This study was conducted to evaluate the inflammatory mechanisms of LPS-stimulated BV-2 microglial cells. The inflammation mechanism was evaluated in BV-2 cells with or without LPS treated using the Affymetrix microarray analysis system. The microarray analysis revealed that B cell receptor signaling pathway, cytokine-cytokine receptor interaction, Jak-STAT signaling pathway, MAPK signaling pathway, Neuro-active ligand-receptor interaction, TLR signaling path-way, and T cell receptor signaling pathway-related genes were up-regulated in LPS stimulated BV-2 cells. Selected genes were validated using real time RTPCR. These results can help an effective therapeutic approach to alleviating the progression of neuro-in-flammatory diseases.
Cui, Yanji;Park, Jee-Yun;Wu, Jinji;Lee, Ji Hyung;Yang, Yoon-Sil;Kang, Moon-Seok;Jung, Sung-Cherl;Park, Joo Min;Yoo, Eun-Sook;Kim, Seong-Ho;Ahn Jo, Sangmee;Suk, Kyoungho;Eun, Su-Yong
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.19
no.3
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pp.219-228
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2015
Excessive microglial activation and subsequent neuroinflammation lead to synaptic loss and dysfunction as well as neuronal cell death, which are involved in the pathogenesis and progression of several neurodegenerative diseases. Thus, the regulation of microglial activation has been evaluated as effective therapeutic strategies. Although dieckol (DEK), one of the phlorotannins isolated from marine brown alga Ecklonia cava, has been previously reported to inhibit microglial activation, the molecular mechanism is still unclear. Therefore, we investigated here molecular mechanism of DEK via extracellular signal-regulated kinase (ERK), Akt and nicotinamide adenine dinuclelotide phosphate (NADPH) oxidase-mediated pathways. In addition, the neuroprotective mechanism of DEK was investigated in microglia-mediated neurotoxicity models such as neuron-microglia co-culture and microglial conditioned media system. Our results demonstrated that treatment of anti-oxidant DEK potently suppressed phosphorylation of ERK in lipopolysaccharide (LPS, $1{\mu}g/ml$)-stimulated BV-2 microglia. In addition, DEK markedly attenuated Akt phosphorylation and increased expression of $gp91^{phox}$, which is the catalytic component of NADPH oxidase complex responsible for microglial reactive oxygen species (ROS) generation. Finally, DEK significantly attenuated neuronal cell death that is induced by treatment of microglial conditioned media containing neurotoxic secretary molecules. These neuroprotective effects of DEK were also confirmed in a neuron-microglia co-culture system using enhanced green fluorescent protein (EGFP)-transfected B35 neuroblastoma cell line. Taken together, these results suggest that DEK suppresses excessive microglial activation and microglia-mediated neuronal cell death via downregulation of ERK, Akt and NADPH oxidase-mediated pathways.
Naegleria fowleri, a ubiquitous free-living ameba, causes fatal primary amebic meningoencephalitis in humans. N. fowleri trophozoites are known to induce cytopathic changes upon contact with microglial cells, including necrotic and apoptotic cell death and pro-inflammatory cytokine release. In this study, we treated rat microglial cells with amebic lysate to probe contact-independent mechanisms for cytotoxicity, determining through a combination of light microscopy and scanning and transmission electron microscopy whether N. fowleri lysate could effect on both necrosis and apoptosis on microglia in a time- as well as dose-dependent fashion. A $^{51}Cr$ release assay demonstrated pronounced lysate induction of cytotoxicity (71.5%) toward microglial cells by 24 hr after its addition to cultures. In an assay of pro-inflammatory cytokine release, microglial cells treated with N. fowleri lysate produced TNF-${\alpha}$, IL-6, and IL-$1{\beta}$, though generation of the former 2 cytokines was reduced with time, and that of the last increased throughout the experimental period. In summary, N. fowleri lysate exerted strong cytopathic effects on microglial cells, and elicited pro-inflammatory cytokine release as a primary immune response.
