in follicle-associated epithelium(FAE) of inductive sites. After successful uptake, the antigens are immediately processed and presented by the underlying DCs for the generation of antigen-specific T cells and IgA committed B cells. These antigen-specific lymphocytes are then home to the distant mucosal effector tissues for the induction of antigen-specific humoral(e.g., IgA) and cell-mediated (e.g., CTL and Th1) immune responses in order to form the first line of defense. Elucidation of the molecular/cellular characteristics of the immunological sequence of mucosal immune response beginning from the antigen sampling and processing/presentation by M cells and mucosal DCs followed by the effector phase with antigen-specific lymphocytes will greatly facilitate the design of a new generation of effective mucosal antigen-specific lymphocytes will greatly facilitate the design of a new generation of a new generation of effective mucosal adjuvants and of a vaccine deliver vehicle that maximizes the use of the CMIS.
The efficacy of the alginate microsphere (Alginate MS) oral vaccine against Miamiensis avidus in olive flounder (Paralichthys olivaceus) was confirmed through challenge infections by both immersion and injection routes. In trial 1, the formalin-inactivated M. avidus coated with alginate, designated as 'IMa+Alginate MS' group, and the IMa group were administered with vaccines mixed with feed, with a total antigen dose of 3.75 × 106 cells/fish. When challenged with immersion infection at five weeks post vaccination, the relative percent survival (RPS) in the IMa+Alginate MS group was 50% (immersed in 50% seawater) and 37.5% (immersed in 100% seawater). The group that received only IMa showed a low survival rate. In trial 2, the antigen was fed mixed with feed at a total dose of 2.38 × 106 cells/fish for 5 days. Two weeks after oral vaccination, fish were intraperitoneally injected for infection. The RPS in the IMa+Alginate MS group was 30.8%, while the IMa-only group showed no vaccine efficacy. At five weeks post vaccination, when subjected to challenge infection by immersion in 50% seawater, the IMa+Alginate MS group recorded a RPS of 42.9%, whereas the IMa group had a RPS of 14.3%. The results of this study indicate that coating M. avidus antigen with alginate can provide higher protection in olive flounder compared to administering the antigen alone.
Rotavirus infection is the leading cause of severe diarrhea disease in infants and young children worldwide. Rotavirus infects every child at least once by her/his $5^{th}$ birthday. It has been known that single episode of rotavirus infection can protect or alleviate subsequent illness caused by both homotypic and heterotypic rotaviruses. There are two currently licensed rotavirus vaccines. One is human-bovine rotavirus reassortant pentavalent vaccine ($RotaTeq^{TM}$), which contains five reassortant rotavirus (expressing protein G1, G2, G3, G4 and P[8]) and was licensed in Korea for use among infants in 2007. Another is live-attenuated human rotavirus vaccine ($Rotarix^{TM}$) derived from 89-12 strain which represents the most common of the human rotavirus VP7(G1) and VP4(P[8]) antigens. $Rotarix^{TM}$ was licensed in Korea in 2008. Both live oral rotavirus vaccines are efficacious in preventing severe rotavirus gastroenteritis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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