Protoplasts of Arabidopsis thaliana were easily isolated from the shoot-forming (SF) suspension-cultured cell clusters with 4 hours-shaking condition (40 rpm) on CPD enzyme solution containing 1% cellulase R-10, 0.25% pectolyase Y-23 and 0.5% driselase. Protoplasts were cultured on liquid KAO medium supplemented with 1 mg/L 2,4-D, 0.5 mg/L kinetin, 200 mg/L spermidine and 68 g/L glucose. Also, protoplasts were cultured on 0.2 $\mu$M membrane filter placed onto CP solid medium containing the suspension cells as feeder cells in the dark at $25^{\circ}C$ for 4 weeks. Protoplast-derived-SF calli were cultured on MS medium containing 0.05 mg/L IAA, 7 mg/L 2 ip and 30 g/L sucrose under the continuous illumination for four weeks. The frequency of shoot formation was about 60%. The regenerants were transferred into potting soil to grow mature plants. The regenerants formed the silques with seeds after 8 weeks of cultures.
Codonopsis lanceolata ("Deoduck" in Korea) is a perennial herb, and belongs to family, Campanulaceae. Its taproot is used a good source of a wild vegetable as well as an herbaceous medicine. In this study, to develop a bialaphos-resistant transgenic Codonopsis, seed germination mechanism and somatic embryogenesis of the plant were investigated, and Agrobacterium-mediated transformation with bar gene encoding phosphinothricin acetyltransferase (PAT) was performed. Attempt were made to regenerate plant from cells via somatic embryogenesis. When the cotyledons, nodes and leaf disks were cultured on MS medium containing 2,4-D and zeatin, embryogenic calli were induced. Upon transferring the somatic embryos to N6 solid medium without plant growth regulators, they developed into plantlets under continuous illumination. All plants were dead on MS basal medium containing 10 mg/L phosphinothricin (PPT) and Basta, respectively. The explants did not produce calli in the medium containing 200 mg/L kanamycin. The explants were cocultured with Agrobacterium tumefaciens for 2 days, and transformants were selected in MS basal medium containing 1.0 mg/L 2,4-D, 100 mg/L kanamycin and 500 mg/L carbenicillin. After the selection, embryogenic calli were induced and then somatic embryos were produced by subsequent subculturing. The somatic embryos were germiated on N6 basal medium containing 200 mg/L kanamycin and 500 mg/L carbenicillin. PCR analysis showed that nptII and bar genes were introduced in the Deoduck transformants. After the confirmation of bar gene expression in RNA and protein level, the transgenic Deoduck will be used to study the genetics of filial generation with the herbicide control gene, bar.gene, bar.
An analytical methodology based on solid-space extraction (SPE) with with Bond Elut Certify cartridge (Varian, 130 mg) has been developed for the qualification and quantitation of strychnine in blood. After the elution layer was evaporated, the residue was reconstituted with methanol for GC/MS. Internal standard was used 10 mg/l dextromethorphan. Strychnine is a potent central nervous stimulant and convulsant, and an alkaloid found in seeds of Strychnos nux-vomica. It was used therapeutically to improve circulation and muscle tone in oral or intramuscular doses of 0.05~8 mg. The fatal dose of strychnine for humans is 50~100 mg. A man was found dead lying curled up the corner of the large room in a roof house after the fire fighter opened a locked door inside to put out the fire. The postmortem blood and gastric contents were analyzed for toxicological testing. Strychnine and brucine were detected using GC/MS first in gastric contents extracts. The contents of strychnine was 0.083 mg/l in heart blood, 0.088 mg/l in peripheral blood and 4.0 mg/kg in gastric contents, respectively. Method validation was carried out in terms of linearity, accuracy, precision (intraday, interday) in blood. The assay is linear over 0.05~10 mg/l ($r^2$=0.999). Limit of detection (LOD) and limit of quantitation (LOQ) in blood were determined 0.02 mg/l (S/N=3) and 0.07 mg/l (S/N=10), respectively. Accuracy (bias%) of strychnine with 0.1, 1 and 10 mg/l was 12.0% (n=6), 9.3% (n=6) and 6.9% (n=6), respectively. Intraday precision (CV%) of strychnine with, 0.1, 1 and 10 mg/l were 6.4%, 10.4%, 1.2% (n=6), respectively. Interday precision (CV%) of strychnine with 0.1, 1 and 10 mg/l over three days were 24.0%, 18.5%, 13.8% (n=18), respectively. Relative recovery with 0.1, 1 and 10 mg/l (in blood) were 114.9%, 99.3% and 87.4% (n=6), respectively. The described method can be applied in forensic toxicology to determine strychnine in blood samples.
