The term molecular imaging can be broadly defined as the in vivo characterization and measurement of biologic processes at the cellular and molecular level. Optical imaging that has highly reproducibility and repetition used in molecular imaging research. In the bioluminescence imaging, animals carrying the luciferase gene are imaged with a cooled CCD(Charge-Coupled Device) camera to pick up the small number of photons transmitted through tissues. Molecular imaging analysis will allow us to observe the incipience and progression of the disease. But hardware device for molecular imaging and software for molecular image analysis were dependent on imports. In this paper, we suggest image processing methods and designed software for bioluminescence signal analysis. And we demonstrated high correlation(r=0.99) between our software's photon counts and commercial software's photon counts. ROI function and processing functions were accomplished without error. This study have the importance of the development software for bioluminescence image processing and analysis. And this study built the foundations for creative development of analysis methods. We expected this study lead the development of image technology.
Purpose: Optical imaging is providing great advance and improvement in genetic and molecular imaging of animals and humans. Optical imaging system consists of optical imaging devices, which carry out major function for monitoring, tracing, and imaging in most of molecular in-vivo researches. In bio-luminescent imaging, small animals containing luciferase gene locally irradiate light, and emitted photons transmitted through skin of the small animals are imaged by using a high sensitive charged coupled device (CCD) camera. In this paper, we introduced optical imaging system for the image acquisition of bio-luminescent signals emitted from small animals. Materials and Methods: In the system, Nikon lens and four LED light sources were mounted at the inside of a dark box. A cooled CCD camera equipped with a control module was used. Results: We tested the performance of the optical imaging system using effendorf tube and light emitting bacteria which injected intravenously into CT26 tumor bearing nude mouse. The performance of implemented optical imaging system for bio-luminescence imaging was demonstrated and the feasibility of the system in small animal imaging application was proved. Conclusion: We anticipate this system could be a useful tool for the molecular imaging of small animals adaptable for various experimental conditions in future.
Tak, Yoon-Oh;Kim, Hyeon-Sik;Park, Hyeong-Ju;Choi, Heung-Kook;Choi, Eun-Seo;Hann, S.-Wook;Lee, Byeong-Il
Journal of Biomedical Engineering Research
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v.32
no.2
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pp.85-92
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2011
Bioluminescence imaging (BLI) is the most sensitive animal imaging technique for molecular imaging research. Generally, highly sensitive CCD is used to detect an optical probe introduced in a living mouse. However, in many cases, the light signal emitted from a probe is too small to detect because it is scattered and attenuated by the tissue prior to being detected. The problem is that scattering and attenuation not only inhibit accurate measurement but also make image quality down. Thus we introduced a new method to reduce noise by using property of CCD and method to improve image quality of bioluminescence image by using two steps Gaussian blurring.
Objective : With the growing interests of bacteria as a targeting vector for cancer treatment, diverse genetically engineered Salmonella has been reported to be capable of targeting primary or metastatic tumor regions after intravenous injection into mouse tumor models. The purpose of this study was to investigate the capability of the genetically engineered Salmonella typhimurium (S. typhimurium) to access the glioma xenograft, which was monitored in mouse brain tumor models using optical bioluminescence imaging technique. Methods : U87 malignant glioma cells (U87-MG) stably transfected with firefly luciferase (Fluc) were implanted into BALB/cAnN nude mice by stereotactic injection into the striatum. After tumor formation, attenuated S. typhimurium expressing bacterial luciferase (Lux) was injected into the tail vein. Bioluminescence signals from transfected cells or bacteria were monitored using a cooled charge-coupled device camera to identify the tumor location or to trace the bacterial migration. Immunofluorescence staining was also performed in frozen sections of mouse glioma xenograft. Results : The injected S. typhimurium exclusively localized in the glioma xenograft region of U87-MG-bearing mouse. Immunofluorescence staining also demonstrated the accumulation of S. typhimurium in the brain tumors. Conclusion : The present study demonstrated that S. typhimurium can target glioma xenograft, and may provide a potentially therapeutic probe for glioma.
