The aerial part of Artemisia iwayomogi Kitamura has traditionally been used for inflammation, infectious disease, cancer, pyretic, diuretic, liver protective effect, and choleretic purposes in Korea. We investigated that the essential oil induces apoptosis in KB cell as evidenced by Hoechst-33258 dye staining, flow cytometry (cell cycles), and DNA fragmentation for nuclear condensation and Western blotting for activation of caspases-3, -8, -9, Bax, Bcl-2, cytochrome c, and poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) cleavage. In the present study, we found that the essential oil could induce apoptosis in KB cells, as characterized by DNA fragmentation, activation of caspase-3, -8, and -9, and PARP cleavage. The efficacious induction of apoptosis was observed as a dose-dependent. The essential oil-induced apoptotic cell death was accompanied by up-regulation of Bax and down-regulation of Bcl-2. The essential oil also caused the loss of mitochondrial membrane potential and cytochrome c release from mitochondria to cytosol. These findings indicate that mitochondrial pathways might be involved in the essential oil-induced apoptosis and enhance our understanding of the anticancer function of the essential oil in herbal medicine.
The ubiquitin-proteasome mediated protein degradation pathway plays an important role in regulating both cell proliferation and cell death. Proteasome inhibitors are well known to induce apoptosis in various human cancer cell lines. We investigated the effect of combined treatment with proteasome inhibitor and TRAIL, and a possible mechanism of the enhancing apoptosis by the both treatment, on TRAIL-resistant non-small cell lung cancer. A549 cells were exposed to the N-Acetyl-Leu-Leu-Norleu-al (ALLN) as a proteasome inhibitor and then treated with recombinant TRAIL protein. In A549 cells under proteasome inhibition conditions by pretreatment with ALLN, TRAIL treatment significantly decreased cell viability compared to that ALLN and TRAIL alone treatment. Also, the both treatment induced cell damage through DNA fragmentation and p53 expression. In addition, the combined treatment of both markedly increased caspase-8 activation, especially the exposure for 2 h, and Bax expression and induced the dissipation of mitochondrial transmembrane potential in A549 cells. Taken together, these findings showed that proteasome inhibition by ALLN enhanced TRAIL-induced apoptosis via DNA degradation by activated P53 and mitochondrial transmembrane potential loss by caspase-8 activation and bax expression. Therefore, our results suggest that proteasome inhibitor may be used a very effectively chemotherapeutic agent for the tumor treatment, especially TRAIL-resistant tumor cell.
The molecular mechanism of ischemia/reperfusion injury remains unclear. Reactive oxygen species (ROS) are implicated in cell death caused by ischemia/reperfusion in vivo or hypoxia in vitro. Poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) activation has been reported to be involved in hydrogen peroxide-induced cell death in renal epithelial cells. This study was therefore undertaken to evaluate the role of P ARP activation in chemical hypoxia in opossum kidney (OK) cells. Chemical hypoxia was induced by incubating cells with antimycin A, an inhibitor of mitochondrial electron transport. Exposure of OK cells to chemical hypoxia resulted in a time-dependent cell death. In OK cells subjected to chemical hypoxia, the generation of ROS was increased, and this increase was prevented by the $H_2O_2$ scavenger catalase. Chemical hypoxia increased P ARP activity and chemical hypoxia-induced cell death was prevented by the inhibitor of PARP activation 3-aminobenzamide. Catalase prevented OK cell death induced by chemical hypoxia. $H_2O_2$ caused PARP activation and $H_2O_2-induced$ cell death was prevented by 3-aminobenzamide. Taken together, these results indicate that chemical hypoxia-induced cell injury is mediated by PARP activation through H202 generation in renal epithelial cells.
Fasanmade, Adedigbo A.;Owuor, Edward D.;Ee, Rachel P.L.;Qato, Dima;Heller, Mark;Kong, Ah Ng Tony
Archives of Pharmacal Research
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v.24
no.2
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pp.126-135
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2001
Quinacrine (QU), a phospholipase-A2 (PLA-2) inhibitor has been used clinically as a chemotherapeutic adjuvant. To understand the mechanisms leading to its chemotherapeutic effect, we have investigated QU-induced apoptotic signaling pathways in human cervical squamous carcinoma HeLa cells. In this study, we found that QU induced cytochrome c-dependent apoptotic signaling. The release of pro-apoptotic cytochrome c was QU concentration- and time-dependent, and preceded activation of caspase-9 and -3. Flow cytometric FACScan analysis using fluorescence intensities of $DiOC_6$/ demonstrated that QU-induced cytochrome c release was independent of mitochondrial permeability transition (MPT), since the concentrations of QU that induced cytochrome c release did not alter mitochondrial membrane potential (${\blacktriangle}{\Psi}_m$). Moreover, kinetic analysis of caspase activities showed that cytochrome c release led to the activation of caspase-9 and downstream death effector caspase-3, Caspase-3 inhibitor (Ac-DEVD-CHO) partially blocked QU-induced apoptosis, suggesting the importance of caspase-3 in this apoptotic signaling mechanism. Supplementation with arachidonic acid (AA) sustained caspase-3 activation induced by QU. Using inhibitors against cellular arachidonate metabolism of lipooxygenase (Nordihydroxyguaiaretic Acid, NDGA) and cyclooxygenase (5,8,11,14-Eicosatetraynoic Acid, ETYA) demonstrated that QU-induced apoptotic signaling may be dependent on its role as a PLA-2 inhibitor. Interestingly, NDCA attenuated QU-induced cytochrome c release, caspase activity as well as apoptotic cell death. The blockade of cytochrome c release by NDCA was much more effective than that attained with cyclosporin A (CsA), a MPT inhibitor. ETYA was not effective in blocking cytochrome c release, except under very high concentrations. Caspase inhibitor z-VAD blocked the release of cytochrome c suggesting that this signaling event is caspase dependent, and caspase-8 activation may be upstream of the mitochondrial events. In summary, we report that QU induced cytochrome c-dependent apoptotic signaling cascade, which may be dependent on its role as a PLA-2 inhibitor. This apoptotic mechanism induced by QU may contribute to its known chemotherapeutic effects.
