In canine, oocytes are ovulated at the GV (germinal vesicle) stage and they have to fulfill maturation phase before reaching metaphase II stage. The efficiency of in vitro maturation is still very low. Therefore, the aim of this study was to investigate the effect of in vitro maturation on nuclear changes of immature canine oocytes recovered from different reproductive stages ovaries and different culture conditions. The oocytes were cultured in TCM-199 with supplement at 5% $CO_2$ and $38.5^{\circ}C$ for 72 h. The nuclear maturation of canine oocytes was evaluated with Hoechst 33342 stain under fluorescence microscope (Fig. 1). The results of this study detected differences in in vitro maturation rate between oocytes recovered from follicle status and non-follicle status ovaries. However, these differences were not significant as indicated in Table 1 and Fig. 2. In regard to the effect of culture condition with supplements, we did not found significant differences compared with control group (Table 2, Table 3). One of the reasons for this data could be the conditions that ovaries were exposed during slaughtering process or the long distant transportation of the ovaries. Although these data have not shown clearly significant differences results compared with control, furthermore the different reproductive status ovaries was beneficial for maturation of oocytes in vitro and can be a basic part of knowledge to improve in vitro maturation of canine oocytes.
This experiment was investigated the effect of presence of granulosa cells from follicles of different size on bovine oocyte maturation, cleavage and development to late stage. The nuclear and cytoplasmic maturation of oocytes in the IVM-IVF system are critical for subsequent embryo development. Granulosa cells when the co-cultured with oocytes may interact with cumulus-oocytes complexes and influence the development competence of the oocytes. Granulosa cells from medium (2~6 mm) and large(>1O mm) size follicles were recovered by aspiration, washed 3 times by centrifugation at 500 x g for 5 min. and used for co-culture at a concentration of 2~3 x 106 cells/mi. The oocytes were matured in vitro (IVM) for 24 hrs. in TCM-199 supplemented with 35 $\mu$g/ml FSH, 10 $\mu$g/ml LH, 1 $\mu$g/ml estradiol-17$\beta$ and granulosa cells at 39$^{\circ}C$ under 5% $CO_2$ in air. They were fertilized in vitro (IVF) by epididymal spermatozoa treated with heparin for 24 hrs., and then the zygotes were co-cultured in vitro (I VC) with bovine oviductal epithelial cells for 7 to 9 days. The assessment of maturation revealed that Grade J oocytes showed significantly(P
In an attempt to evaluate the function of MAP kinase in porcine oocytes and to develop a method of the assessment of its activity, myelin basic protein (MBP) was used as a substrate to detect the MAP kinase activity of porcine oocytes which had undergone maturation in vitro. The existence of MAP kinase and MAP kinase kinase (MAPKK) was verified in immature porcine germinal vesicle (GV) oocytes at 0 h culture via Western blotting. Porcine oocytes exhibited a low level of MAP kinase activity during the first 20 h of culture, which increased at 25 h, during which time a breakdown in the nuclear membrane occurred. Significantly higher increases (p<0.05) of MAP kinase activity were detected at 30 h of culture. Using the gel phosphorylation method, MBP was phosphorylated at two positions corresponding to mammalian MAP kinase-extracellular signal-regulated kinase (ERK 1) (44 kDa) and ERK 2 (42 kDa). The absolute levels of those proteins did not increase during 40 h of culture, suggesting that the detected increase in MAP kinase activity was the result of phosphorylation rather than changes in the total amount of protein. MAPKK and MAP kinase were dephosphorylated in first-stage (MI) meiotic oocytes by the addition of cycloheximide, a protein synthesis inhibitor. These results of this study indicate that the MAP kinase cascade does exists in porcine oocytes and that its activation leads to oocyte maturation.
Ryu, C. S.;K. S. Kil;Kim, N-H;D. H. Ko;Lee, H. T.;K. S. Chung
한국가축번식학회지
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제23권3호
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pp.221-227
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1999
미성숙한 소 난자 동결보존 기술의 개발은 체외수정, 복제동물 및 형질전환동물 생산에 필요로 하는 난자를 시간과 공간의 제약 없이 공급이 가능해지기 때문에 그 효용가치가 많으나 아직까지 성공 보고례가 없다. 본 연구에서는 전자현미경용 grid를 이용한 초급속 동결 방법에 의해 미성숙한 소 난자를 동결 보존한 후, 이 난자를 융해하여 체외성숙, 체외수정 및 배발달을 유도하였다. 동해제는 PBS에 40% ethylene glycol, 0.5M sucrose, 18%과 10% fetal bovine serum이 들어 있는 EFS40을 사용하였다 . 동결ㆍ융해 후의 난자의 생존율은 48% 정도로 대조군에 비해 현저히 낮았으나 metaphase-II까지의 성숙율은 78%로, 정상 자웅전핵 형성율 75%로 대조군에 비해 차이가 없었다. 또한 배반포까지의 배발달율은 대조군23%와 동결군은 5%로 동결 융해한 것이 낮았으며 수정후 108~120시간 째 배반포를 염색하여 세포수률 알아본 결과는 각각 128$\pm$5와 98$\pm$8이었다. 항동해제내 $Na^{+}$ 이온의 농도에 따른 미성숙된 난자의 생존율, 성숙, 수정 및 배발달율을 조사하였으나 유의차가 없었다. 이상의 결과는 동결 보존된 미성숙 소 난자가 융해후 체외성숙 및 수정에 의해 배반포까지의 발달이 가능하다는 것을 시사하고 있다.
