The present study was conducted to examine the effects of cholinergic stimulation and membrane depolarization on secretion of epinephrine (EP) and norepinephrine (NE) in the perfused model of the rat adrenal gland and to investigate the effect of bromocriptine on secretion of EP and NE evoked by these secreta-gogues. Acetylcholine (ACh, 5.32 mM), high $K^{+}$(56mM), 1.1-dimethyl-4-phenyl piperazinium iodide (DMPP, 100 $\mu$M for 2 min), (3-(m-cholro-phenyl-carbamoyl-oxy)-2butynyl trimethyl ammonium chloride (McN-A-343, 100 $\mu$M for 2 min), cyclopiazonic acid (10 $\mu$M for 4 min) and methyl-1,4-dihydro-2,6-dimethyl-3-nitro-4-(2-trifluoromethylphenyl) -pyridine-5-carboxylate (Bay-K-8644, 10 $\mu$M for 4 min) evoked a 1.3~5.3-fold greater secretion of EP than NE in the perfused rat adrenal gland. The perfusion of bromocriptine (1-10 $\mu$M) into an adrenal vein for 20 min produced relatively dose-dependent inhibition in secretion of EP and NE evoked by ACh, high $K^{+}$, DMPP, and McN-A-343. Moreover, under the presence of bromocriptine (1~10 $\mu$M), releasing responses of EP and NE evoked by cyclopiazonic acid and Bay-K-8644 were also greatly reduced. Taken together, these results suggest that cholinergic stimulation and membrane depolarization enhance more release of EP than NE in the perfumed rat adrenal medulla, and that bromocriptine inhibits the release of EP and NE evoked by stimulation of cholinergic receptors as well as by membrane depolarization. It seems that this inhibitory effect of bromocriptine is associated with inhibition of calcium channels through activation of dopaminergic D2-receptors located in the rat adrenomedullary chromaffin cells.lls.
The present study was designed to investigate the effect f quinidine on catecholamine (CA) secretion evoked by ACh, high $K^{+}$, DMPP, McN-A343, cyclopiazonic acid and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to establish the mechanism of its action. The perfusion of quinidine (15-150 $\mu$M) into an adrenal vein for 60 min produced relatively dose- and time-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32$\times$10$^{-3}$ M), high $K^{+}$ (5.6$\times$10$^{-2}$ M), DMPP (10$^{-4}$ M for 2 min), McN-A-343 (10$^{-4}$ M for 2 min), cyclopiazonic acid (10$^{-5}$ M for 4 min) and Bay-K-8644 (10$^{-5}$ M for 4 min). Furthermore, in adrenal glands pre-loaded with quinine (5$\times$10$^{-5}$ M), CA secretory responses evoked by veratridine (10$^{-4}$ M) was time-dependently inhibited. Also, in the presence of lidocaine (10$^{-4}$ M), which is also known to be a sodium channel blocker, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclo-piazonic acid were also greatly reduced in similar fashion to that of quinidine-treatment. Taken together, these results suggest that quinidine causes greatly the inhibition of CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization, indicating strongly that this effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells. Furthermore, these findings indicate strongly that this inhibitory action of quinidine appears to be associated to the blocking action of sodium channels at least in CA secretion from the rat adrenal gland.and.
The present study was attempted to investigate the effect of apamin on catecholamine (CA) secretion evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, cyclopiazonic acid and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to establish the mechanism of its action. The perfusion of apamin (1 nM) into an adrenal vein for 20 min produced greatly potentiation in CA secretion evoked by ACh (5.32 $ imes$$10^{-3}$ M), high $K^+$, (5.6 $ imes$$10^{-2}$), DMPP ($10^{-4}$ M for 2 min), McN-A-343 ($10^{-4}$ M for 2 min), cyclopiazonic acid ($10^{-5}$ M for 4 min) and Bay-K-8644 ($10^{-5}$ M for 4 min). However, apamin itself did fail to affect basal catecholamine output. Furthermore, in adrenal glands preloaded with apamin (1 nM) under the presence of glibenclamide ($10^{-6}$ M), an antidiabetic sulfonylurea that has been shown to be a specific blocker of ATP-regulated potassium channels (for 20 min), CA secretion evoked by DMPP and McN-A-343 was not affected. However, the perfusion of high concentration of apamin (100 nM) into an adrenal vein for 20 min rather inhibited significantly CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, cyclopiazonic acid and Bay-K-8644. Taken together, these results suggest that the low concentration of apamin causes greatly the enhancement of CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization. These findings suggests that apamin-sensitive SK ($Ca^{2+}$) channels located in rat adrenal medullary chromaffin cells may play an inhibitory role in the release of catecholamines mediated by stimulation of cholinergic nicotinic and muscarinic receptors as well as membrane depolarization. However, it is thought that high concentration of apamin cause the inhibitory responses in catecholamine secretion evoked by stimulation of cholinergic receptors as well as by membrane depolarization from the rat adrenal gland without relevance with the SK channel blockade.
