Hypomyelinating leukodystrophy type 2 (HLD2), is an inherited genetic disease of the central nervous system caused by recessive mutations in the gap junction protein gamma 2 (GJC2/GJA12). HLD2 is characterized by nystagmus, developmental delay, motor impairments, ataxia, severe speech problem, and hypomyelination in the brain. The GJC2 sequence encodes connexin 47 protein (Cx47). Connexins are a group of membrane proteins that oligomerize to construct gap junctions protein. In the present study, a novel missense mutation gene c.760G>A (p.Val254Met) was identified in a patient with HLD2 by performing whole exome sequencing. Following the discovery of the new mutation in the proband, we used Sanger sequencing to analyze his affected sibling and parents. Sanger sequencing verified homozygosity of the mutation in the proband and his affected sibling. The autosomal recessive inheritance pattern was confirmed since Sanger sequencing revealed both healthy parents were heterozygous for the mutation. PolyPhen2, SIFT, PROVEAN, and CADD were used to evaluate the function prediction scores of detected mutations. Cx47 is essential for oligodendrocyte function, including adequate myelination and myelin maintenance in humans. Novel mutation p.Val254Met is located in the second extracellular domain of Cx47, both extracellular loops are highly conserved and probably induce intramolecular disulfide interactions. This novel mutation in the Cx47 gene causes oligodendrocyte dysfunction and HLD2 disorder.
Trimethylaminuria (TMAuria), known as "fish odor syndrome," is a congenital metabolic disorder characterized by an odor resembling that of rotting fish. This odor is caused by the secretion of trimethylamine (TMA) in the breath, sweat, and body secretions and the excretion of TMA along with urine. TMAuria is an autosomal recessive disorder caused by mutations in flavin-containing monooxygenase 3 (FMO3). Most TMAuria cases are caused by missense mutations, but nonsense mutations have also been reported in these cases. Here, we describe the identification of a novel FMO3 gene mutation in a patient with TMAuria and her family. A 3-year-old girl presented with a strong corporal odor after ingesting fish. Genomic DNA sequence analysis revealed that she had compound heterozygous FMO3 mutations; One mutation was the missense mutation p.Val158Ile in exon 3, and the other was a novel nonsense mutation, p.Ser364X, in exon 7 of the FMO3 gene. Familial genetic analyses showed that the p.Val158Ile mutation was derived from the same allele in the father, and the p.Ser364X mutation was derived from the mother. This is the first description of the p.Ser364X mutation, and the first report of a Korean patient with TMAuria caused by novel compound heterozygous mutations.
Axonal Charcot-Marie-Tooth disease (CMT2) has most frequently been associated with mutations in the MFN2 gene. MFN2 encodes mitofusin 2, which is a mitochondrial fusion protein that plays an essential role in mitochondrial function. We report CMT2 in a Korean father and his son that manifested with gait difficulties and progressive atrophy of the lower legs. Molecular analysis revealed a novel heterozygous c.2096T>C (p.Leu699Pro) mutation in the exon 18 of MFN2 in both subjects. We suggest that this novel mutation in MFN2 is probably a pathogenic mutation for CMT2.
Naseer, Muhammad Imran;Alwasiyah, Mohammad Khalid;Abdulkareem, Angham Abdulrahman;Bajammal, Rayan Abdullah;Trujillo, Carlos;Abu-Elmagd, Muhammad;Jafri, Mohammad Alam;Chaudhary, Adeel G.;Al-Qahtani, Mohammad H.
Genes and Genomics
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제40권11호
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pp.1149-1155
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2018
Epileptic encephalopathies are genetically heterogeneous disorders which leads to epilepsy and cause neurological disorders. Seizure threshold 2 (SZT2) gene located on chromosome 1p34.2 encodes protein mainly expressed predominantly in the parietal and frontal cortex and dorsal root ganglia in the brain. Previous studies in mice showed that mutation in this gene can confers low seizure threshold, enhance epileptogenesis and in human may leads to facial dysmorphism, intellectual disability, seizure and macrocephaly. Objective of this study was to find out novel gene or novel mutation related to the gene phenotype. We have identified a large consanguineous Saudi family segregating developmental delay, intellectual disability, epilepsy, high forehead and macrocephaly. Exome sequencing was performed in affected siblings of the family to study the novel mutation. Whole exome sequencing data analysis, confirmed by subsequent Sanger sequencing validation study. Our results showed a novel homozygous mutation (c.9368G>A) in a substitution of a conserved glycine residue into a glutamic acid in the exon 67 of SZT2 gene. The mutation was ruled out in 100 unrelated healthy controls. The missense variant has not yet been reported as pathogenic in literature or variant databases. In conclusion, the here detected homozygous SZT2 variant might be the causative mutation that further explain epilepsy and developmental delay in this Saudi family.
Griscelli syndrome type 2 (GS2) is a rare autosomal recessive disease caused by mutations in the RAB27A gene. It is characterized by cutaneous hypopigmentation, immunodeficiency, and hemophagocytic lymphohistiocytosis. We describe 2 brothers who had GS2 with clinically diverse manifestations. The elder brother presented with a purely neurological picture, whereas the younger one presented with fever, pancytopenia, hepatosplenomegaly, and erythema nodosum. Considering that cutaneous hypopigmentation was a common feature between the brothers, genetic analysis for Griscelli syndrome was performed. As the elder sibling had died, mutation analysis was only performed on the younger sibling, which revealed a novel homozygous mutation in the RAB27A gene on chromosome 15 showing a single-base substitution (c.136T>A p.F46I). Both parents were heterozygous for the same mutation. This confirmed the diagnosis of GS2 in the accelerated phase in both siblings. The atypical features of GS2 in these cases are a novel mutation, isolated neurological involvement in one sibling, association with erythema nodosum, and 2 distinct clinical presentations in siblings with the same genetic mutation.