Kim, Yun-Na;Kim, Eun-Ju;Kim, Eun-Young;Lee, Hyun-Seo;Kim, Kyeoung-Hwa;Lee, Kyung-Ah
한국발생생물학회지:발생과생식
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제13권3호
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pp.145-153
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2009
Previously, we obtained the list of genes differentially expressed between GV and MII oocytes. Out of the list, we focused on functional analysis of Zap70 in the present study, because it has been known to be expressed only in immune cells. This is the first report about the expression and its function of Zap70 in the oocytes. Synthetic 475 bp Zap70 dsRNA was microinjected into the GV oocytes, and the oocytes were cultured in vitro. In addition to maturation rates, meiotic spindle and chromosome rearrangements, and changes in expression levels of transcripts of three kinases, Erk1/2, JNK, and p38, were determined. Zap70 is highly expressed in immature GV oocytes, and gradually decreased as oocyte matured. When dsRNA of Zap70 was injected into the GV oocytes, Zap70 mRNA specifically and completely decreased by 2 hr and its protein expression also decreased significantly. Absence of Zap70 resulted in maturation inhibition at meiosis I (57%) with abnormalities in meiotic spindle formation and chromosome rearrangement. Concurrently, mRNA expression of Erk2, JNK, and p38, were affected by Zap70 RNAi. Therefore, we concluded that Zap70 is involved in MI-MII transition by affecting expression of MAP kinases.
This study was carried out to examine the influence of minimum essential medium (MEM) vitamins supplementation to in vitro maturation medium and in vitro culture medium on the development of porcine embryos. Porcine embryo development was investigated following cultivation in both in vitro maturation and culture medium with the supplementation of MEM vitamins (0, 0.1, 0.2 and 0.4%) using immature oocytes collected from the ovary of prepubertal gilts. Embryo development was observed and the total cell number in each blastocyst generated under the culture conditions was quantified following supplementation of the medium. The embryonic development rate of the blastocyst and hatched blastocyst was higher, but not significantly so, when 0.4% MEM vitamins were supplemented to the in vitro maturation medium of the porcine oocyte. Interestingly, the total number of cells in the blastocyst was significantly higher in the in vitro maturation MEM vitamins supplemented group compared to either the untreated group or the group which had MEM vitamins supplemented to both in vitro maturation and in vitro culture medium simultaneously (p<0.05). Therefore, the supplementation of 0.4% MEM vitamins to the in vitro mature medium has a beneficial effect on the embryonic development of in vitro produced blastocysts derived from the immature porcine oocytes.
본 연구는 공여난소의 황체 형태가 소 미성숙난자의 체외 성숙과 발생에 미치는 영향을 감수분열과 수정란 생산을 비교하여 조사하였다. 공여난소를 황체의 형태에 따라 다음과 같이 4 group 으로 분류하였다. Group 1 ; 최근에 배란한 흔적으로 보이는 혈포가 있는 난소. Group 2 ; 황체는 적색 또는 갈색이며, 혈관이 황체의 가장자리에 국한되어 분포하고 있는 난소. Group 3 ; 황체는 오렌지 또는 황갈색이며, 혈관이 황체의 정상부 까지 분포한 난소. Group 4 ; 황체는 잃은 황색 또는 백색이며, 황체 정상부의 혈관분포가 사라진 난소. 미성숙난자의 체외성숙과 배발생을 위하여 각각 TCM 199과 TLP-PVA을 기본배지로 사용하였다. 각 group에서 채취한 미성숙 난자를 4, 14, 24시간 체외성숙시켰을 때 metaphase I과 metaphase II에 도달한 난자의 비율은 각 group 사이에 차이가 없었으며, 각 group 에서 metaphaseII난자는 체외성숙 후 14시간에 나타나기 시작하여 24시간에 성숙이 종료하였다. 체외 배발생 후 2세포기와 8세포기까지의 발생에는 공여난소 황체의 형태가 영향을 미치지 않았으나, 상실배와 배반포로 발생한 수정란의 비율은 group 1과 3에서 채취한 난자에서 group 2와 4에서 채란한 난자에 비하여 유의적으로 증가하였다 (p<0.05). 이러한 결과는 공여난소의 번식상태가 체외 수정란생산에 유의적인 영향을 미치는 것으로 암시하고 있다.
