Leuconostoc mesenteroides P-60, Lactobacillus arabinosus 17-5, Streptococcus faecalis R have been successfully used for the quantitative determination of sixteen amino acids in Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar hydrolysate by alkaline and hydrolysis for succesive two hours from two to twelve hours, by means of microbiological assay. And thiamine and riboflavin were fluorometrically determinated by thiochrome and lumiflavin in powder (80mesh) of Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar. The results were as follows: 1) Arginine contents was the highest in hydrolysate for two hours, but longer the hydrolysis, the more content Undaria pinnatifida was decreased. 2) The adequate contents of other amino acids were obtained by hydrolysis for six hours. 3) Growth check and improve of Lactobacillus were not identified in determination by microbiological assay for Undaria pinnatifida. 4) The following values were obtained in Undaria pinnatifida hydrolysate six hours: asparatic acid 466, arginine 230, lysine 317, histidine 74, isoleucine 242, methionine 202, phenylalanine 256, proline 231, threonine 231, tyrosine 161, valine 415, glycine 302, leucine 414, glutamic acid 625, cystine (5 hrs.) 53 and tryptophan (8 hrs.) 90mg per nitrogen one gram. 5) Protein score was 81 (limiting factor was isoleucine) and essential amino acids pattern was of satisfactory results. And methionine contained was higher than FAO value or milk value. 6) Sulphur contained amino acids (methionine plus cystine) contained in Undaria pinnatifida were 225mg/N-g. That was satisfactory results. 7) Absorption spectrum of wave length were not different 1% HAc from buffer-sol. (pH 6.8) in dilution for determination of riboflavin. Both methods might be suitable. 8) Thiamine and riboflavin contained in Undaria pinnatifida were ($B_1,\;82.51{\pm}1.1){\gamma}/N-g\;and\;(B_2,\;115.29{\pm}1.5){\gamma}/N-g.$.
단백질의 N-글리코실화는 대표적인 번역 후 변형 중의 하나로 진핵생물 뿐 아니라 원핵생물에서도 발견된다. N-글리코실화는 단백질 상의 N-글리코실 서열인 N-x-S/T 위치에 지질과 연결된 올리고당(lipid-linked oligosaccharide, LLO)으로부터 올리고당 전이효소(oligosaccharyltransferase, OTase) 활성에 의해 글리칸(glycan)이 전달되어 당단백질의 합성이 이루어진다. 본 연구에서는 OTase의 세포내 활성을 측정하기 위하여 5/6-carboxyltetramethylrhodamine (TAMRA)이 도입된 형광펩타이드 TAMRA-DA$\underline{N}$Y$\underline{T}$K-$NH_2$를 이용하였다. OTase활성 측정은 단일 서브유닛으로 효소의 활성을 갖는 운동핵 편모충류인 Leishmania major Stt3p와 병원성 미생물인 Campylobacter jejuni PglB를 진핵생물과 원핵생물의 모델 효소로 각각 사용하여 Saccharomyces cerevisiae와 C. jejuni 유래 LLO와 형광 펩타이드를 반응시켜 당-펩타이드를 합성하였다. 합성된 당-펩타이드를 미반응한 형광펩타이드와 분리 및 당-펩타이드의 정량 분석을 위하여 Tricine SDS-PAGE, ConA 렉틴 컬럼 및 fluorospectrophotometer, HPLC를 사용하였으며, 당-펩타이드 분석을 통해 각 방법의 장단점을 비교하였다. 비교 분석 결과 Tricine SDS-PAGE를 이용한 형광 이미지 분석과, 렉틴 컬럼을 통해 분리된 당-펩타이드의 fluorospectrophotometer 정량법에 비해, HPLC를 이용한 방법이 OTase에 의해 생성된 당-펩타이드를 분석하는데 더 정확하고 정량적인 값을 제시하는 것으로 확인되었다.
For rapid and sensitive measurement of antiviral activities, application of a recombinant virus containing firefly luciferase gene was attempted. Recombinant human cytomegalovirus (HCMV) containing luciferase gene driven by HCMV late gene pp28 promoter (HCMV/pp28-luc) was used to test the antiviral activities of three known compounds and the result was compared with results from the conventional plaque assay for measuring the production of infectious viruses. When human fibroblast cells were infected with HCMV/pp28-luc, luciferase activity was observed at 2 days after infection and reached maximum at 6 days after infection, whereas the production of infectious virus was maximal at 4 days after infection. The antiviral activities of ganciclovir, acyclovir, and papaverine were measured in HFF cells infected with HCMV/PP28-luc and the luciferase activity was compared with the infectious virus titers. Luciferase activity decreased as the concentration of ganciclovir or papaverine increased, while there was a slight decrease in luciferase activity with acyclovir. The level of the decrease in Luciferase activity was comparable to the level of decrease in the production of infectious virus. Therefore, the antiviral assay using recombinant virus HCMV/pp28-luc resulted in sensitivity similar to the conventional plaque assay with a significant reduction in assay time.