The present study was attempted to examine the effect of pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide (PACAP) on catecholamine (CA) secretion evoked by cholinergic stimulation, membrane depolarization and calcium mobilization from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion of PACAP (10 nM) into an adrenal vein for 60 min produced a great inhibition in CA secretion evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}\;M),$ high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M),$ DMPP $(10^{-4}\;M\;for\;2\;min),$ McN-A-343 $(10^{-4}\;M\;for\;2\;min),$ cyclopiazonic acid $(10^{-5}\;M\;for\;4\;min)$ and Bay-K-8644 $(10^{-5}\;M\;for\;4\;min).$ Also, in the presence of neuropeptide (NPY), which is known to be co-localized with norepinephrine in peripheral sympathetic nerves, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also significantly depressed. However, in adrenal glands preloaded with PACAP (10 nM) under the presence of VIP antagonist $[(Lys^1,\;Pro^{2.5},\;Arg^{3.4},\;Tyr^6)-VIP\;(3\;{\mu}M)]$ for 20 min, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were not altered greatly in comparison to the case of PACAP-treatment only. Taken together, these results suggest that PACAP causes the marked inhibition of CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization, indicating that this effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells.
The present study was attempted to investigate the effect of quinine on secretion of catecholamines (CA) etroked by cholinergic stimulation and membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion of quinine (15-150${\mu}$M) into an adrenal vein for 60 min produced dose- and time-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh ($5.32{\times}10^{-3}M$), high $K^{+}5.6{\times}10^{-2}M$, DMPP ($10^{-4}M$ for 2 min), McN-A-343 ($10^{-4}M$ for 2 min), cyclopiazonic acid ($10^{-5}$ for 4 min) and Bay-K-8644 ($10^{-5}$ M for 4 min). Also, under the presence of pinacidil ($10^{-4}$ M), which is also known to be a selective potassium channel activator, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also greatly reduced. When preloaded along with quinine ($5{\times}10^{-5}M$) and glibenclamide ($10^{-6}$ M), a specific blocker of ATP-regulated potassium channels, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were recovered as compared to those of quinine-treatment only. taken together, these results demonstrate that quinine inhibits CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization through inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenmodullary chromaffin cells. These findings suggest that activation of potassium channels may be involved at least in inhibitory action of quinine on CA secretion from the rat adrenal gland.
The purpose of this study was to determine whether bromocriptine affects the catecholamines (CA) secretion evoked in isolated perfused rat adrenal glands, by cholinergic stimulation, membrane depolarization and calcium mobilization, and to establish the mechanism of its action. The perfusion of bromocriptine ($1~10{\;}{\mu}M$) into an adrenal vein, for 60 min, produced relatively dose-dependent inhibition in the secretion of catecholamines (CA) evoked by acetylcholine (ACh, 5.32 mM), DMPP ($100{\;}{\mu}M$ for 2 min), McN-A-343 ($100{\;}{\mu}M$ for 2 min), cyclopiazonic acid (CPA, $10{\;}{\mu}M$ for 4 min) and Bay-K-8644 ($10{\;}{\mu}M$ for 4 min). High $K^+$ (56 mM)-evoked CA release was also inhibited, although not in a dose-dependent fashion. Also, in the presence of apomorphine ($100{\;}{\mu}M$), which is also known to be a selective $D_2$-agonist, the CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also significantly depressed. However, in adrenal glands preloaded with bromocriptine ($3{\;}{\mu}M$) in the presence of metoclopramide ($15{\;}{\mu}M$), a selective $D_2$-antagonist, the CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid considerably recovered as compared to that of bromocriptine only. Taken together, these results suggest that bromocriptine can inhibit the CA secretion evoked by stimulation of cholinergic receptors, as well as by membrane depolarization, in the perfused rat adrenal medulla. It is thought this inhibitory effect of bromocriptine may be mediated by inhibiting the influx of extracellular calcium and the release from intracellular calcium stores, through the activation of dopaminergic $D_2$-receptors located in the rat adrenomedullary chromaffin cells. Furthermore, these findings also suggest that the dopaminergic $D_2$-receptors may play an important role in regulating adrenomedullary CA secretion.
