Ultrastructural studies of oocyte degeneration in the oocyte, and the functions of follicle cells during oocyte degeneration are described to clarify the reproductive mechanism on oocyte degeneration of Mactra chinensis using cytological methods. Commonly, the follicle cells are attached to the oocyte. Follicle cells play an important role in oocyte degeneration. In particular, the functions of follicle cells during oocyte degeneration are associated with phagocytosis and the intracellular digestion of products. In this study, morphologically similar degenerated phagosomes (various lysosomes), which were observed in the degenerated oocytes, appeared in the follicle cells. After the spawning of the oocytes, the follicle cells were involved in oocyte degeneration through phagocytosis by phagolysosomes. Therefore, it can be assumed that follicle cells reabsorb phagosomes from degenerated oocytes. In this study, the presence of lipid granules, which occurred from degenerating yolk granules, gradually increased in degenerating oocytes. The function of follicle cells can accumulate reserves of lipid granules and glycogen in the cytoplasm, which can be employed by the vitellogenic oocyte. Based on observations of follicle cells attached to degenerating oocytes after spawning, the follicle cells of this species are involved in the lysosomal induction of oocyte degeneration for the reabsorption of phagosomes (phagolysosomes) in the cytoplasm for nutrient storage, as seen in other bivalves.
Ultastructural studies of oocyte degeneration and follicle cells in female Spisula sachalinensis are described for clams collected from Jumunjin, Gangwondo, Korea. The follicle cells playan integral role in vitellogenesis and oocyte degeneration by assimilating products originating from the degenerated oocytes (thus allowed the transfer of yolk precursors needed for vitellogenesis). The functions of the follicle cells include phagocytosis and intracellular digestion of products originating from oocyte degeneration. During the period of oocyte degeneration, follicle cells of this species probably have lysosomal systems for the breakdown and reabsorption of various phagosomes(phagolysosomes) in the cytoplasm for nutrient storage; this process has been observed in other bivalves.
The ultrastructure of germ cells and follicle cells during oogenesis, oocyte degeneration, reproductive cycle, and first sexual maturity in female Cyclina sinensis were investigated for clams collected from Simpo, Jeollabuk-do, Korea, by cytological and histological observations. Vitellogenesis occured by way of endogeous autosynthesis and exogenous heterosynthesis: vitellogensis occurred through a process of autosynthesis, which involves a combined activities of the Golgi complex, mitochondria, and rough endoplasmic reticulum. The process of heterosynthesis involved endocytotic incorporation of extraovarian precursors into the basal region of the early vitellogenic oocytes prior to the formation of vitelline envelope. The follicle cells appear to play an integral role in vitellogenesis and oocyte degeneration, functioning in phagocytosis and digestion of products originating from the degenerated oocytes: these functions can permit the transfer of yolk precursors needed for vitellogenesis. Follicle cells might have a lysosomal system for breakdown and might also resorb phagosomes in the cytoplasm for nutrient storage during oocyte degeneration.
Ultrastructural studies of oogenesis in oocytes, oocyte degeneration associated with the follicle cells in female Coecella chinensis were investigated for clams collected from Namhae, Geongsangnam-do, Korea. In this study, vitellogenesis during oogenesis in the oocytes occured by way of endogenous autosynthesis and exogenous heterosynthesis. Of two processes of vitellogenesis during oogenesis, the process of endogenous autosynthesis involved the combined activity of the Golgi complex, mitochondria and rough endoplasmic reticulum. whereas the process of exogenous heterosynthesis involved endocytotic incorporation of extraovarian precursors at the basal region of the oolema of the early vitellogenic oocytes prior to the formation of the vitelline coat. It is assumed that the follicle cells were involved in the development of previtellogenic and early vitellogenic oocytes and appear to play an integral role in vitellogenesis in the early and late vitellogenic oocytes by endocytosis of yolk precursors, and also they were involved in oocyte degeneration by assimilating products originating from the degenerated oocytes, thus allowed the transfer of york precursors needed for vitellogenesis (through phagocytosis by phagolysosomes after spawning). Follicle cells presumably have a lysosomal system for breakdown products of oocyte degeneration. and for reabsorption of various phagosomes (phagolysosomes) in the cytoplasm for nutrient storage during the period of oocyte degeneration.