Objectives : This study was designed to evaluate the neuroprotective effect of Cirsium japonicum and Silibinin on lipopolysaccharide-induced inflammation in BV2 microglial cells. Methods : We studied on the neuroprotective effect of lipopolysaccharide-induced inflammation using MTS assay, western blot, and nitric oxide detection on mouse BV2 microglial cells. Results : Cirsium japonicum dose-dependently (50${\mu}g/ml$${\sim}$$250{\mu}g/ml$) inhibited nitrite production and iNOS expression in lipopolysaccharide-induced BV2 microglia and also significantly reduced lipopolysaccharide-induced COX-2 activation in western blot. Silibinin dose-dependently (10${\mu}M$${\sim}$$100{\mu}M$) inhibited nitrite production and iNOS expression in lipopolysaccharide-induced BV2 microglial cells. Silibinin also significantly reduced lipopolysaccharide-induced COX-2 activation in western blot. Conclusion : These effects of neuroprotection related to anti-inflammation suggest that Cirsium japonicum and Silibininmay be useful candidates for the development of a drug for related neurodegenerative diseases.
Objectives : Uncontrolled activation of microglia may directly toxic to neurons by releasing various substances such as inflammatory cytokines, nitric oxide(NO), prostaglandin E2 and superoxide. In this study, the effects of the several subfractions isolated from Coptidis Rhizoma extract were investigated on NO production in LPS-stimulated BV2 microglial cells, Methods : Coptidis Rhizoma extract prepared with 80% methanol, and then fractionated with ethylacetate, chloroform, n-butanol and water. BV2 cells were pretreated four subfractions of Coptidis Rhizoma with various concentrations, and then stimulated with LPS. Cytotoxicity of each fraction was measured by MTT assay. NO production was determined in culture surpernatants by Griess reagent. Results : Ethylacetate, chloroform and butanol fractions of Coptidis Rhizoma extract significantly decreased LPS-induced NO production in BV2 cells as a dose-dependent manner without cytotoxicity. Ethylacetate fraction of Coptidis Rhizoma extract was most effective on inhibition of NO production in LPS-stimulated BV2 cells compared with other fractions. Conclusion : This data indicates that Ethylacetate fraction of Coptidis Rhizoma extract shows strong antiinflammatory effects through inhibition of LPS-induced microglial activation.
Astaxanthin has shown antioxidant, antitumor, and anti-inflammatory activities; however, its molecular action and mechanism in the nervous system have yet to be elucidated. We examined the in vitro effects of astaxanthin on the production of nitric oxide (NO), as well as the expression of inducible NO synthase (iNOS) and cyclooxygenase-2 (COX-2) in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated BV2 microglial cells. Astaxanthin inhibited the expression or formation of nitric oxide (NO), iNOS and COX-2 in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated BV-2 microglial cells. Astaxanthin also suppressed the protein levels of iNOS and COX-2 in LPS-stimulated BV2 microglial cells. These results suggest that astaxanthin, probably due to its antioxidant activity, inhibits the production of inflammatory mediators by blocking iNOS and COX-2 activation or by the suppression of iNOS and COX-2 degradation.
Cirsii Japonici Herba(CJ) is a wild perennial herb found in many areas of Korea as well as China and Japan, which has been used to treat bleeding and inflammation. Silibinin is the main flavonoid extracted from milk thistle (Cirsii Japonici Herba). It exhibits potent antioxidant activity and anti-inflammatory effect. In this study, the effect of CJ and silibinin extract on lipopolysaccharide-induced inflammation was investigated using MTS assay, RT-PCR, western blot, and nitric oxide detection on mouse BV2 microglial cell lines. In the present results, CJ and silibinin extract suppressed nitric oxide production by inhibiting the lipopolysaccharide-stimulated enhancement of COX-2 and iNOS gene expression in BV2 cells. Moreover, CJ and silibinin also repressed some lipopolysaccharide-induced signaling molecules. Importantly, catalase-induced COX-2 and iNOS expression needed activations of $NF-{\kappa}B$, PI3K/Akt, and MAPK, which were important for the transcriptional up-regulation of COX-2 and iNOS. CJ and silibinin interaction on BV2 cells down-regulated $NF-{\kappa}B$-dependent proinflammatory cytokine (IL-2,IL-6) expression. They are involved in the regulation of inflammatory responses. These data shows that CJ and silibinin exerts anti-inflammatory and analgesic effects, probably by suppression of COX-2 and iNOS synthase expression in BV2 microglial cells.
