본 연구에서는 인뇨에서 분리 정제한 urokinase와 유전자 재조합 CHO(Chinese Hamster Ovary) 세포 배양액으로부터 분리 정제한 pro-urokinase의 물리화학적 특성과 혈액 내에서의 효소활성을 비교 분석하였다. Two chain form인 urokinase와 single chain form인 pro-urokinase를 각각 순수 분리한 후, electrophoresis한 결과 모두 54 kd의 단일밴드를 나타냈다. 그러나 urokinase는 환원시켰을 때 33 kd과 21 kd으로 나누어짐을 확인하였으나 gel filtration결과 분자량이 54 kd 정도임을 확인되어 용액 내에서 단일분자로 존재함을 알 수 있었다. Urokinase와 pro-urokinase가 물리화학적으로 거의 동일한 구조를 가졌다는 사실은 isoelectro focusing에 의한 pI 값이 모두 8.6으로 동일하다는 점과, 아미노산 조성을 분석한 결과 동일하다는 사실로도 알 수 있었다. N-terminal 아미노산 서열을 분석한 결과, urokinase는 이중사슬구조이므로 N-terminal이 두개 존재하여 pro-urokinase의 서열(Ser-Asn-Glu-Leu-His-Gln-Val-Pro-Ser-Asn)이외에도, 159번째의 Ile다음부터 Ile-Gly-Gly-Glu-Phe-Thr-Thr-Ile-Glu가 같은 peak로 나타남을 확인하였다. 효소활성 조사결과 pro-urokinase와 urokinase는 모두 농도 의존적으로 혈전용해 활성을 보였으나, 특이하게도 짧은 반응시간동안에는 urokinase가 동일 농도 하에서 강한 활성을 보인 반면, 2시간이 지난 오랜 반응조건에서는 pro-urokinase가 혈전용해활성을 나타내었다. Fibrinogen에 대한 분해활성을 조사한 결과, urokinase는 혈장 내 fibrinogen을 상당히 손상시키지만, pro-urokinase는 거의 영향을 주지 않아 혈전선택성이 매우 좋음을 알 수 있었다.
본 연구에서는 C. fermentati SI가 생산하는 isoflavone 배당체 가수분해 효소를 클로닝하여 염기 서열을 밝힌 뒤 P. pastoris X-33에 형질전환하여 재조합 효소의 과발현을 시켰고, 또한 재조합 isoflavone 가수분해 효소의 효소학적 특성을 조사하였다. 재조합 isoflavone 가수분해 효소의 분자량은 약 50.4 kDa이었으며, Meyerozyma guilliermondii ATCC 6260의 exo-1,3-β-glucanase와 96%로 가장 높은 homology를 나타내었다. exo-1,3-β-glucanase의 ORF는 pPICZA 벡터로 클로닝 후 P. pastoris X-33으로 형질전환을 하였으며, His6-tag을 이용하여 효소를 정제하였다. 정제된 효소는 citrate phosphate buffer pH 4.5에서 최적 활성을 나타내었으며, 효소의 최적 활성 온도는 40℃로 나타났다. 40℃이상에서는 효소의 활성이 급격하게 감소함을 확인 하였으며, pH 안정성을 조사한 결과 비교적 넓은 범위인 4−8 사이에서 80%이상의 활성을 유지하였다. 따라서, 재조합 효소의 과발현을 통해 isoflavone aglycone의 효율적인 생산에 이용할 수 있을 것으로 사료된다.
The cDNA encoding human NeuAc ${\alpha}$2,3Gal$\beta$ 1,3GalNAc GalNac ${\alpha}$2,6-Sialyltransferase (hST6GalNac IV) was isolated by screening of human fetal liver cDNA library with a DNA probe generated from the cDNA sequence of mouse ST6Gal NAc IV (mkST6GalNAc IV). The cDNA sequence included an open reading frame coding for 302 amino acids, and comparative analysis of this cDNA with mST6GalNAc IV showed that each sequence of the predicted coding region contains 88% and 85% identifies in nucleotide and amino acid levels, respecively. The primary structure of this enzyme suggested a putative domain structure, like that in other glycosyltransferases, consisting of a short N-terminal cytoplamic domain, a transmembrane domain and a large C-terminal active domain. This enzyme expressed in COS-7 cells echibited transferase activity toward NeuAc ${\alpha}$2,3Gal$\beta$ 1,3GalNAc, fetuin and GM1b, although the activity toward the later is very low, no significant activity being detected toward Gal${\beta}$ 1,3Gal NAc or asialofetuin, the other glycoprotein substrates tested. The $^{14}$ C-sialylated residue of fetuin sialylated by this enzyem with CMP-[$^{14}$C]NeuAc was sensitive to treatment with ${\alpha}$2,8-specific sialidase of Vibrio cholerae but resistant to treatment with ${\alpha}$2,3-specific sialidase (NaNase I), and ${\alpha}$2,3- and ${\alpha}$2,8-specific sialidase of Newcastle disease virus. These results clearly indicated that the expressed enzyme is a type of GalNAc ${\alpha}$2,6-sialyltransferase like mST6GalNAc IV, which requires sialic acid residues linked to Gal${\beta}$1,3GalNAc-residues for its activity.
