Glutaredoxin (Grx) is a small, heat-stable redox protein acting as a multi-functional glutathione (GSH)-dependent disulfide oxidoreductase. We have cloned the monothiol Grx5 gene from the genomic DNA of the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. It has 1,904 bp, with one intron, and encodes a putative protein of 146 amino acids with a molecular mass of 16.5 kDa. Recombinant Grx5 produced functional Grx in S. pombe cells. NO-generating sodium nitroprusside (SNP, 1.0 and 2.0 mM) and potassium chloride (KCl, 0.2 and 0.5 M) increased the synthesis of ${\beta}$-galactosidase from a Grx5-lacZ fusion gene, and transcription of Grx5 was also enhanced by SNP and KCl. Synthesis of ${\beta}$-galactosidase from the Grx5-lacZ fusion was lower in Pap1-negative TP108-3C cells than in wild type KP1 cells, and when Pap1 was overproduced in KP1 cells, the level of ${\beta}$-galactosidase increased. We also found that Pap1 is involved in the induction of Grx5 by SNP and KCl. S. pombe Grx5 may play a crucial role in responses to nitrosative and osmotic stresses.
GroEL is well known as a molecular chaperone. In order to determine the dynamic stress response of the Escherichia coli groE promoter, a groE-lacZ operon fusion in the chromosome was constructed. Stress leading to ${\sigma}^{32}$ synthesis induces transcription from E. coli groE promoter, since the promoter is ${\sigma}^{32}-regulated$. When the strain was stressed with ethanol, phenol, and sodium chloride, clear inductions of ${\beta}-galactosidase$ were observed. Two types of simultaneous stresses of sodium chloride and phenol induced the enze much more than either of the two alone, suggesting that stress was an additive. The combined stress resulted in the highest induction of the enzyme in this system. The groE-lacZ fusion strain developed in this study can conveniently be used to detect other harmful pollutants in the environment. Stress treatment of cells containing recombinant proteins, which need GroEl, by ethanol, phenol, or sodium chloride, might have a tendency to increase their biological activities.
Kim, Hong-Gyun;Park, Hey-Jung;Kang, Hyun-Jung;Lim, Hye-Won;Kim, Kyung-Hoon;Park, Eun-Hee;Ahn, Ki-Sup;Lim, Chang-Jin
Journal of Microbiology
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v.43
no.1
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pp.44-48
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2005
In our previous study, the first structural gene (GGTI) encoding ${\gamma}-glutamyl$ transpeptidase was cloned and characterized from the fission yeast Schizosaccharomyces pombe, and its transcription, using the GGTI-lacZ fusion gene, containing the 1,085 bp upstream region from the translational initiation point, was found to be enhanced by sodium nitroprusside and L-buthionine-(S,R)-sulfoximine (BSO). In the present work, regulation of the GGTI gene was further elucidated. Non-fermentable carbon sources, such as acetate and ethanol, markedly enhanced the synthesis of ${beta}-galactosidase$ from the GGTI-lacZ fusion gene. However, its induction by non-fermentable carbon sources appeared to be independent of the presence of the Pap1 protein. Nitrogen starvation also gave rise to induction of GGTI gene expression in a Pap1-independent manner. The three additional fusion plasmids, carrying 754, 421 and 156 bp regions, were constructed. The sequence responsible for the induction by non-fermentable carbon sources and nitrogen starvation was identified to exist within a -421 bp region of the GGTI gene. Taken together, the S. pombe GGTI gene is regulated by non-fermentable carbon sources and nitrogen starvation.
Metal ion-induced and it’s regulatory genes were screened in virulent salmonella typhimurium UK1 and tested cross-regulation with various stresses. Using the techniqud of P22-MudJ(Km, lacZ)-directed lacZ operon fusion, LF40 cuiA::MudJ and Lf153 cuiD::MudJ which were induced by copper were selected. cuia and cuiD were determined anaerobic coper inducible and copper tolerance response gene, respectively. Also cuiA and cuiD locus were determined at 81 and 8min, respectively, on salmonella Genetic Map. The two regulators were identified as cuaR, and cudR, which controls cuiA and cuiD, respectively. cuaR, and cudR appeared as negative regulators because the expression of cuiA-lac-Z and cuiD-lacZ were increased. Copper adapted UK1 showed high resistance to H$_{2}$O$_{2}$, but cuiD did not. The product of the cudR locus was responsible for decreasing the tolerance to copper and H$_{2}$O$_{2}$. Furthemore cuiA and cuiD locus were found to be part of a regulon under the control of a trans-acting regulators, rpoS, oxyR and relA. Therefore, the results suggest CTR participate with oxidative stress on Salmonella.
Ghim, Cheol-Min;Lee, Sung-Kuk;Takayama, Shuichi;Mitchell, Robert J.
BMB Reports
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v.43
no.7
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pp.451-460
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2010
Starting with the first publication of lacZ gene fusion in 1980, reporter genes have just entered their fourth decade. Initial studies relied on the simple fusion of a promoter or gene with a particular reporter gene of interest. Such constructs were then used to determine the promoter activity under specific conditions or within a given cell or organ. Although this protocol was, and still is, very effective, current research shows a paradigm shift has occurred in the use of reporter systems. With the advent of innovative cloning and synthetic biology techniques and microfluidic/nanodroplet systems, reporter genes and their proteins are now finding themselves used in increasingly intricate and novel applications. For example, researchers have used fluorescent proteins to study biofilm formation and discovered that microchannels develop within the biofilm. Furthermore, there has recently been a "fusion" of art and science; through the construction of genetic circuits and regulatory systems, researchers are using bacteria to "paint" pictures based upon external stimuli. As such, this review will discuss the past and current trends in reporter gene applications as well as some exciting potential applications and models that are being developed based upon these remarkable proteins.