The purpose of this study was to determine the efficacy of a nucleic acid sequence-based amplification (NASBA) method of detecting noroviruses in artificially and naturally contaminated shellfish. We used 58 fecal samples that tested positive for noroviruses with electron microscopy (EM) to develop an NASBA assay for these viruses. Oligonucleotide primers targeting the polymerase coding region were used to amplify the viral RNA in an isothermal process that resulted in the accumulation of RNA amplicons. These amplicons were detected by hybridization with digoxigenin-labeled oligonucleotide probes that were highly specific for genogroup I (GI) and genogroup II (GII) of noroviruses. The expected band of 327bp appeared in denaturing agarose gel without any nonspecific band. The specific signal for each amplicon was obtained through Northern blotting in many repeats. All fecal samples of which 46(79.3%) belonged to GII and 12(20.6%) belonged to GI were positive for noroviruses by EM and by NASBA. Target RNA concentrations as low as 5pg/ml were detected in fecal specimens using NASBA. When the assay was applied to artificially contaminated shellfish, the sensitivity to nucleic acid was 100pg/1.5g shellfish tissue. The potential use of this assay was also confirmed in naturally contaminated shellfish collected from different ponds in Guangzhou city of China, of which 24 (18.76%) out of 128 samples were positive for noroviruses; of these, 19 (79.6%) belonged to GII and 5 (20.4%) belonged to GI. The NASBA assay provided a more rapid and efficient way of detecting noroviruses in fecal samples and demonstrated its potential for detecting noroviruses in food and environmental samples with high specificity and sensitivity.
본 연구는 polymerase chanin reaction(PCR)기법과 DNA enzyme-linked immunosorbent assay(DNA ELISA) 기법을 이용하여 토양내 식물병원균인 Ralstonia solanacearum를 검출하고자 하였다. 토양 시료로부터 분석에 사용될 R. solanacearum DNA를 추출하기 위하여 몇 가지 방법을 비교 평가한 결과 기존의 DNA 추출 방법에 비하여 Guanidin isothiocyanate와 Chelex-100 resin을 사용하는 방법 이 토양 내에 존재하는 다양한 중류의 반응 저해 물질과 R. solanacearum만의 고유한 PCR반응 저해물질들을 제거하는 데에 효과적이었다. R. solanacearum만을 특이적으로 검출하기 위해 fliC유전자 부위에 특이적인 몇 종의 primer들을 제작하였다. 이들 중 높은 민감도와 특이도를 나타내는 두 set의 primer RsolfliC(forward; 5-GAACGCCAACGGTGCGAACT-3 and reverse; 5-GGCGGCCTTCAGGGAGGTC-3, designed by J. $Sch\ddot{o}nfeld$ et al.)와 RS_247 (forward; 5-GGCGGTCTGTCGGCRG-3 and reverse; 5-CGGTCGCGTTGGCAAC-3, designed by this study)를 선정하여 nested PCR을 수행할 수 있도록 고안하였다. Nested PCR primer에 biotin을 표지하였고 nested PCR산물의 내부 서열과 특이적으로 교잡반응을 할 수 있는 probe를 제작하여 PCR 결과를 DNA-EIA반응으로 확인 분석할 수 있도록 하였다. Primary PCR과 nested PCR의 산물을 전기영동 상에서 확인한 결과, nested PCR이 약 $10^2$정도의 높은 민감도를 나타내었고 DNA-EIA의 경우 $10^2P{\sim}10^3$정도의 민감도를 상승시켜주는 것으로 확인되었다.
Even though neutralizing antibodies against the Hantaan virus (HTNV) has been proven to be critical against viral infections, the cellular immune responses to HTNV are also assumed to be important for viral clearance. In this report, we have examined the cellular and humoral immune responses against the HTNV nucleocapsid protein (NP) elicited by virus infection or DNA vaccination. To examine the cellular immune response against HTNV NP, we used $H-2K^b$ restricted T-cell epitopes of NP. The NP-specific $CD8^+$ T cell response was analyzed using a $^{51}Cr-release$ assay, intracellular cytokine staining assay, enzyme-linked immunospot assay and tetramer binding assay in C57BL/6 mice infected with HTNV. Using these methods, we found that HTNV infection elicited a strong NP-specific $CD8^+$ T cell response at eight days after infection. We also found that several different methods to check the NP-specific $CD8^+$ T cell response showed a very high correlation among analysis. In the case of DNA vaccination by plasmid encoding nucleocapsid gene, the NP-specific antibody response was elicited $2\~4$ weeks after immunization and maximized at $6\~8$ weeks. NP-specific $CD8^+$ T cell response reached its peak 3 weeks after immunization. In a challenge test with the recombinant vaccinia virus expressing NP (rVV-HTNV-N), the rVV-HTNV-N titers in DNA vaccinated mice were decreased about 100-fold compared to the negative control mice.