Major Royal Jelly Protein cDNAs of Apis cerana (AcMRJP) were cloned and characterized. The open reading frames (ORFs) of the AcMRJP1 and AcMRJP2 genes were 1302 and 1392 nucleotides, encoding 433 and 463 amino acid residues, respectively. The sequence divergences between AcMRJP1 and AcMRJP2 and their corresponding protein families in A. mellifera were 0.0618 and 0.0934 at the nucleotide level and 0.0912 and 0.1438 at the protein level, respectively. Phylogenetic analysis supports the orthologous similarity between these proteins. The deduced amino acids indicated high essential amino acid contents of AcMRJP1 and AcMRJP2 (47.5 and 44.8%, respectively). The genomic organization of both AcMRJP1 and AcMRJP2 was determined. Both the AcMRJP1 (3663 bp) and AcMRJP2 (3963 bp) genes contained six exons and five introns, where all boundaries conformed to the GT/AG rule. AcMRJP1 and AcMRJP2 cDNAs were cloned into pET17b, and both the recombinant (r) AcMRJP1 (47.9 kDa) and rAcMRJP2 (51.7 kDa) were expressed in the insoluble form. Western blot analysis and N-terminal sequencing of the solubilized proteins revealed successful expression of rAcMRJP1 and rAcMRJP2 in vitro. The yields of the purified rAcMRJP1 and rAcMRJP2 were approximately 20 and 8mg protein per liter of the flask culture, respectively.
Interleukin-2 enhancer binding factor 2 (ILF2) was reported to regulate transcription of interleukin-2 (IL-2), a central cytokine in the regulation of T-cell responses. This property of ILF2 was well characterized in human and mammals, but little is known in bony fish. In this paper, an ILF2 homologue was cloned and well characterized from Tetraodon nigrovirid is for the further investigation of the function of ILF2 in bony fish. The full-length Tetraodon ILF2 cDNA was 1380 bp in size and contained an open reading frame (ORF) of 1164 bp that translates into a 387 amino-acid peptide with a molecular weight of 42.9 kDa, a 5' untranslated region (UTR) of 57 bp, and a 3' UTR of 159 bp containing a poly A tail. The deduced peptide of Tetraodon ILF2 shared an overall identity of 58%~93% with other known ILF2 sequences, and contained two N-glycosylation sites, two N-myristoylation sites, one RGD cell attachment sequence, six protein kinase C phosphorylation sites, one amino-terminal RGG-rich single-stranded RNA-binding domain, and a DZF zinc-finger nucleic acid binding domain, most of which were highly conserved through species compared. Constitutive expression of Tetraodon ILF2 was observed in all tissues examined, including gill, gut, head kidney, spleen, liver, brain and heart. The highest expression was detected in heart, followed by liver, head kidney and brain. Stimulation with LPS did not significantly alter the expression of Tetraodon ILF2. Gene organization analysis showed that the Tetraodon ILF2 gene have fifteen exons, one more than other known ILF2 genes in human and mouse. Genes up- and down-stream from the Tetraodon ILF2 were Rpa12, Peroxin-11b, Smad4, Snapap and Txnip homologue, which were different from that in human and mouse.
Lactobacillus crispatus (L. crispatus) ZJ001 is highly adhesive to epithelial cells and expresses S-layer proteins. In this study, S-S-layer layer genes were sequenced and expressed in E. coli to characterize the function of proteins with this particular strain. L. crispatus ZJ001 harbored two S-layer genes slpA and slpB, and only slpA gene was expressed in the bacterium, as revealed by RT-PCR and immunoassays. The mature SlpA showed 47% amino acid sequence identity to SlpB. The SlpA and SlpB of L. crispatus ZJ001 were highly homologous at the C-terminal region to other Lactobacillus S-layer proteins, but were substantially variable at N-terminal and middle regions. Electron microscopic analysis indicated that His-slpA expressed in E. coli was able to form a sheet-like structure similar to the natural S-layer, but His-slpB formed as disc-like structures. In the cell binding experiments, HeLa cells were able to bind to both recombinant His-slpA and His-slpB proteins to the extent similar to the natural S-layer. The cell binding domains remain mostly in the N-terminal regions in SlpA and SlpB, as shown by high binding of truncated peptides SlpA2-228 and SlpB2-249. Our results indicated that SlpA was active and high binding to HeLa cells, and that the slpA gene could be targeted to display foreign proteins on the bacterial surface of ZJ001 as a potential mucosal vaccine vector.