It is widely accepted that altered metabolism contributes to cancer growth and has been described as a hallmark of cancer. Our view and understanding of cancer metabolism has expanded at a rapid pace, however, there remains a need to study metabolic dependencies of human cancer in vivo. Recent studies have sought to utilize multi-modality imaging (MMI) techniques in order to build a more detailed and comprehensive understanding of cancer metabolism. MMI combines several in vivo techniques that can provide complementary information related to cancer metabolism. We describe several non-invasive imaging techniques that provide both anatomical and functional information related to tumor metabolism. These imaging modalities include: positron emission tomography (PET), computed tomography (CT), magnetic resonance imaging (MRI), magnetic resonance spectroscopy (MRS) that uses hyperpolarized probes and optical imaging utilizing bioluminescence and quantification of light emitted. We describe how these imaging modalities can be combined with mass spectrometry and quantitative immunochemistry to obtain more complete picture of cancer metabolism. In vivo studies of tumor metabolism are emerging in the field and represent an important component to our understanding of how metabolism shapes and defines cancer initiation, progression and response to treatment. In this review we describe in vivo based studies of cancer metabolism that have taken advantage of MMI in both pre-clinical and clinical studies. MMI promises to advance our understanding of cancer metabolism in both basic research and clinical settings with the ultimate goal of improving detection, diagnosis and treatment of cancer patients.
Purpose: Luciferase is one of the most commonly used reporter enzymes in the field of in vivo optical imaging. D-luciferin, the substrate for firefly luciferase has very high cost that allows this kind of experiment limited to small animals such as mice and rats. In this current study, we validated local injection of D-luciferin in the articular capsule for bioluminescence imaging in rabbits. Materials and Methods: Chondrocytes were cultured and infected by replication-defective adenoviral vector encoding firefly luciferase (Fluc). Chondrocytes expressing Fluc were injected or implanted in the left knee joint. The rabbits underwent optical imaging studies after local injection of D-luciferin at 1, 5, 7, 9 days after cellular administration. We sought whether optimal imaging signals was could be by a cooled CCD camera after local injection of D-luciferin. Results: Imaging signal was not observed from the left knee joint after intraperitoneal injection of D-luciferin (15 mg/kg), whereas it was observed after intraarticular injection. Photon intensity from the left knee joint of rabbits was compared between cell injected and implanted groups after intraarticular injection of D-luciferin. During the period of imaging studies, photon intensity of the cell implanted group was 5-10 times higher than that of the cell injected group. Conclusion: We successfully imaged chondrocytes expressing Fluc after intraarticular injection of D-luciferin. This technique may be further applied to develop new drugs for knee joint disease.
Kim, Hyeon-Sik;Choi, Eun-Seo;Tak, Yoon-O;Choi, Heung-Kook;Lee, Ju-Young;Min, Jung-Joon;Lee, Byeong-Il
Nuclear Medicine and Molecular Imaging
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v.43
no.5
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pp.451-458
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2009
Purpose: Optical molecular luminescence imaging is widely used for detection and imaging of bio-photons emitted by luminescent luciferase activation. The measured photons in this method provide the degree of molecular alteration or cell numbers with the advantage of high signal-to-noise ratio. To extract useful information from the measured results, the analysis based on a proper quantification method is necessary. In this research, we propose a quantification method presenting linear response of measured light signal to measurement time. Materials and Methods: We detected the luminescence signal by using lab-made optical imaging equipment of animal light imaging system (ALIS) and different two kinds of light sources. One is three bacterial light-emitting sources containing different number of bacteria. The other is three different non-bacterial light sources emitting very weak light. By using the concept of the candela and the flux, we could derive simplified linear quantification formula. After experimentally measuring light intensity, the data was processed with the proposed quantification function. Results: We could obtain linear response of photon counts to measurement time by applying the pre-determined quantification function. The ratio of the re-calculated photon counts and measurement time present a constant value although different light source was applied. Conclusion: The quantification function for linear response could be applicable to the standard quantification process. The proposed method could be used for the exact quantitative analysis in various light imaging equipments with presenting linear response behavior of constant light emitting sources to measurement time.