Kim, Byung Joo;Kwon, Young Kyu;Kim, Euiyong;So, Insuk
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
/
제17권2호
/
pp.149-156
/
2013
Interstitial cells of Cajal (ICCs) are the pacemaker cells in the gastrointestinal tract, and histamine is known to regulate neuronal activity, control vascular tone, alter endothelial permeability, and modulate gastric acid secretion. However, the action mechanisms of histamine in mouse small intestinal ICCs have not been previously investigated, and thus, in the present study, we investigated the effects of histamine on mouse small intestinal ICCs, and sought to identify the receptors involved. Enzymatic digestions were used to dissociate ICCs from small intestines, and the whole-cell patch-clamp configuration was used to record potentials (in current clamp mode) from cultured ICCs. Histamine was found to depolarize resting membrane potentials concentration dependently, and whereas 2-PEA (a selective H1 receptor agonist) induced membrane depolarizations, Dimaprit (a selective H2-agonist), R-alpha-methylhistamine (R-alpha-MeHa; a selective H3-agonist), and 4-methylhistamine (4-MH; a selective H4-agonist) did not. Pretreatment with $Ca^{2+}$-free solution or thapsigargin (a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor in endoplasmic reticulum) abolished the generation of pacemaker potentials and suppressed histamine-induced membrane depolarization. Furthermore, treatments with U-73122 (a phospholipase C inhibitor) or 5-fluoro-2-indolyl des-chlorohalopemide (FIPI; a phospholipase D inhibitor) blocked histamine-induced membrane depolarizations in ICCs. On the other hand, KT5720 (a protein kinase A inhibitor) did not block histamine-induced membrane depolarization. These results suggest that histamine modulates pacemaker potentials through H1 receptor-mediated pathways via external $Ca^{2+}$ influx and $Ca^{2+}$ release from internal stores in a PLC and PLD dependent manner.
Park, Young-Geun;Yang, Young-Seon;Yum, Myung-Kul;Hong, Seong-Geun
The Korean Journal of Physiology
/
제25권2호
/
pp.125-131
/
1991
Inactivation properties of Ca current in the unfertilized eggs of mouse were studied by using the whole cell voltage clamp technique and single microelectrode voltage clamp technique. Membrane potential was held at -80 mV and step depolarization was applied from -50 mV to 50 mV for $200{\sim}500\;ms$. Peak of inward Ca currents was $-2{\sim}-4\;nA$ at a membrane Potentials from -20 mV to 0 mV and outward currents were not observed within the membrane voltage range studied $(-50{\sim}50\;mV)$. Inward currents were fully inactivated within 200 ms after the onset of step depolarization. As the membrane became depolarized, time constant of inactivation (${\tau}$) was decreased but remained around $20{\sim}30\;ms$ beyond 10 mV. When $Ca^{2+}$ was used as a charge earlier, inactivation of inward $Ca^{2+}$ current also occured and time course of inactivation was similar to that of $Ca^{2+}$ currents as charge carrier. In the bathing solution containing high potassium $(131\;mM\;K^+)$, process of inactivation was not changed except a parallel decrease of value for the entire range of membrane potential. Steady-state inactivation of the $current(h_{\infty})$ obtained from the double pulse experiment showed the voltage-dependent change. These results suggested that inactivation of Ca currents in the unfertilized eggs of mouse was voltage-dependent.