Callus induction from leaf and stem explants of Arabidopsis thaliana was successfully obtained when leaf explants were cultured on MS medium containing 2.0 mg/L 2,4-D in the dark and also, when stem explants were cultured on CP medium containing 0.5 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BAP. Explant-derived sliced calli were suspension-subcultured every week in CP liquid medium with 0.5 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BAP in the dark, and shoot-forming cell clusters of nodular, pale yellow and knobby type were selected after 7-8 weeks of culture. Shoots were initiated from the green spots of the selected shoot forming calli cultured on MS regeneration medium containing 0.05 mg/L IAA, 7.0 mg/L 2-iP and 30 g/L sucrose under continous illumination for four weeks. Shoot regeneration frequency (calli regenerating at least one shoot) was more than 50%. For plant regeneration, excised shoots were trnasferred to hormone free medium for root initiation after 4 weeks of culture. The regenerants were bolting after 2 weeks of culture and formed in vitro flowering buds within bracts after 4 weeks of culture.
5-methyltryptophan(5MT) resistant mutant plants (MRl) were analyzed for characterization of anthranilate synthetase (AS) and tryptophan synthetase (TS) enzymes. The enzyme was measured in crude extracts from MR1 and control seedlings of Danggin inbred line. There was no significant difference in the level of AS between MR1 and control seedlings when grown on MS medium without 5MT. However, MR1 seedlings grown on MS medium with 25mg/L 5MT showed the level of AS twice higher than that of control seedlings. The activity of AS was inhibited to 50% in untreated plants when 4mg /L L-tryptophan was added to their extracts. Extracts from MR1 plants required about four times higher concentration of amino acid to cause equal inhibition. In the TS assay, the activity observed in MR1 seedlings was four times higher than that of control seedlings. We have also isolated and sequenced the gene which encoding the tryptophan synthetase B subunit (TSB) from maize. The gene encodes polypeptides with high homology to TSB isolated from other plants, and is expressed in all the developmental stages examined. Northern hybridization analysis indicated that the gene expression in MR1 seedlings grown on MS medium showed a higher level than in control seedlings.
HS-SPME-GC/MS was studied and optimized for the determination of 17 orgarnophosphorous pesiticides (OPPs: chlorpyrifos, chlorpyrifos-methyl, demeton-s-methyl, diazinon, dimethoate, EPN, fenitrothion, fenthion, malathion, methidathion, monocrotophos, parathion, phenthoate, phosphamidon, sulfotep, terbufos, triazophos) in blood. Optimum SPME parameters were selected: choice of SPME fiber (85 ${\mu}m$ polyacrylate), pH effect (0.5 N HCl), salt effect ($Na_2SO_4$, 0.2 g; 20%), headspace incubation temperature ($80^{\circ}C$), headspace incubation time (1 min), headspace adsorption time (30 min) and GC desorption time (2 min). These parameters were optimized using HS-SPME autosampler coupled with gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS). Method validation was carried out in terms of linearity, limit of detection (LOD), limit of quantitation (LOQ) and recovery in blood. The assay was linear over 0.5~5.0 mg/l ($r^2$=0.955~1.000). Limit of detection (LOD) and limit of quantitation (LOQ) in blood were determined 0.03~0.3 mg/l (S/N=3) and 0.1~1.1 mg/l (S/N=10), respectively. Relative recovery with 0.5, 1 and 5 mg/l (in blood) were 90.8%, 98.5% and 94.1%, respectively. This method will be applied to the determination of the orgarnophosphorous pesticides in postmortem blood. The proposed protocol can be an attractive alternative to be used in routine toxicological analysis.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.35
no.3
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pp.353-358
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2006
Flavonoid and limonoid compounds were determined by HPLC on the methanol and ethanol extracts from citron seeds. The quantities of the compounds in these categories were higher in the ethanol extract than methanol extract. The types of these compounds were detected in larger numbers in the ethanol extract. The content of limonin was the largest in both methanol and ethanol extract among the detectable compounds ; 140.34 mg/100g and 170.98 mg/100g, respectively, and the contents of other compounds, caffeic acid, naringin, lutin, nomilin, were found in large amount in this order. The molecular weights of forty two compounds in ethanol extract were determined with mass spectrums and extracted ion current chromatograms by HPLC/MS.
