The liquefactions of $\alpha$-cellulose(Sigma Chemical, C-8002, 47H0383) was prepared in the presence of phenol using sulfuric acid as a catalyst under $N_2$ gas protection at $180^{\circ}C$ for 60minutes to examine its components. The ratio of $\alpha$-cellulose to phenol was 1: 6.2(w/w), and that to sulfuric acid was 1: 0.05(g/$m\ell$). The yields of liquefaction were calculated after the liquefied mixtures were passed through 1G4 glass filter. The luquefied product of $\alpha$-cellulose was analyzed using GC-MS Spectormeter. The 12 compounds identified by GC-MS Spectrometer, of which peak area covers 54% as 2,4-dimethyl phenol, p-isopropyl phenol, 1-ethyl-3,5-dimethyl benzene, o-isopropyl phenol, (E)-2,4\` dihydroxy-stilbene, 2,2\`-methylene-bisphenol, 4,4\`-methylenebisphenol, 3-methyl-2-hydroxyphenyl-(E)-2-hydroxyl-4\`-methoxy-stilbene, 1-phyenyl-1-(4\`hydroxyphenyl)methanol phenol derivatives. From this results, the reaction pathways of the liquefaction of cellulose were proposed through electrophilic substitution reaction. Phenol as a solvent might react with the reaction intermediates as well in the cellulose liquefaction.
Pine bark was liquefied in the presence of phenol using organic sulfonic acids as catalysts, and the liquefied barks were characterized. It was found that the organic sulfonic acids were more effective catalysts than hydrochloric acid for complete liquefaction of pine bark. The liquefied barks prepared from phenol-organic sulfonic acid liquefaction were highly phenolated, and the amounts of combined phenol were 2-3 times greater than that of the liquefied bark obtained from phenol-hydrochloric acid liquefaction. The glass transition points (Tg) were lower than that of the liquefied barks prepared from phenol-hydrochloric acid. It can be concluded that by using the organic sulfonic acids, the phenol used as a liquefying reagent is highly introduced into the bark, resulting in the phenolated bark preventing further condensation reactions, which may occur during the liquefaction. The carbohydrates such as cellulose and hemicellulose in the liquefied barks were almost decomposed during the liquefaction, from the results of IR spectra and neutral sugar analyses. Energy dispersive X-ray spectromery (EDS) results from the residues and the liquefied barks showed that the organic sulfonic acid catalysts did not lead to serious corrosion of the reactor compared with the hydrochloric acid catalyst.
Cyclodextrin glucanotransferase(CGTase) derived from Bacillus macerans was immobilized by (1) covalent linkage on chitosan and chitin with glutaraldehyde, (2) adsorption on DEAE-cellulose and Amberite IRA 900 after succinylation, and (3) entrapment on alginate and polyacrylamide by cross linking. Adsorption on Amberite IRA 900 and covalent linking on chitosan were identified to be the most suitable immobilization methods considering the yield of activity and stability of immobilized CGTase. The enzymatic properties of immobilized CGTase were investigated and compared with those of the soluble CGTase. Thermal stability of CGTase immobilized on chitosan was increased from 50 to $55^{\circ}C$, and the optimum temperature of CGTase immobilized on Amberite IRA 900 was shifted from 55 to $50^{\circ}C$. The effect of molecular size of soluble starch (substrate) on immobilized CGTase investigated using partially liquefied substrates with different dextrose equivalent(DE). Cyclodextrin(CD) conversion yield augmented according to the increase of DE level for immobilized CGTase on Amberite IRA 900. CD conversion yield of partially cyclized starch with soluble CGTase was higher compared with liquefied one with ${\alpha}-amylase$.
The effects of phenol during ethylene carbonate (EC) liquefaction of pine bark in the presence of methanesulfonic acid (MSA) as a catalyst were investigated. Liquefaction of pine bark using EC in the presence of acid catalyst was very difficult in comparison to wood. Mixing ethylene glycol (EG) with EC improved the liquefaction process, but the maximum liquefaction yield did not exceed 78%. Mixing 20~30% phenol with EC was very effective for the liquefaction and the residue was remarkably decreased. More than 95% of liquefaction was achieved when about 30% phenol was mixed with EC. The reaction conditions, such as catalyst concentration, liquefaction temperature and time, type of catalyst and liquefying agent, had a great influence on the liquefaction process. The results of the average molecular weights and the amount of combined phenols for the liquefied products indicated that sulfuric acid (SA) causes high condensation reactions compared to MSA.
A strain of yeast which can convert starch directly to ethanol was developed by the intergeneric protoplast fusion between Schwanniomyces alluvius possessing $\alpha$ amylase as well as glucoamylase with debranching activity and FSC-14-75 which previously had been formed from a heterologous transformation and subsequent intergeneric protoplast fusion. Fusants were selected on minimal medium after protoplasts of auxotrophic mutant of S. alluvius fused with heat-treated protoplasts of FSC-14-75 in the presence of 30%(w/v) PEG and 20 mM $CaCl_2$. The fusion frequency was in the range of $10^{-6}$ order. All fusants tested were intermediate types of parental strains for carbon compound assimilation, and their cell volumes were approximately 1.1 times larger than FSC-14-75 and 1.8 times larger than S. alluvius. The fusants were unable to sporulate like FSC-14-75, while S. alluvius could sporulate. In flask scale the most promising fusant, FSCSa-R10-6, produced 7.83%(v/v) and 10.17%(v/v) ethanol from 15% and 20% of liquefied potato starch, respectively, indicating that the fermetation efficiency of each case increased 1.2 times and 1.6 times than that of FSC-14-75. The elution pattern on DEAE-cellulose chromatography showed that FSCSa-R10-6 has four distinct amylase peaks of which two peaks originated from S. alluvius and the other two from FSC-14-75. These results suggest that the enhanced fermentation efficiency of the fusant might be due to almost-complemented parental amylases.
Cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) was purified from the culture broth of the Bacillus firmus var. alkalophilus, using ultrafiltration, starch adsorption/desorption, ion-exchange chromatography on DEAE-cellulose and gel filtration on Sephacryl HR-100. The molecular weight of the purified enzyme was determined as 77,000 by SDS-PAGE. The optimum pH and temperature for the CD synthesis were 6.0 and 5$0^{\circ}C$, respectively. The activity of this enzyme was stably kept at the range of pH 6.0~9.5 and up to 5$0^{\circ}C$. However, in the presence of $Ca^{2+}$, the optimum temperature for CD synthesis was shifted 55~6$0^{\circ}C$ and this enzyme was stable up to 6$0^{\circ}C$ because of the stabilizing effect of $Ca^{2+}$. The purified CGTase produced CDs with high conversion yields of 45~51% from sweet potato starch, com starch and amylopectin as substrate, especially, and the product ratio of $\beta$-CD to ${\gamma}$-CD was obtained at range of from 5.8:1 to 8.4:1 according to the kind of substrate. The purified enzyme produced mainly $\beta$-CD without accumulation of $\alpha$-CD during enzyme reaction using various starches as the substrate, indicating that the purified enzyme is the typical $\beta$-CGTase. The purified CGTase produced 25 g/l of CDs from 5.0% (w/v) liquefied com starch and the conversion yield of CDs was 50%, and the content of $\beta$-CD was 84% of total CDs after 8 hours under the optimum reaction condition.ion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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