Reactive oxygen species (ROS) and nitrogen species (RNS) are implicated in cellular signaling processes and as a cause of oxidative stress. Recent studies indicate that ROS and RNS are important signaling molecules involved in nociceptive transmission. Xanthine oxidase (XO) system is a well-known system for superoxide anions ($O{_2}^{{\cdot}_-}$) generation, and sodium nitroprusside (SNP) is a representative nitric oxide (NO) donor. Patch clamp recording in spinal slices was used to investigate the role of $O{_2}^{{\cdot}_-}$ and NO on substantia gelatinosa (SG) neuronal excitability. Application of xanthine and xanthine oxidase (X/XO) compound induced membrane depolarization. Low concentration SNP ($10{\mu}M$) induced depolarization of the membrane, whereas high concentration SNP (1 mM) evoked membrane hyperpolarization. These responses were significantly decreased by pretreatment with phenyl N-tert-butylnitrone (PBN; nonspecific ROS and RNS scavenger). Addition of thapsigargin to an external calcium free solution for blocking synaptic transmission, led to significantly decreased X/XO-induced responses. Additionally, X/XO and SNP-induced responses were unchanged in the presence of intracellular applied PBN, indicative of the involvement of presynaptic action. Inclusion of GDP-${\beta}$-S or suramin (G protein inhibitors) in the patch pipette decreased SNP-induced responses, whereas it failed to decrease X/XO-induced responses. Pretreatment with n-ethylmaleimide (NEM; thiol-alkylating agent) decreased the effects of SNP, suggesting that these responses were mediated by direct oxidation of channel protein, whereas X/XO-induced responses were unchanged. These data suggested that ROS and RNS play distinct roles in the regulation of the membrane excitability of SG neurons related to the pain transmission.
Kim, Jun-Hee;Shin, Sun-Young;Uhm, Dae-Yong;Kim, Sung-Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
/
제7권1호
/
pp.47-52
/
2003
The prostate gland contains numerous neuroendocrine cells that are believed to influence the function of the prostate gland. Our recent study demonstrated the expression of both ${\alpha}1$- and ${\alpha}2$-ARs, signaling the release of stored $Ca^{2+}$ and the inhibition of N-type $Ca^{2+}$ channels, respectively, in rat prostate neuroendocrine cells (RPNECs). In this study, the effects of NA on the resting membrane potential (RMP) of RPNECs were investigated using a whole-cell patch clamp method. Fresh RPNECs were dissociated from the ventral lobe of rat prostate and identified from its characteristic shape; round or oval shape with dark cytoplasm. Under zero-current clamp conditions with KCl pipette solution, the resting membrane potential (RMP) of RPNECs was between -35 mV and -85 mV. In those RPNECs with relatively hyperpolarized RMP (<-60 mV), the application of noradrenaline (NA, $1{\mu}M$) depolarized the membrane to around -40 mV. In contrast, the RPNECs with relatively depolarized RMP (>-45 mV) showed a transient hyperpolarization and subsequent fluctuation at around -40 mV on application of NA. Under voltage clamp conditions (holding voltage, -40 mV) with CsCl pipette solution, NA evoked a slight inward current (<-20 pA). NA induced a sharp increase of cytosolic $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_c$), measured by the fura-2 fluorescence, and the voltage clamp study showed the presence of charybdotoxin-sensitive $Ca^{2+}$-activated $K^+$ currents. In summary, adrenergic stimulation induced either depolarization or hyperpolarization of RPNECs, depending on the initial level of RMP. The inward current evoked by NA and the $Ca^{2+}$-activated $K^+$ current might partly explain the depolarization and hyperpolarization, respectively.
본 웹사이트에 게시된 이메일 주소가 전자우편 수집 프로그램이나
그 밖의 기술적 장치를 이용하여 무단으로 수집되는 것을 거부하며,
이를 위반시 정보통신망법에 의해 형사 처벌됨을 유념하시기 바랍니다.
[게시일 2004년 10월 1일]
이용약관
제 1 장 총칙
제 1 조 (목적)
이 이용약관은 KoreaScience 홈페이지(이하 “당 사이트”)에서 제공하는 인터넷 서비스(이하 '서비스')의 가입조건 및 이용에 관한 제반 사항과 기타 필요한 사항을 구체적으로 규정함을 목적으로 합니다.
제 2 조 (용어의 정의)
① "이용자"라 함은 당 사이트에 접속하여 이 약관에 따라 당 사이트가 제공하는 서비스를 받는 회원 및 비회원을
말합니다.