Zona pellucida (ZP), a primarily representative coat of mammalian egg and embryo, has an extremely heterogeneous morphology during different developmental stages. The objective of the present study was to compare the morphological changes of the ZP surface of immature, in vitro and in vivo matured canine oocytes by using scanning electron microscopy (SEM). Canine ovaries were collected from local veterinary hospitals to recover immature oocytes. The ovaries were sliced and the released cumulus oocyte complexes (COCs) were washed with TL-HEPES. The selected COCs were randomly divided into two groups, first group was processed immediately at immature state and the second group was processed 72 h after in vitro maturation, and compared with in vivo derived oocytes. Oocytes were fixed, critical point dried and examined under SEM. The diameters of oocyte and outer holes of the ZP were measured on a total of 249 oocytes; the results were analyzed using One-way ANOVA. Our results showed that, the diameter of immature oocytes significantly differed (p < 0.05) from that of in vivo matured oocytes ($79.60{\pm}0.77{\mu}m$ vs. $101.46{\pm}1.07{\mu}m$, respectively). Similarly, a significant difference (p < 0.05) in the diameters between those of in vitro and in vivo matured oocytes were found ($79.51{\pm}2.36{\mu}m$ vs. $101.46{\pm}1.07{\mu}m$, respectively). Moreover, the diameters of the outer holes of the ZP were significantly (p < 0.05) larger in in vivo matured ($1.48{\pm}0.42{\mu}m$) than in vitro matured for 72 and immature oocytes ($1.10{\pm}0.16$ and $0.43{\pm}0.12{\mu}m$, respectively). Taken together, these data indicates that the ZP surface is related to oocyte maturity in canine.
In vitro maturation of porcine immature cumulus-enclosed oocytes can be enhanced by co-incubation with spermatozoa even before fertilization. The aim of this study was to determine whether the addition of spermatozoa into the culture medium can stimulate the meiosis resumption of porcine cumulus-enclosed oocytes arrested at germinal vesicle (GV). Cumulus-enclosed oocytes (CEOs) were collected from follicles of 3 to 5mm diameter. Porcine CEOs were cultured in tissue culture medium containing various meiosis inhibitors and spermatozoa. Oocytes were examined for evidence of GV and GV breakdown after 24 h culture. After 24 h culture $43.8\%$ of oocytes cultured in only TCM 199 remained at GV stage whereas $56.2\%$ of oocytes were able to resume meiosis. When porcine CEOs were cultured in the medium with meiosis inhibitor such as, dibutyryl cAMP (dbcAMP) and forskolin (Fo), more than $90\%$ of oocytes were not able to resume meiosis. However, co-culture of porcine CEOs with spermatozoa was able to overcome the inhibitory effect of dbcAMP and Fo. Irrespective of the presence of 3-isobutyl-1-methylxanthine (IBMX), no difference was observed in the proportion of oocyte reached germinal vesicle breakdown (GVBD). The present study suggests that dbcAMP and Fo prevent the spontaneous maturation of competent oocyte in culture after isolation from follicles and that mammalian spermatozoa contain a substance(s) that improves meiosis resumption in vitro of porcine cumulus-enclosed oocytes.
The aim of present study was to investigate regulatory mechanism of alpha-linolenic acid (ALA) during in vitro maturation (IVM) on nuclear and cytoplasmic maturation of porcine oocytes. Basically, immature cumulus-oocyte complexes (COCs) were incubated for 22 h in IVM-I to which hormone was added, and then further incubated for 22 h in IVM-II without hormone. As a result, relative cumulus expansion was increased at 22 h after IVM and it was enhanced by treatment of ALA compared with control group (p < 0.05). During IVM process within 22 h, cAMP level in oocytes was decreased at 6 h (p < 0.05) and it was recovered at 12 h in ALA-treated group, while oocytes in control group recovered cAMP level at 22 h. In cumulus cells, it was reduced in all time point (p < 0.05) and ALA did not affect. Treatment of ALA enhanced metaphase-I (MI) and MII population of oocytes compared with oocytes in control group at 22 and 44 h, respectively (p < 0.05). Intracellular GSH levels in ALA group was increased at 22 and 44 h after IVM (p < 0.05), whereas it was increased in control group at 44 h after IVM (p < 0.05). In particular, the GSH in ALA-treated oocytes during 22 h of IVM was higher than control group at 22 h (p < 0.05). Lipid amount in oocytes from ALA group was higher than control group (p < 0.05). Treatment of ALA did not influence to absorption of glucose from medium. Cleavage and blastocyst formation of ALA-treated oocytes were enhanced compared with control group (p < 0.05). These findings suggest that supplementation of ALA could improve oocyte maturation and development competence through increasing GSH synthesis, lipid storage, and regulation of cAMP accumulation during early 22 h of IVM, and these might be mediated by cumulus expansion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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