Two apparent rho-independent transcription terminator structures within the coding sequence of aceK have been destroyed to access their roles in the differential expression between aceA and aceK in the glyoxylate bypass operon of E. coli. The effect of mutations on the expression of aceK was evaluated in two different ways: one by maxicell labeling and the other by lacZ fusion gene construction. The maxicell labeling experiment with the mutant operon clones has failed, like that of the wild type operon clone, to visibly show isocitrate dehrogenase (IDH) kinase/phosphatase, the product of aceK, on the autoradiogram of a protein gel. When the same mutations were introduced into an aceK::lacZ fusion gene to quantitatively evaluate the mutational effect, the activity of ${\beta}-galactosidase$ in neither of the mutant versions of the fusion gene was elevated significantly enough to explain the degree of polarity observed in this region. Thus, we conclude that neither of these intragenic, apparent rho-independent transcription terminator structures, which have long been suspected as a major determinant in the down regulation of aceK, really act as a premature transcriptional terminator.
GroEL is a typical molecular chaperone. GroEL synthesis patterns at various culture temperatures in Escherichia coli were investigated in this study. No significant differences in the amount of GroEL produced from the chromosome were found at 30 and 37$^{\circ}C$. However, GroEL production increased 3.4-fold at 42$^{\circ}C$. GroEL synthesis was not transient but continuous at 42$^{\circ}C$, although most heat shock gene expression is known to be transient. To understand the role of the groEL structural gene, a groE promoter-lacZ fusion was constructed. Interestingly , while transcriptional fusion is not thermally inducible, it is inducible by ethanol, suggesting that the secondary structure of the groEL transcript is involved in thermal regulation of the groEL gene. Secondary structures of groE mRNA at 37 and 42$^{\circ}C$ were compared using the computer program RNAdraw. Distinct structures at the two temperatures were found, and these structures may be related to a high level of GroEL expression at 42$^{\circ}C$.
A yeast chromosomal superkiller gene (SK13) was cloned and expressed in $ski3^{-}$ Saccharomyces cerevisiae strains. The gene was fused to the structural region of E. coli lacZ gene at its C-terminus in a yeast-E. coli shuttle vector, pSR605. The fused gene complemented $ski3^{-}$ strains with SK13 activity and the quantitative level of expression was measured as determined by assaying $\beta$-galactosidase activity. The SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and the Western blot analysis of this fused protein showed the immuno-reacted bands with a protein of the estimated molecular size (ca.250Kd).
Plasmid pSL4 of plasmid pKM 101 mutant have high protection effects and mutagenecity for UV and methyl methanesulfonate, The mucA gene and a pan of mucE gene of pKM 101 and pSL4 were sucloned onto lacZ' fusion vector pMC874 and the hybrid plasmids pBH31 and pBH30 were selected. These plsmids were intrduced into $recA^{+}lexA^{-}$, $recA^{-}와lexA^{+}$ strains and determined the activity of $\beta$-galactosidase for UV. In $recA^{+}lexA^{+}$ strain.$\beta$-galactosidase activity of pBH30 included mue region of pSL4 was higher thall pBH31 inclued muc region of pKM 10 I and the tf-galactosidase of two plasmids was not induced in reeA and leeA mutants with or without UV illumination. Without UV illumination. the .$\beta$-galactosidasc of pBH30 was expressed a little higher level than that of pBH3L We suggest that the functional difference of pKM 10l and pSL4 are due to the variety of mue regulatory region. Also. a plasmid pBH 100 earring umuC' -lacZ' gene fusion was constructed in vitro to study the regulation of the umu operon. It was shown that the umu operon is induced by UV and is regulated by the reeA and lexA genes.
Rho, Min-Suk;Su, Xuefeng;Lee, Yoon-Shik;Kim, Woo-Ho;Dowhan, William
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.1
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pp.84-91
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2006
A Saccharomyces cerevisiae pgs1 nulI mutant, which is deficient with phosphatidyl glycerol (PG) and cardiolipin (CL) biosynthesis, grows well on most fermentable carbon sources, but fails to grow on non-fermentable carbon sources such as glycerol, ethanol, and lactate. This mutant also cannot grow on galactose medium as the sole carbon source. We found that the incorporation of $[^{14}C]-galactose$, which is the first step of the galactose metabolic pathway (Leloir pathway), into the pgs 1 null mutant cell was extremely repressed. Exogenously expressed PGS1 (YCpPGS1) under indigenous promoter could completely restore the pgs1 growth defect on non-fermentable carbon sources, and dramatically recovered $[^{14}C]-galactose$ incorporation into the pgs1 mutant cell. However, PGS1 expression under the GALl promoter $(YEpP_{GAL1}-PGS1myc)$ could not complement pgs1 mutation, and the GAL2-lacZ fusion gene $(YEpP_{GAL2}-lacZ)$ also did not exhibit its $\beta-galactosidase$ activity in the pgs1 mutant. In wild-type yeast, antimycin $A(1\;{\mu}g/ml)$, which inhibits mitochondrial complex III, severely repressed not only the expression of the GAL2-lacZ fusion gene, but also uptake of $[^{14}C]-galactose$. However, exogenously expressed PGS1 partially relieved these inhibitory effects of antimycin A in both the pgs1 mutant and wild-type yeast, although it could not basically restore the growth defect on galactose by antimycin A. These results suggest that the PGSI gene product has an important role in utilization of galactose by Gal genes, and that intact mitochondrial function with PGS1 should be required for galactose incorporation into the Leloir pathway. The PGS1 gene might provide a clue to resolve the historic issue about the incapability of galactose with deteriorated mitochondrial function.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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