② "회원"이라 함은 서비스를 이용하기 위하여 당 사이트에 개인정보를 제공하여 아이디(ID)와 비밀번호를 부여
받은 자를 말합니다.
③ "회원 아이디(ID)"라 함은 회원의 식별 및 서비스 이용을 위하여 자신이 선정한 문자 및 숫자의 조합을
말합니다.
④ "비밀번호(패스워드)"라 함은 회원이 자신의 비밀보호를 위하여 선정한 문자 및 숫자의 조합을 말합니다.
제 3 조 (이용약관의 효력 및 변경)
① 이 약관은 당 사이트에 게시하거나 기타의 방법으로 회원에게 공지함으로써 효력이 발생합니다.
② 당 사이트는 이 약관을 개정할 경우에 적용일자 및 개정사유를 명시하여 현행 약관과 함께 당 사이트의
초기화면에 그 적용일자 7일 이전부터 적용일자 전일까지 공지합니다. 다만, 회원에게 불리하게 약관내용을
변경하는 경우에는 최소한 30일 이상의 사전 유예기간을 두고 공지합니다. 이 경우 당 사이트는 개정 전
내용과 개정 후 내용을 명확하게 비교하여 이용자가 알기 쉽도록 표시합니다.
제 4 조(약관 외 준칙)
① 이 약관은 당 사이트가 제공하는 서비스에 관한 이용안내와 함께 적용됩니다.
② 이 약관에 명시되지 아니한 사항은 관계법령의 규정이 적용됩니다.
제 2 장 이용계약의 체결
제 5 조 (이용계약의 성립 등)
① 이용계약은 이용고객이 당 사이트가 정한 약관에 「동의합니다」를 선택하고, 당 사이트가 정한
온라인신청양식을 작성하여 서비스 이용을 신청한 후, 당 사이트가 이를 승낙함으로써 성립합니다.
② 제1항의 승낙은 당 사이트가 제공하는 과학기술정보검색, 맞춤정보, 서지정보 등 다른 서비스의 이용승낙을
포함합니다.
제 6 조 (회원가입)
서비스를 이용하고자 하는 고객은 당 사이트에서 정한 회원가입양식에 개인정보를 기재하여 가입을 하여야 합니다.
제 7 조 (개인정보의 보호 및 사용)
당 사이트는 관계법령이 정하는 바에 따라 회원 등록정보를 포함한 회원의 개인정보를 보호하기 위해 노력합니다. 회원 개인정보의 보호 및 사용에 대해서는 관련법령 및 당 사이트의 개인정보 보호정책이 적용됩니다.
제 8 조 (이용 신청의 승낙과 제한)
① 당 사이트는 제6조의 규정에 의한 이용신청고객에 대하여 서비스 이용을 승낙합니다.
② 당 사이트는 아래사항에 해당하는 경우에 대해서 승낙하지 아니 합니다.
- 이용계약 신청서의 내용을 허위로 기재한 경우
- 기타 규정한 제반사항을 위반하며 신청하는 경우
제 9 조 (회원 ID 부여 및 변경 등)
① 당 사이트는 이용고객에 대하여 약관에 정하는 바에 따라 자신이 선정한 회원 ID를 부여합니다.
② 회원 ID는 원칙적으로 변경이 불가하며 부득이한 사유로 인하여 변경 하고자 하는 경우에는 해당 ID를
해지하고 재가입해야 합니다.
③ 기타 회원 개인정보 관리 및 변경 등에 관한 사항은 서비스별 안내에 정하는 바에 의합니다.
제 3 장 계약 당사자의 의무
제 10 조 (KISTI의 의무)
① 당 사이트는 이용고객이 희망한 서비스 제공 개시일에 특별한 사정이 없는 한 서비스를 이용할 수 있도록
하여야 합니다.
② 당 사이트는 개인정보 보호를 위해 보안시스템을 구축하며 개인정보 보호정책을 공시하고 준수합니다.
③ 당 사이트는 회원으로부터 제기되는 의견이나 불만이 정당하다고 객관적으로 인정될 경우에는 적절한 절차를
거쳐 즉시 처리하여야 합니다. 다만, 즉시 처리가 곤란한 경우는 회원에게 그 사유와 처리일정을 통보하여야
합니다.