Outer envelope membrane proteins of chloroplasts encoded by the nuclear genome are transported without the N-terminal transit peptide. Here, we investigated the targeting mechanism of AtOEP7, an Arabidopsis homolog of small outer envelope membrane proteins in vivo. AtOEP7 was expressed transiently in protoplasts or stably in transgenic plants as fusion proteins with GFP. In both cases AtOEP7:GFP was targeted to the outer envelope membrane when assayed under a fluorescent microscope or by Western blot analysis. Except the transmembrane domain, deletions of the N- or C-terminal regions of AtOEP7 did not affect targeting although a region closed to the C-terminal side of the transmembrane domain affected the targeting efficiency. Targeting experiments with various hybrid transmembrane mutants revealed that the amino acid sequence of the transmembrane domain determines the targeting specificity The targeting mechanism was further studied using a fusion protein, AtOEP7:NLS:GFP, that had a nuclear localization signal. AtOEP7:NLS:GFP was efficiently targeted to the chloroplast envelope despite the presence of the nuclear localization signal. Taken together, these results suggest that the transmembrane domain of AtOEP7 functions as the sole determinant of targeting specificity and that AtOEP7 may be associated with a cytosolic component during translocation to the chloroplast envelope membrane.
알긴산을 분해하기 위하여 갈조류로부터 분해활성이 있는 해양미생물을 분리하였다. 분리된 균주의 16S ribosomal DNA를 분석한 결과 이전에 보고했던 ALG-5 균주와 비슷한 Streptomyces sp.에 속하는 것으로 나타났다. 상동성이 있는 염기서열로 고안한 특이적인 primer로 PCR을 행함로서 Streptomyces sp. M3의 새로운 alginate lyase 유전자를 클로닝하였다. M3 alginate lyase의 예상 아미노산 서열에는 N-terminal 영역에 YXRSELREM 서열과 C-terimnal 영역에 YFKAGXYXQ 서열이 보존되어 있었다. M3 alginate lyase 단백질의 homology model은 Corynebacterium sp. ALY-1으로부터 얻은 단백질인 alyPG와 같이 $\beta$-jelly roll fold를 main domain으로 가지고 있음이 나타났다. M3 alginate lyase 유전자를 가지는 재조합 E. coli의 세포균질액은 polymannuronate block보다는 polyguluronate block에 대하여 높은 분해력을 가지고 있었다. 아미노산 서열 다중정열 및 homology modeling으로부터 얻은 결과는 M3 alginate lyase가 Family PL-7으로 분류될 수 있음을 말해 준다.
Lee Dong-Hoon;Bae Han-Hong;Kang In-Kyu;Byun Jae-Kyun;Kang Sang-Gu
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권8호
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pp.1192-1200
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2006
An apple polygalacturonase-inhibiting protein (PGIP), which specifically inhibits endopolygalacturonase (PG, EC 3.2.1.15) from Botryosphaeria dothidea, was purified from Botryosphaeria dothidea-infected apple (Malus domestica cv. Fuji) fruits. The purified apple PGIP had a molecular mass of 40 kDa. The N-terminal amino acid sequence of the purified protein showed high homologies to those of PGIP from pear (100%), tomato (70%), and bean (65%). We also purified polygalacturonase (PG) from B. dothidea. The PG hydrolyzes pectic components of plant cell walls. When the extracted apple pectic cell wall material was treated with purified apple PGIP and B. dothidea PG, the amount of uronic acid released was lower than that treated with B. dothidea PG alone. This result demonstrates that PGIP functions specifically by inhibiting cell wall maceration of B. dothidea PG Furthermore, we characterized the de novo function of the PGIP against PG on the solubilization and depolymerization of polyuronides from cell wall of apple fruits inoculated with B. dothidea. This result demonstrated that the PGIP of plants exhibits one of the direct defense mechanisms against pathogen attack by inhibiting PGs that are released from pathogens for hydrolysis of cell wall components of plants.
Two novel calcium-binding proteins, named CAB-I and CAB-II, have been isolated from Streptomyces coelicolor. Purification of the calcium-binding proteins involved heat treatment, fractionation with ammonium sulfate, acid treatment, anion exchange and hydrophobic interaction column chromatography, FPLC gel filtration, and preparative isoelectric focusing. A chelex competitive assay and 45Ca autoradiography verified the calcium-binding ability of the proteins. The major band CAB-II has an apparent molecular weight of 26,000 determined by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and 340,000 determined by gel filtration. The isoelectric point of this molecule showed the acidic nature of the molecule. N-terminal amino acid sequence analysis shows homology to rat Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase-II (CAB-II) and yeast phosphoprotein phosphatase (CAB-I).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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