The ultrastructure of oocytes during oogenesis and oocyte degeneration associated with follicle cells in female Sinonovacula constricta(Lamarck, 1818) were investigated by electron microscope observations. Ovarian follicles are surrounded by a matrix of vesicular connective tissue cells(VCT cells). VCT cells contain large quantities of glycogen particles and several lipid droplets in their cytoplasm. It is suggested that VCT cells act as a source of nutrients for vitellogenesis during oogenesis. In early vitellogenic oocytes, several coated vesicles, which appear at the basal region of the oocyte, lead to the formation of membrane-bound vesicles via endocytosis. The uptake of nutritive materials in coated vesicles formed by endocytosis appears through the formation of coated pits on the oolemma during vitellogenesis. During the late stage of oogenesis, yolk precursors(yolk granules), mitochondria and lipid droplets are present in the cytoplasm of late vitellogenic oocytes. In particular, proteinaceous yolk granules containing several different components are intermingles and form immature yolk granules. In the mature oocyte, small immature yolk granules are intermingled and form large mature yolk granules. Vitellogenesis occurs through a process of autosynthesis, involving combined activity of the Golgi complex, mitochondria and rough endoplasmic reticulum in the cytoplasm of vitellogenic oocytes. The process of heterosynthesis is where extraovarian precursors are incorporated into oocytes by endocytosis at the basal region of early vitellogenic oocytes before the formation of the vitelline coat. Follicle cells appear to play an important role in vitellogenesis and oocyte degeneration. The functions of attached follicle cells to the oocyte during oocyte degeneration are phagocytosis and digestion of phagosomes originating from oocyte degeneration. After digestion of phagosomes, it is assumed that the function of follicle cells can permit a transfer of yolk precursors necessary for vitellogenesis and allows for the accumulation of glycogen and lipid during oocyte degeneration, which can be employed by vitellogenic oocytes. Follicle cells of S. constricta may possess a lysosomal system for induction of oocyte breakdown and might resorb phagosomes in the cytoplasm for nutrient accumulation during oocyte degeneration.
한국 곰소만산 암컷 바지락(Ruditapes philippinarum)의 난모세포의 발달 및 퇴화과정 중 일어나는 미세구조적 변화에 관해 기술하였다. 난소소낭은 영양성분을 저장하는 포상결체조직세포(VCT cell)들의 기질에 의해 둘러싸여 있다. 난 형성과정 초기에 초기난황형성난모세포와 보조세포(follicle cell)들 사이에 desmosome-like gap junction들이 나타났다. 난황형성과정은 골지체, 미토톤드리아, 조면소포체가 결합되어 작용하는 자율합성과정을 통하여 일어나며, 난황막 형성에 앞서 난황형성과정의 초기와 난모세포 퇴화에 없어서는 안될 역할을 하는 것으로 나타났다: 보조세포들은 식세포작용 및 난모세포 퇴화로부터 유래되는 산물들의 세포내소화에 관여한다. 이들의 기능은 난황형성에 필요한 난황전구체들로 전환이 일어나게 한다. 또한, 보조세포들은 난황형성난모세포들이 이용하는 글리코겐과 지방적들을 세포질 내에 영양물질로 축적, 저장할 수 있다. 보조세포들은 난모세포가 퇴화되는 기간 중에는 난모세포의 붕괴를 위해 리소조옴 체제를 가지며, 영양물질 저장을 위해 세포질 내에 존재하는 여러 종류의 파고소옴(phagosome)들을 흡수하였다. 그러나 보조세포들은 난황형성과정에서 난황형성을 위한 난황전구체의 주된 공급원이 아니라고 추정된다.