Heat shock proteins (HSPs) are induced in most living cells by mild heat treatment, ethanol, heavy metal ions and hypoxia. In yeast Saccharomyces cerevisiae, mild heat pretreatment strongly induces Hsp104 and thus provide acquired thermotolerance. The ability of hsp104 deleted mutant $({\triangle}hsp104)$ to acquire tolerance to extreme temperature is severely impaired. In providing thermotolerance, two ATP binding domains are indispensible, as demonstrated in ClpA and ClpB proteases of E. coli. The mechanisms by which Hsp104 protects cells from severe heat stress are not yet completely elucidated. We have investigated regulation of mitochondrial metabolic pathways controlled by the functional Hsp104 protein using $^{13}C_NMR$ spectroscopy and observed that the turnover rate of TCA cycle was enhanced in the absence of Hsp104. Production of ROS, which are toxic to kill cells radiply via oxidative stress, was also examined by fluorescence assay. Mitochondrial dysfunction was manifested in increased ROS levels and higher sensitivity for oxidative stress in the absence of Hsp104 protein expressed. Finally, we have identified mitochondrial complex I and Ferritin as binding protein(s) of Hsp104 by yeast two hybrid experiment. Based on these observations, we suggest that Hsp104 protein functions as a protector of oxidative stress via either keeping mitochondrial integrity, direct binding to mitochonrial components or regulating metal-catalyzed redox chemistry.
한국미생물학회 2008년도 International Meeting of the Microbiological Society of Korea
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pp.135-135
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2008
Various biosensors were evaluated for identifying and detecting foodborne pathogens in a rapid and effective manner. First, five strains of Escherichia coli and six strains of Salmonella were identified using Fourier transform infrared spectroscopy and a statistical program. For doing this, lipopolysaccharides (LPSs) and outer membrane proteins (OMPs) were extracted from a cell wall of each bacterial strain. As a result, each strain was identifed at the level of 97% for E. coli and 100% for Salmonella. Second, E. coli O157:H7, S. Enteritidis, and Listeria monocytogenes were identified by multiplex PCR products from four specific genes of each bacteria using a capillary electrophoresis (CE). Also, ground beef for E. coli O157:H7, lettuce for S. Enteritidis, and hot dog for L. monocytogenes were used to determine the possibility of detecting pathogens in foods. Foods inoculated with respective pathogen were cultivated for six hours and multiplex PCR products were obtained and assessed. The minimum detection levels of tested bacteria were <10 cells/g, <10 cells/g, and $10^4$ cells/g for E. coli O157:H7, S. Enteritidis, and L. monocytogenes, respectively. Third, it was possible to detect S. Typhimurium in a pure culture and lettuce by a bioluminescence-based detection assay using both recombinant bacteriophage P22::luxI and a bioluminescent bioreporter. In addition, bacteriophage T4 was quantitatively monitored using E. coli including luxCDABE genes.
In order to find out SoxR-reducing system in E. coli, we generated Tn10-insertion mutants and screened for constitutive expression of SoxS in a soxS-lacZ fusion strain. One mutation was mapped in rseB, a gene in rseABC (Regulation of SigmaE) operon. The constitutive soxS-expressing phenotype was due to the polar effect on the downstream gene, rseC. RseC is likely to function as a component of SoxR reduction system because SoxR was kept in oxidized form to activate soxS expression in rseC mutant. RseC is an integral membrane protein with an N-terminal cysteine-rich domain in the cytoplasm. The functionally critical cysteines were determined by substitution mutagenesis. The truncated N-terminal domain of RseC reduced the soxS transcription by $50\%$ as judged by in vitro transcription assay. Currently RseC is believed to be a reducing factor for SoxR. However, the mechanism for the reduction needs further investigation.
본 연구에서는 총 65균주의 Bifidobacterium과 Lactobacillus로부터 엽산 생성능력이 있는 11균주의 Lactobacillus를 1차 선정하였다. 그 중 microbiological assay를 통해 엽산 생성능력이 가장 우수한 것으로 선발된 L. plantarum Fol 708을 이용하여, 우유배지에서 L. brevis GABA 100과의 공동배양 및 배양 pH을 일정하게 유지한 후, 각각의 pH조건에서 균체 내부 및 배양 상등액의 엽산 생성과 균체량을 측정하였다. 공동 배양은 1% glutamic acid가 첨가된 우유배지에 균주를 각각 1% (v/v) 접종하여 발효시켰으며, L. plantarum Fol 708과 L. brevis GABA 100의 접종비율이 1:1에서 가장 높은 엽산 생성(약 $8{\mu}g/100mL$)을 보여주었다. 배양 pH을 일정하게 유지한 후 균체량과 엽산 생성을 측정한 경우, 균체량은 pH 4.5에서 가장 높게 측정되었고, 총 엽산 생성은 pH 5.5에서 가장 높게 측정되었다. 본 연구에서 선발한 L. plantarum Fol 708을 이용하면 엽산 함량이 높은 다양한 발효 식품의 개발에 도움이 될 것이다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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