To examine the antitumor effect of proso millet grains, whether proso millet grains exert apoptotic activity against human cancer cells was investigated. When the cytotoxicity of 80% ethanol (EtOH) extract of proso millet grains was tested against various cancer cells using MTT assay, more potent cytotoxicity was observed against human breast cancer MDA-MB-231 cells than against other cancer cells. When the EtOH extract was evaporated to dryness, dissolved in water, and then further fractionated by sequential extraction using four organic solvents (n-hexane, methylene chloride, ethyl acetate, and n-butanol), the BuOH fraction exhibited the highest cytotoxicity against MDA-MB-231 cells. Along with the cytotoxicity, TUNEL-positive apoptotic nucleosomal DNA fragmentation and several apoptotic responses including BAK/BAX activation, mitochondria membrane potential (Δψm) loss, mitochondrial cytochrome c release into the cytosol, activation of caspase-8/-9/-3, and degradation of poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) were detected. However, human normal mammary epithelial MCF-10A cells exhibited a significantly lesser extent of sensitivity compared to malignant MDA-MB-231 cells. Irrespective of Fas-associated death domain (FADD)-deficiency or caspase-8-deficiency, human T acute lymphoblastic leukemia Jurkat cells displayed similar sensitivities to the cytotoxicity of BuOH fraction, excluding an involvement of extrinsic apoptotic mechanism in the apoptosis induction. These results demonstrate that the cytotoxicity of BuOH fraction from proso millet grains against human breast cancer MDA-MB-231 cells is attributable to intrinsic apoptotic cell death resulting from BAK/BAX activation, and subsequent mediation of mitochondrial damage-dependent activation of caspase cascade.
Activation of protein kinase C (PKC) is closely linked with endothelial dysfunction. However, the effect of $PKC{\beta}II$ on endothelial dysfunction has not been characterized in cultured endothelial cells. Here, using adenoviral $PKC{\beta}II$ gene transfer and pharmacological inhibitors, the role of $PKC{\beta}II$ on endothelial dysfucntion was investigated in cultured endothelial cells. Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) increased reactive oxygen species (ROS), p66shc phosphorylation, intracellular adhesion molecule-1, and monocyte adhesion, which were inhibited by $PKC{\beta}i$ (10 nM), a selective inhibitor of $PKC{\beta}II$. PMA increased the phosphorylation of CREB and manganese superoxide dismutase (MnSOD), which were also inhibited by $PKC{\beta}i$. Gene silencing of CREB inhibited PMA-induced MnSOD expression, suggesting that CREB plays a key role in MnSOD expression. Gene silencing of $PKC{\beta}II$ inhibited PMA-induced mitochondrial ROS, MnSOD, and ICAM-1 expression. In contrast, overexpression of $PKC{\beta}II$ using adenoviral $PKC{\beta}II$ increased mitochondrial ROS, MnSOD, ICAM-1, and p66shc phosphorylation in cultured endothelial cells. Finally, $PKC{\beta}II$-induced ICAM-1 expression was inhibited by Mito-TEMPO, a mitochondrial ROS scavenger, suggesting the involvement of mitochondrial ROS in PKC-induced vascular inflammation. Taken together, the results suggest that $PKC{\beta}II$ plays an important role in PMA-induced endothelial dysfunction, and that the inhibition of $PKC{\beta}II$-dependent p66shc signaling acts as a therapeutic target for vascular inflammatory diseases.
