In order to know the antifungal characteristics of saturated fatty acids having 6 to 12 carbons, their minimum inhibitory concentrations (MICs) and minimum fungicidal concentrations (MFCs) were estimated against Saccharomyces cerevisiae. Fatty acids from C6 to C11 exhibited increasing activity with chain length, but C12 fatty acid did not show activity at all. In relation to antifungal modes of actions, fatty acids investigated showed on inhibitory activity toward the plasma membrane H+-ATPase of Saccharomyces cerevisiae. Their inhibitions to the glucose-induced acidification and ATP hydrolysis caused by the proton pump were found to be in common wiht antifungal activities. At the test concentration of 1mM, hexanoic acid (C6) showed the lowest inhibition of about 30%, while undecanoic acid(C11) showed the strongest inhibition of over 90%. In addition, as seen with antifungal activity, the inhibitory activity of dodecanoic acid (C12) was suddenly reduced to less than 50%.
Continentalic acid (CA, (-)-pimara-8(14), 15-diene-19-oic acid) was isolated from the roots of Aralia cordata (Araliaceae) using bioassay-guided fractionation of a crude chloroform extract. The antibacterial activity of CA against Enterococcus faecalis and Enterococcus gallinarium was estimated by determining minimum inhibitory concentrations (MICs) and minimum bactericidal concentrations (MBCs). CA exhibited potent activity against standard vancomycin-resistant enterococci (VRE) and vancomycin-susceptible enterococci (VSE), with MICs and MBCs values between 4 and $8{\mu}g/mL$ and 4 and $16{\mu}g/mL$, respectively. This compound exhibited potent activity against strains of VRE, which are highly resistant to clinically useful antibiotics. These findings suggest that continentalic acid may be useful in controlling enterococcal infection.
To improve the detection of methicillin resistant staphylococci, lowered incubation temperature (30.deg.) and inclusion of sodium chloride in media have been empirically recommended. However, in this study, we found that sodium chloride in Peptone-Yeast Extract-K$\_$2/HPO$\_$4/ (PYK) medium decreased methicillin minimum inhibitory concentrations. Divalent cations were shown to restore the expression of staphylococcal methicillin resistance. However, when it was determined by efficiency of plating, sodium chloride increased methicillin resistance expression on agar medium in which higher divalent cations were contained in the agar medium. The decrease of minimum inhibitory concentrations at 30.deg.C by sodium chloride occurred in Brain Heart Infusion but did not occur in other media investigated. Interestingly, both PYK and Brain Heart Infusion media had peptone, which contain cholic acids having detergent activities. Inclusion of sodium chloride in PYK caused a higher rate of autolysis. Penicillin binding protein 2a that has a low affinity to beta-lactam antibiotics, was highly inducible in methicillin resistant Staphylococcus epidermidis strains. In this study, we found that autolysins that are activated by the sodium chloride decreased the minimum inhibitory concentration at 30.deg.C, and peptidoglycan is weakened due to the presence of methicillin. Peptone in the media may aggravate the fragile cells. However, stabilization due to the presence of divalent cations and production of penicilin binding protein 2a increase the survival of staphylococci.
Cinnamaldehyde is a natural compound extracted from cinnamon bark essential oil, acclaimed for its versatile properties in both pharmaceutical and agricultural fields, including antimicrobial, antioxidant, and anticancer activities. Although potential of cinnamaldehyde against plant pathogenic bacteria like Agrobacterium tumefaciens and Pseudomonas syringae pv. actinidiae causative agents of crown gall and bacterial canker diseases, respectively has been documented, in-depth studies into cinnamaldehyde's broader influence on plant pathogenic bacteria are relatively unexplored. Particularly, Pectobacterium spp., gram-negative soil-borne pathogens, notoriously cause soft rot damage across a spectrum of plant families, emphasizing the urgency for effective treatments. Our investigation established that the Minimum Inhibitory Concentrations (MICs) of cinnamaldehyde against strains P. odoriferum JK2, P. carotovorum BP201601, and P. versatile MYP201603 were 250 ㎍/ml, 125 ㎍/ml, and 125 ㎍/ml, respectively. Concurrently, their Minimum Bactericidal Concentrations (MBCs) were found to be 500 ㎍/ml, 250 ㎍/ml, and 500 ㎍/ml, respectively. Using RNA-sequencing analysis, we identified 1,907 differentially expressed genes in P. carotovorum BP201601 treated with 500 ㎍/ml cinnamaldehyde. Notably, our results indicate that cinnamaldehyde upregulated nitrate reductase pathways while downregulating the citrate cycle, suggesting a potential disruption in the aerobic respiration system of P. carotovorum during cinnamaldehyde exposure. This study serves as a pioneering exploration of the transcriptional response of P. carotovorum to cinnamaldehyde, providing insights into the bactericidal mechanisms employed by cinnamaldehyde against this bacterium.