In this paper, we study to classify molecular imaging and applications to predict future. Molecular imaging in vivo at the cellular level and the molecular level changes taking place to be imaged, that is molecular cell biology and imaging technology combined with the development of the new field. Molecular imaging is used fluorescence, bioluminescence, SPECT, PET, MRI, Ultrasound and other imaging technologies. That is applied to monitoring of gene therapy, cell tracking and monitoring of cell therapy, antibody imaging, drug development, molecular interaction picture, the near-infrared fluorescence imaging of cancer using fluorescence, bacteria using tumor-targeting imaging, therapeutic early assessment, prediction and therapy. The future of molecular imaging would be developed through fused interdisciplinary research and mutual cooperation, which molecular cell biology, genetics, chemistry, physics, computer science, biomedical engineering, nuclear medicine, radiology, clinical medicine, etc. The advent of molecular imaging will be possible to early diagnosis and personalized treatment of disease in the future.
Purpose: Cancer specific killing can be achieved by therapeutic gene activated by cancer specific promotor. Expression of sodium iodide symporter (NIS) gene causes transportation and concentration of iodide into the cell, therefore radioiodine treatment after NIS gene transfer to cancer cell could be a form of radionuclide gene therapy. luciferase (Luc) gene transfected cancer cell can be monitored by in vivo optical imaging after D-luciferin injection. Aims of the study are to make vector with both therapeutic NIS gene driven by AFP promoter and reporter Luc gene driven by CMV promoter, to perform hepatocellular carcinoma specific radiodiodine gene therapy by the vector, and assessment of the therapy effect by optical imaging using luciferase expression. Materials and Methods: A Vector with AFP promoter driven NIS gene and CMV promoter driven Luc gene (AFP-NIS-CMV-Luc) was constructed. Liver cancer cell (HepG2, Huh-7) and non liver cancer cell (HCT-15) were transfected with the vector using liposome. Expression of the NIS gene at mRNA level was elucidated by RT-PCR. Radioiodide uptake, perchlorate blockade, and washout tests were performed and bioluminescence also measured by luminometer in these cells. In vitro clonogenic assay with 1-131 was performed. In vivo nuclear imaging was obtained with gamma camera after 1-131 intraperitoneal injection. Results: A Vector with AFP-NIS-CMV-Luc was constructed and successfully transfected into HepG2, Huh-7 and HCT-15 cells. HepG2 and Huh-7 cells with AFP-NIS-CMV-Luc gene showed higher iodide uptake than non transfected cells and the higher iodide uptake was totally blocked by addition of perchlorate. HCT-15 cell did not showed any change of iodide uptake by the gene transfection. Transfected cells had higher light output than control cells. In vitro clonogenic assay, transfected HepG2 and Huh-7 cells showed lower colony count than non transfected HepG2 and Huh-7 cells, but transfected HCT-15 cell did not showed any difference than non transfected HCT-15 cell. Number of Huh-7 cells with AFP-NIS-CMV-Luc gene transfection was positively correlated with radioidine accumulation and luciferase activity. In vivo nuclear imaging with 1-131 was successful in AFP-NIS-CMV-Luc gene transfected Huh-7 cell xenograft on nude mouse. Conclusion: A Vector with AFP promoter driven NIS and CMV promoter driven Luc gene was constructed. Transfection of the vector showed liver cancer cell specific enhancement of 1-131 cytotoxicity by AFP promoter, and the effect of the radioiodine therapy can be successfully assessed by non-invasive luminescence measurement.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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