제 11 조 (회원의 의무)
① 이용자는 회원가입 신청 또는 회원정보 변경 시 실명으로 모든 사항을 사실에 근거하여 작성하여야 하며,
허위 또는 타인의 정보를 등록할 경우 일체의 권리를 주장할 수 없습니다.
② 당 사이트가 관계법령 및 개인정보 보호정책에 의거하여 그 책임을 지는 경우를 제외하고 회원에게 부여된
ID의 비밀번호 관리소홀, 부정사용에 의하여 발생하는 모든 결과에 대한 책임은 회원에게 있습니다.
③ 회원은 당 사이트 및 제 3자의 지적 재산권을 침해해서는 안 됩니다.
제 4 장 서비스의 이용
제 12 조 (서비스 이용 시간)
① 서비스 이용은 당 사이트의 업무상 또는 기술상 특별한 지장이 없는 한 연중무휴, 1일 24시간 운영을
원칙으로 합니다. 단, 당 사이트는 시스템 정기점검, 증설 및 교체를 위해 당 사이트가 정한 날이나 시간에
서비스를 일시 중단할 수 있으며, 예정되어 있는 작업으로 인한 서비스 일시중단은 당 사이트 홈페이지를
통해 사전에 공지합니다.
② 당 사이트는 서비스를 특정범위로 분할하여 각 범위별로 이용가능시간을 별도로 지정할 수 있습니다. 다만
이 경우 그 내용을 공지합니다.
제 13 조 (홈페이지 저작권)
① NDSL에서 제공하는 모든 저작물의 저작권은 원저작자에게 있으며, KISTI는 복제/배포/전송권을 확보하고
있습니다.
② NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 상업적 및 기타 영리목적으로 복제/배포/전송할 경우 사전에 KISTI의 허락을
받아야 합니다.
③ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 보도, 비평, 교육, 연구 등을 위하여 정당한 범위 안에서 공정한 관행에
합치되게 인용할 수 있습니다.
④ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 무단 복제, 전송, 배포 기타 저작권법에 위반되는 방법으로 이용할 경우
저작권법 제136조에 따라 5년 이하의 징역 또는 5천만 원 이하의 벌금에 처해질 수 있습니다.
제 14 조 (유료서비스)
① 당 사이트 및 협력기관이 정한 유료서비스(원문복사 등)는 별도로 정해진 바에 따르며, 변경사항은 시행 전에
당 사이트 홈페이지를 통하여 회원에게 공지합니다.
② 유료서비스를 이용하려는 회원은 정해진 요금체계에 따라 요금을 납부해야 합니다.
제 5 장 계약 해지 및 이용 제한
제 15 조 (계약 해지)
회원이 이용계약을 해지하고자 하는 때에는 [가입해지] 메뉴를 이용해 직접 해지해야 합니다.
제 16 조 (서비스 이용제한)
① 당 사이트는 회원이 서비스 이용내용에 있어서 본 약관 제 11조 내용을 위반하거나, 다음 각 호에 해당하는
경우 서비스 이용을 제한할 수 있습니다.
- 2년 이상 서비스를 이용한 적이 없는 경우
- 기타 정상적인 서비스 운영에 방해가 될 경우
② 상기 이용제한 규정에 따라 서비스를 이용하는 회원에게 서비스 이용에 대하여 별도 공지 없이 서비스 이용의
일시정지, 이용계약 해지 할 수 있습니다.
제 17 조 (전자우편주소 수집 금지)
회원은 전자우편주소 추출기 등을 이용하여 전자우편주소를 수집 또는 제3자에게 제공할 수 없습니다.
제 6 장 손해배상 및 기타사항
제 18 조 (손해배상)
당 사이트는 무료로 제공되는 서비스와 관련하여 회원에게 어떠한 손해가 발생하더라도 당 사이트가 고의 또는 과실로 인한 손해발생을 제외하고는 이에 대하여 책임을 부담하지 아니합니다.
제 19 조 (관할 법원)
서비스 이용으로 발생한 분쟁에 대해 소송이 제기되는 경우 민사 소송법상의 관할 법원에 제기합니다.
[부 칙]
1. (시행일) 이 약관은 2016년 9월 5일부터 적용되며, 종전 약관은 본 약관으로 대체되며, 개정된 약관의 적용일 이전 가입자도 개정된 약관의 적용을 받습니다.