In mammal, lots of follicles start simultaneously their growth but only a few oocytes are ovulated in every sexual cycles. Most of matured and grown oocytes are destined to degenerate by atresia. However, the molecular and physiological mechanisms are not elucidated yet. The present study was designed to establish an induction method of follicular atresia with ketamine or pentobarbitone and evaluate the effect of these anesthetics on oocyte maturation and granulosa cell apoptosis of the mouse ovarian follicle. The percentages of degenerated oocyte and apoptotic granulosa cell in ketamine treated groups were significantly higher than that in controls (58.9% vs 33.5%, p<0.01, degeneration; 44.9% vs 26.6%, p<0.01, apotosis). Futhermore, it was revealed that the concentrations of progesterone in both groups were markedly higher than that in control. In cunclusion, it is considered that ketamine induce an atresia as pentobarbitone, and may be useful for inducing follicular atresia.
Ultrastructural studies on oocyte development and vitellogenesis in oocytes, and the functions of follicle cells during oogenesis and oocyte degeneration were investigated to clarifyb the reproductive mechanism on vitellogenesis of Scapharca subcrenata using electron microscope observations. In this study, vitellogenesis during oogenesis in the oocytes occured by way of autosynthesis and heterosynthesis. Of two processes of vitellogenesis during oogenesis, the process of endogenous autosynthesis involved the combined activity of the Golgi complex, mitochondria and rough endoplasmic reticulum. However, the process of exogenous heterosynthesis involved endocytotic incorporation of extraovarian precursors at the basal region of the oolema of the early vitellogenic oocytes before the formation of the vitelline coat. In this study, follicle cells, which attached to the previtellogenic and vitellogenic oocytes, were easily found. In particular, the follicle cells were involved in the development of previtellogenic oocytes by the supply of nutrients, and vitellogenesis in the early and late vitellogenic oocytes by endocytosis of yolk precursors. Based on observations of follicle cells attached to degenerating oocytes after spawning, follicles of this species are involved in lysosomal induction of oocyte degeneration for the resorption phagosomes (phagolysosomes) in the cytoplasm for nutrient storage, as seen in other bivalves. In this study, the functions of follicle cells can accumulate reserves of lipid granules and glycogen particles for vitellogenesis from degenerating oocytes after spawning.
The effects of an antiprogesterone (RU 486) and an antiestrogen (tamoxifen) on ovulatory response and oocyte morphology were examined in pregnant mare serum gonadotropin (PMSG)-primed immatare female rats (28 days of age): a comparison has been made on two different regirnens primed with a "control" dose (4 IU) and a "superovulatory" dose (40 IU) of PMSG. Females for control control regimen received three consecutive injections of lmg RU486, lmg tamoxifen, or vehicle at 24, 36 and 48hr, and were killed at 72l'r after PMSG. Animals for superovalatory regimen received lmg RU486, 2.5mg tamoxifen, or vehicle fouowlag the injection schedule comparable to control regimen, and were killed at 60 and 72hr after PMSG. Compared to vehicle group, there was a significant reduction in ovulatory response as judged by the proportion of rats ovulating andi or by the mean number of oocytes per rat for each treatment of RU486 and tamoxifen in both regimens. The activity of tamoxifen in inhibiting the ovulatory response was greater in control, but less in superovulatory regimen than that of RU486 based on the dose employed for each antisteroid. In both regimens, RU 486 did not have any effect 6n the changes in the proportion of degenerate oocytes as well as ovarian weight, well tamoxifen treatment resulted in a marked promotion of oocyte degeneration as well as a great reduction in ovarian weight, compared to each parameter of vehicle group. RU486 treatment in each regimen did not alter the serum levels of any steroid hormones observed. Howerver, tamoxifen treatment was associated with significant increases in serum 17$\beta$-estradiol and decreases in progesterone in both regimens; also significant increases in androgens in superovulatory regimen. The results illustrate the relative inhibitory activity of RU486 and tamoxifen indicating major steroid hormone involved in PMSG-induced ovulation: 17$\beta$-estradiol for control and progesterone for superovulatory regimen. It also appears that tamoxifen-associated elevation of circulating 17$\beta$-estradiol andi or androgens could be in part, a contributing factor to the promotion of oocyte degeneration presumably by producing a hostile oviductal environment after ovulation.ent after ovulation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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