To identify the volatiles of Platycodon roots, the three-year-old and the 24-year-old Platycodon roots cultivated in a local farm were extracted with ethyl ether by SDE method. 54.71mg% and 80.01mg% of volatile components were collected in the three-year-old and in 24-year-old Platycodon roots, respectively. As a result of GC/MS(TIC) analysis, 24 and 28 compounds were identified, respectively; The amounts of volatile components such as hexanol, trans-2-hexenol and nonanal in 24-year-old roots were detected above ten times than those in 3-year-old roots. The Volatiles of 24-year-old roots were fractionated by SCC and identified by GC/MS to be 10 hydrocarbons, 8 alcohols, 10 aldehydes, 5 esters, 6 acids and 1 unknown compound as the major components. The species and total amounts of volatile component in 24-year-old Platycodon roots were considered to be higher than those in 3-year-old Platycodon roots. *Abbreviations 1. Platycodon : platycodon grandiflorus (jacquin) A. De Candolle. 2. SDE : Simultaneous Distillation Extraction 3. SCC : Silicagel Column Chromatography 4. GC : gas chromatography 5. GC/MS : Gas Chromatography-Mass Spectrometer 6. TIC : Total Ion Chromatogoraphy
Alam, Noor Camellia Noor;Kadir, Abdul Muhaimin Abdul
Journal of Plant Biotechnology
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v.49
no.2
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pp.124-130
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2022
The application of traditional taro propagation methods for large-scale cultivation would be insufficient to meet the high demand for quality planting materials. Therefore, this study aimed to develop an in vitro micro-propagation technique for two local taro cultivars (cv.), Wangi and Putih. Taro cormels were collected from the Malaysian Agricultural Research and Development Institute (MARDI) germplasm (Serdang, Malaysia). Explants were taken from the shoot tip of cormels and initially cultured on Murashige and Skoog (MS) basal media for four weeks. The explants were then transferred to different multiplication media supplemented with different types and concentrations of cytokinins such as 6-benzylaminopurine (BAP ) and Thidiazuron (TDZ). Shoot production was quantified after six weeks of culture. The highest mean number of new shoots was produced by the Wangi cultivar on MS medium supplemented with 2.0 mg/l BAP (2.10 shoots), MS medium supplemented with 0.5 mg/l TDZ (2.18 shoots), and Gamborg B5 medium supplemented with 6.0 mg/l BAP (2.43 shoots). The maximum average number of the Putih cultivar shoots was obtained on MS supplemented with 2.0 mg/l BAP (3.57 shoots). MS basal media was used for root initiation, as it produced an average of 25 roots with an 11-cm length. Various types of substrate mixtures were used during acclimatization. The best acclimatization substrate for the Wangi cultivar was 100% peat soil, whereas the Putih cultivar grew optimally in a combination of peat and perlites at a 1:1 ratio. Taro plantlets require approximately 4 to 6 weeks to acclimatize before they can be transferred to the field.
To acquire the normal regeneration of plantlets, we investigated combinations and concentrations of plant growth regulations for optimal conditions of adventitious root formation. Based on the previous study, we performed callus and shoot induction. When induced shoot was transferred into a rooting medium containing plant hormones, it wilted and died. Thus, the shoot proliferated on 1/2 MS medium for 10 days and was then treated with MS medium supplemented with 3.0 mg/L NAA for 3 days. Adventitious root formations were observed after shoot planlets were transferred to 1/3 MS medium. The concentrations of salt and sucrose were gradually reduced in MS medium and the rooted plantlets were transferred for acclimatization into a mixture of peatmoos : perlite (3 : 2).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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