Mutations in the DNA methyltransferase 1 gene (DNMT1) were reported to cause two phenotypes: OMIM 604121 and OMIM 614116. The first phenotype includes autosomal dominant cerebellar ataxia, deafness, and narcolepsy, which were reported to be caused by mutations in exon 21. The second phenotype includes hereditary sensory and autonomic neuropathy type 1E, which was suggested to be caused by mutations in exon 20 and 21. In this article, we report a novel heterozygous missense variant c.898A>C, p.(Lys300Gln) in exon 12 of DNMT1 in a young woman who presented with pure cerebellar ataxia. This report indicates that a mutation in exon 12 may lead to pure cerebellar ataxia. Another possibility is that the patient is currently in an early stage of the disease, and as the disease progresses, she will have more manifestations. To confirm or exclude this possibility, a subsequent follow-up study reporting the disease progression in this patient may be needed. Further reports of cases with the same mutation are needed to confirm the phenotype of this mutation.
Cho, Hee-Won;Lee, Sang Taek;Cho, Heeyeon;Cheong, Hae Il
Clinical and Experimental Pediatrics
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제59권sup1호
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pp.103-106
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2016
Bartter syndrome (BS) is an inherited renal tubular disorder characterized by low or normal blood pressure, hypokalemic metabolic alkalosis, and hyperreninemic hyperaldosteronism. Type III BS is caused by loss-of-function mutations in CLCNKB encoding basolateral ClC-Kb. The clinical phenotype of patients with CLCNKB mutations has been known to be highly variable, and cases that are difficult to categorize as type III BS or other hereditary tubulopathies, such as Gitelman syndrome, have been rarely reported. We report a case of a 10-year-old Korean boy with atypical clinical findings caused by a novel CLCNKB mutation. The boy showed intermittent muscle cramps with laboratory findings of hypokalemia, severe hypomagnesemia, and nephrocalcinosis. These findings were not fully compatible with those observed in cases of BS or Gitelman syndrome. The CLCNKB mutation analysis revealed a heterozygous c.139G>A transition in exon 13 [p.Gly(GGG)465Glu(GAG)]. This change is not a known mutation; however, the clinical findings and in silico prediction results indicated that it is the underlying cause of his presentation.
The most common form of autosomal recessive hereditary spastic paraplegia (HSP) is caused by mutations in SPG11/KIAA1840 gene, which encodes for spatacsin. The clinical presentation of SPG11 is characterized by cognitive impairment, peripheral neuropathy and a thin corpus callosum in brain magnetic resonance imaging. We identified a novel homozygous nonsense mutation (c.6082C>T [p.Q2028]) in exon 32 of SPG11 in Korean siblings. Our findings suggest that this novel homozygous mutation in SPG11 is associated with HSP and with dysgenesis of the corpus callosum.
Cornelia de Lange syndrome (CdLS) is a rare, clinically and genetically heterogeneous, multi-system developmental disorder caused by mutations in genes that encode components of the cohesin complex. X-linked CdLS caused by an SMC1A mutation is an extremely rare disease characterized by phenotypes milder than those of classic CdLS. In the Republic of Korea, based on a literature review, one family with SMC1A-related CdLS with mild phenotypes has been genetically confirmed to date. In this study, we describe the clinical features of a Korean boy with a hemizygous novel missense mutation and his mother with a heterozygous mutation, i.e., c.2447G>A (p.Arg816His) in SMC1A, identified by multi-gene panel sequencing. The proband had a mild phenotype with typical facial features and his mother exhibited a mild, subclinical phenotype. This study expands the clinical spectrum of patients with X-linked CdLS caused by SMC1A variants. Moreover, these findings reinforce the notion that a dominant negative effect in a carrier female with a heterozygous mutation in SMC1A results in a phenotype milder than that in a male patient with the same mutation.
A novel strategy was developed for isolating suppressors from sporulation-deficient mutants. The mutation in the BCY1 gene, which codes for the regulatory subunit of cAMP-dependent protein kinase, when homozygous, results in diploids being meiosis and sporulation deficient. Two plasmids, YCp-MAT.alpha. and YEp-SPOT7-lacZ, were introduced into MAT.alpha. BCY1$\^$+/ or MAT.alpha. bcy1 haploid cells. The transformant of the BCY1$\^$+/ haploid cell produced .betha.-galactosidase under nutrient starvation, but the bcy1 transformant did not. Using this system, the mutagenesis experiment performed on the bcy1 transformant strain resulted in a number of sporulation mutants that produced .betha.-galactosidase under nutrient starvation. One complementation group, sob1, was identified from the isoalted suppressor mutants and characterized as a single recessive mutation by tetrad analysis. Genetic analysis revealed that the sob1 mutation suppressed the sporulation deficiency, the failure to arrest at the G1 phase of the cell cecle, and the sensitivity to heat or nitrogen starvation caused by the bcy1 mutation. However, the sob1 mutation did not suppress the sporulation deficiency of ime1 and of ime2 diploids. These results suggest that the sob1 mutation affects a gene which functions as a downstream regulator in both meiosis and cell cycle regulation.
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