Objectives : Although the cause of neuronal death of Parkinson's disease remains unclear, increasing evidence points to the role of inflammatory processes. And the hallmark of brain inflammation is the activation of microglia. This study was performed to prove the effect of acupuncture on inhibiting microglial activation. Methods : The rat models which were injected with 6-hydroxydopamine were treated with acupuncture once a day on LR3 (太衝) and GB34 (陽陵泉). To prove the effect of inhibiting microglial activation, we examined the tyrosine hydroxylase (TH) immunopositive neurons and CD11b immunohistochemistry in the substantia nigra. Results : There were 18% (third day), 32% (seventh day) loss of TH-positive cell bodies in the control group and 23% (third day), 26% (seventh day) in the acupuncture group, whereas 3% (third day), 10% (seventh day) in vehicle group. The difference of optical density in substantia nigra was evaluated by subtracting log inverse gray value of contralateral side from that of ipsilateral side. With regards to the result of CD11b immunohistochemistry, acupuncture group showed significantly inhibited microglial activation compared with control group (p<0.01) on the seventh day. Conclusions : Acupuncture showed the effect of inhibition of microglial activation in seventh day. However, the effect of protection of TH positive cell bodies was not shown. So we need longer investigation of the effect of acupuncture on Parkinson's disease.
Background: Microglial cells, major immune effector cells in the central nervous system, become activated in neurodegenerative disorders. Activated microglial cells produce proinflammatory mediators such as nitric oxide (NO), tumor necrosis factor-$\alpha$ and interleukin-$1{\beta}$(IL-$1{\beta}$). These proinflammatory mediators have been shown to be significantly increased in the neurodegenerative disorders such as Alzhimer's disease and Pakinson's disease. It was known that one of the neurodegeneration source is stress and it is important to elucidate mechanisms of the stress response for understanding the stress-related disorders and developing improved treatments. Because one of the neuropeptide which plays a main role in regulating the stress response is corticotropin-releasing hormone (CRH), we analyzed the regulation of NO release by CRH in BV2 murine microglial cell as macrophage in the brain. Methods: First, we tested the CRH receptor expression in the mRNA levels by RT-PCR. To test the regulation of NO release by CRH, cells were treated with CRH and then NO release was measured by Griess reagent assay. Results: Our study demonstrated that CRH receptor 1 was expressed in BV2 murine microglial cells and CRH treatment enhanced NO production. Furthermore, additive effects of lipopolysaccaride (LPS) and CRH were confirmed in NO production time dependantly. Conclusion: Taken together, these data indicated that CRH is an important mediator to regulate NO release on microglial cells in the brain during stress.
[ ${\beta}ig-h3$ ] is a secretory protein that is induced by $TGF-{\beta}$ and implicated in various disease conditions including fibrosis. We have previously reported that ${\beta}ig-h3$ expression is implicated in astrocyte response to brain injury. In this study, we further investigated potential roles of ${\beta}ig-h3$ protein in the injured central nervous system (CNS). We specifically assessed whether the treatment of microglial cells with ${\beta}ig-h3$ can regulate microglial activity. Microglial cells are the prime effector cells in CNS immune and inflammatory responses. When activated, they produce a number of inflammatory mediators, which can promote neuronal injury. We prepared conditioned medium from the stable CHO cell line transfected with human ${\beta}ig-h3$ cDNA. We then examined the effects of the conditioned medium on the LPS- or $IFN-{\gamma}-mediated$ induction of proinflammatory molecules in microglial cells. Preincubation with the conditioned medium significantly attenuated LPS-mediated upregulation of $TNF-{\alpha},\;IL-1{\beta}$, iNOS and COX-2 mRNA expression in BV2 murine microglial cells. It also reduced $IFN-{\gamma}-mediated$ upregulation of $TNF-{\alpha}$ and COX-2 mRNA expression but not iNOS mRNA expression. Assays of nitric oxide release correlated with the mRNA data, which showed selective inhibition of LPS-mediated nitric oxide production. Although the regulatory mechanisms need to be further investigated, these results suggest that astrocyte-derived ${\beta}ig-h3$ may contribute to protection of the CNS from immune-mediated damage via controlling microglial inflammatory responses.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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