Mitophagy, a cellular process that selectively targets dysfunctional mitochondria for degradation, is currently a hot topic in research into the pathogenesis and treatment of many human diseases. Considering that hypoxia causes mitochondrial dysfunction, which results in cell death, we speculated that selective activation of mitophagy might promote cell survival under hypoxic conditions. In the present study, we introduced the Regulator of calcineurin 1-1L (Rcan1-1L) to initiate the mitophagy pathway and aimed to evaluate the effect of Rcan1-1L-induced mitophagy on cell survival under hypoxic conditions. Recombinant adenovirus vectors carrying Rcan1-1L were transfected into human umbilical vein endothelial cells and human adult cardiac myocytes. Using the 3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide MTT assay and Trypan blue exclusion assay, Rcan1-1L overexpression was found to markedly reverse cell growth inhibition induced by hypoxia. Additionally, Rcan1-1L overexpression inhibited cell apoptosis under hypoxic conditions, as detected by annexin V-fluorescein isothiocyanate (FITC)/propidium iodide (PI) apoptosis assay. Meanwhile, the mitochondria-mediated cell apoptotic pathway was inhibited by Rcan1-1L. In contrast, knockdown of Rcan1-1L accelerated hypoxia-induced cell apoptosis. Moreover, Rcan1-1L overexpression significantly reduced mitochondrial mass, decreased depolarized mitochondria, and downregulated ATP and reactive oxygen species production. We further delineated that the loss of mitochondrial mass was due to the activation of mitophagy induced by Rcan1-1L. Rcan1-1L overexpression activated autophagy flux and promoted translocation of the specific mitophagy receptor Parkin into mitochondria from the cytosol, whereas inhibition of autophagy flux resulted in the accumulation of Parkin-loaded mitochondria. Finally, we demonstrated that mitochondrial 1permeability transition pore opening was significantly increased by Rcan1-1L overexpression, which suggested that Rcan1-1L might evoke mitophagy through regulating mitochondrial permeability transition pores. Taken together, we provide evidence that Rcan1-1L overexpression induces mitophagy, which in turn contributes to cell survival under hypoxic conditions, revealing for the first time that Rcan1-1L-induced mitophagy may be used for cardioprotection.
Effects of organic compounds, photosensitizers and influx of metal ions on the light-induced mitochondrial ATP synthase in Lentinus edodes purified by stepped sucrose density gradient centrifugation were studied. In our previous work, the activation wavelength and the illumination time of mitochondrial ATP synthase were 470 nm and 15 sec, respectively. This enzyme was activated 85% by 1 mmole 2,6-dichlorophenol indopheol and inhibited by 1 mmole 2,-4-dinitrophenol, $10\;{\mu}mole$ 2-heptyl-4-hydroxyquinoline-N-oxide and $100\;{\mu}g$ oligomycin per ml of ethanol. Particularly, the enzyme was activated 414% by 10 mmole phenazine methosulfate as photosensitizer at 470 nm light. In the influx effects of $Fe^{3+}$ and $Fe^{2+}$ ion, the activity of the above enzyme increased under the optimal light condition compared with nonillumination state.
Vitrification methods are commonly used for mammalian reproduction through the long-term storage of blastocyst produced in vitro. However, the survival and quality of embryos following vitrification are significantly low compared with blastocyst from in vitro production (IVP). This study evaluates that the survival of frozen-thawed bovine embryos was relevant to mitochondrial superoxide derived mitochondrial activity. Here we present supplementation of the cryopreservation medium with Mito-TEMPO (0.1 µM) induced a significant (p < 0.001; non-treated group: 56.8 ± 8.7%, reexpanded at 24 h vs Mito-TEMPO treated group: 77.5 ± 8.9%, re-expanded at 24 h) improvement in survival rate of cryopreserved-thawed bovine blastocyst. To confirm the quality of vitrified blastocyst after thawing, DNA fragmentation of survived embryos was examined by TUNEL assay. As a result, TUNEL positive cells rates of frozen-thawed embryos were lower in the Mito-TEMPO treated group (4.2 ± 1.4%) than the non-treated group (7.1 ± 3.5%). In addition, we investigated the intracellular ROS and mitochondrial specific superoxide production using DCF-DA and Mito-SOX staining in survived bovine embryos following vitrification depending on Mito-TEMPO treatment. As expected, intracellular ROS levels and superoxide production of vitrified blastocysts after cryopreservation were significantly reduced (p < 0.05) according to Mito-TEMPO supplement in freezing medium. Also, mitochondrial activity measured by MitoTracker Orange staining increased in the frozen-thawed embryos with Mito-TEMPO compared with non-treated group. These results indicate that the treatment of Mito-TEMPO during cryopreservation might induce reduction in DNA fragmentation and apoptosis-related ROS production, consequently increasing mitochondrial activation for developmental capacity of frozen-thawed embryos.
Toxoplasma gondii, an intracellular protozoan parasite that infects one-third of the world's population, has been reported to hijack host cell apoptotic machinery and promote either an anti- or proapoptotic program depending on the parasite virulence and load and the host cell type. However, little is known about the regulation of human FHs 74 small intestinal epithelial cell viability in response to T. gondii infection. Here we show that T. gondii RH strain tachyzoite infection or ESP treatment of FHs 74 Int cells induced apoptosis, mitochondrial dysfunction and ER stress in host cells. Pretreatment with 4-PBA inhibited the expression or activation of key molecules involved in ER stress. In addition, both T. gondii and ESP challenge-induced mitochondrial dysfunction and cell death were dramatically suppressed in 4-PBA pretreated cells. Our study indicates that T. gondii infection induced ER stress in FHs 74 Int cells, which induced mitochondrial dysfunction followed by apoptosis. This may constitute a potential molecular mechanism responsible for the foodborne parasitic disease caused by T. gondii.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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