This study aimed to identify and characterize the antimicrobial activity of prodigiosin produced by Serratia sp. $PDGS^{120915}$ isolated from stream water in Busan, Korea; the identification was performed using phonological, biochemical, and molecular techniques, including 16S rRNA sequence analysis. Prodigiosin from the bacterial culture was purified by high-performance liquid chromatography (HPLC), and its antimicrobial activity and minimum inhibitory concentrations (MICs) were evaluated against 10 intestinal pathogenic gram-positive and negative bacteria. The results revealed that the isolated prodigiosin exhibited high antimicrobial activity against Listeria monocytogenes, Bacillus cereus, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella typhimurium, Staphylococcus aureus, and Vibrio parahaemolyticus; further, the isolated prodigiosin showed minimum inhibitory concentrations (MICs) between $3{\mu}g/ml$ and 30 mg/ml, but they were not active against Bacillus subtilis, Enterococcus faecalis, Klebsiella pneumonia, and Escherichia coli. In conclusion, prodigiosin isolated from Serratia sp. $PDGS^{120915}$ showed high antimicrobial activity against intestinal pathogenic bacteria and has potential applications in the development of new antimicrobial agents.
In this study, the antibacterial activities of essential oil from Zanthoxylum schinifolium against four Gram-positive bacteria and six Gram-negative bacteria were investigated. The antibacterial activity of the oils was determined using the agar-well diffusion assay, MIC (minimum inhibitory concentration) and MBC (minimum bactericidal concentration). In particular, essential oil from Z. schinifolium showed higher antibacterial activity against Gram-positive bacteria than against Gram-negative bacteria. Essential oil from Z. schinifolium displayed large inhibition zones especially against Bacillus cereus (31 mm). At concentrations between 0 and $20\;{\mu}g/mL$ the oils showed an antibacterial effect against both Gram-negative and Gram-positive bacteria. The minimum inhibitory concentration (MIC) values against nine bacteria ranged from 1.25 to $5\;{\mu}g/mL$. The minimum bactericidal concentration (MBC) values against eight bacterial ranged from 2.5 to $20\;{\mu}g/mL$, except Shigella sonnei. Furthermore, our finding on the antibacterial activities of essential oils from Zanthoxylum schinifolium validated the use of this plant for medical purposes.
Some preservatives are naturally contained in raw food materials, while in some cases may have been introduced in food by careless handling or fermentation. However, it is difficult to distinguish between intentionally added preservatives and the preservatives naturally produced in food. The objective of this study was to evaluate the minimum inhibitory concentration (MIC) of propionic acid, sorbic acid, and benzoic acid for inhibiting food spoilage microorganisms in animal products, which can be useful in determining if the preservatives are natural or not. The broth microdilution method was used to determine the MIC of preservatives for 57 microorganisms. Five bacteria that were the most sensitive to propionic acid, benzoic acid, and sorbic acid were inoculated in unprocessed and processed animal products. A hundred microliters of the preservatives were then spiked in samples. After storage, the cells were counted to determine the MIC of the preservatives. The MIC of the preservatives in animal products ranged from 100 to 1,500 ppm for propionic acid, from 100 to >1,500 ppm for benzoic acid, and from 100 to >1,200 ppm for sorbic acid. Thus, if the concentrations of preservatives are below the MIC, the preservatives may not be added intentionally. Therefore, the MIC result will be useful in determining if preservatives are added intentionally in food.
Seventy-nine Vibrio parahaemolyticus isolates from surface seawater from Gomso Bay, west coast of Korea, were analyzed for the presence of virulence genes and their susceptibility to 30 different antimicrobials. All 79 isolates were examined for the presence of two virulence genes (tdh or trh) using polymerase chain reaction (PCR); however, no isolates possessed either the tdh or trh gene. According to a disk diffusion susceptibility test, all of the strains studied were resistant to oxacillin, penicillin, and vancomycin, followed by ticarcillin (97.5%), ampicillin (96.2%), clindamycin (86.1%), erythromycin (10.1%), streptomycin (7.6%), cefoxitin (6.3%), amikacin (2.5%), and cephalothin (2.5%). However, all of the strains were susceptible to 19 other antimicrobials including cefepime, cefotaxime, chloramphenicol, gentamycin, nalidixic acid, sulfamethoxazole/trimethoprim, and trimethoprim. All 79 isolates (100%) were resistant to four or more classes of antimicrobials, and two strains exhibited resistance to eight antimicrobial agents. The average minimum inhibitory concentrations (MICs) for V. parahaemolyticus for ampicillin, penicillin, ticarcillin, and vacomycin were 946.5, 1,305.9, 1,032.3, and 45.0 µg/mL, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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