Acetylcholine receptors (AChR) including muscarinic and nicotinic AChR are widely expressed and mediate a variety of physiological cellular responses in neuronal and non-neuronal cells. Notably, a functional cholinergic system exists in oral epithelial cells, and nicotinic AChR (nAChR) mediates cholinergic anti-inflammatory responses. However, the pathophysiological roles of AChR in periodontitis are unclear. Here, we show that activation of AChR elicits increased cytosolic $Ca^{2+}([Ca^{2+}]_i)$, transient cytotoxicity, and induction of receptor activator of nuclear factor kappa-B ligand (RANKL) expression. Intracellular $Ca^{2+}$ mobilization in human gingival fibroblast-1 (hGF-1) cells was measured using the fluorescent $Ca^{2+}$ indicator, fura-2/AM. Cytotoxicity and induction of gene expression were evaluated by measuring the release of glucose-6-phosphate dehydrogenase and RT-PCR. Activation of AChR in hGF-1 cells by carbachol (Cch) induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in a dose-dependent manner. Treatment with a high concentration of Cch on hGF-1 cells caused transient cytotoxicity. Notably, treatment of hGF-1 cells with Cch resulted in upregulated RANKL expression. The findings may indicate potential roles of AChR in gingival fibroblast cells in bone remodeling.
Vibrio vulnificus cytolysin caused platelet cytolysis and increased intracellular calcium concentration $([Ca^{2+}]_i)$ of rat platelets in a concentration-dependent manner. In the presence of V. vulnificus cytolysin (3 HU/ml), lactate dehydrogenase (LDH) activity was increased from $1.3{\pm}0.4%$ of control to $64.3{\pm}3.4%$ in platelet suspension buffer. In $Ca^{2+}-free$ platelet suspension buffer, however, V. vulnificus cytolysin did not induce $[Ca^{2+}]_i$ increase and LDH release. Addition of EGTA (2 mM) to suspension buffer after the initial $Ca^{2+}$ influx reversed $[Ca^{2+}]_i$ to the control level. However, a $Ca^{2+}$ channel blocker verapamil $(20\;{\mu}M)$ or mefenamic acid $(20\;{\mu}M)$ did not inhibit V. vulnificus cytolysin-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase and LDH release. Divalent cations such as $Co^{2+},\;Cd^{2+}\;or\;Mn^{2+}$ (2 mM each) also did not alter V. vulnificus cytolysin-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase and LDH release. V. vulnificus cytolysin (3 HU/ml)-induced calcium influx was completely blocked by lanthanum (2 mM). Lanthanum (2 mM) also completely blocked V. vulnificus cytolysin (3 HU/ml)-induced LDH release. Osmotic protectants such as, raffinose, sucrose or PEG600 (50 mM each) did not inhibit the lytic activity of V. vulnificus cytolysin. In conclusion, lanthanum sensitive $Ca^{2+}$ influx plays a significant role in Vibrio vulnificus cytolysin-induced platelet cytolysis and thrombocytopenia in V. vulnificus infection.
Gap junction protein, connexin, is expressed in endothelial cells of vessels, glomerulus, and renin secreting cells of the kidney. The purpose of this study was to investigate the role of gap junction in renin secretion and its underlying mechanisms using As 4.1 cell line, a renin-expressing clonal cell line. Renin release was increased proportionately to incubation time. The specific gap junction inhibitor, 18-beta glycyrrhetinic acid (GA) increased renin release in dose-dependent and time-dependent manners. Heptanol and octanol, gap junction blockers, also increased renin release, which were less potent than GA. GA-stimulated renin release was attenuated by pretreatment of the cells with amiloride, nifedipine, ryanodine, and thapsigargin. GA dose-dependently increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration, which was attenuated by nifedipine, nimodipine, ryanodine, and thapsigargin. However, RP-cAMP, chelerythrine, tyrphostin A23, or phenylarsine oxide did not induced any significant change in GA-stimulated increase of intracellular $Ca^{2+}$ concentration. These results suggest that gap junction plays an important role on the regulation of renin release and intracellular $Ca^{2+}$ concentration in As 4.1 cells.
Apoptosis has been implicated in the pathophysiological mechanisms of various neurodegenerative diseases. In a variety of cell types, oxidative stress has been demonstrated to play an important role in the apoptotic cell death. However, the exact mechanism of oxidative stress-induced apoptosis in neuronal cells is not known. In this study, we induced oxidative stress in IMR-32 human neuroblastoma cells with tert- butylhydroperoxide (TBHP), which was confirmed by significantly reduced glutathione content and glutathione reductase activity, and increased glutathione peroxidase activity. TBHP induced decrease in cell viability and increase in DNA fragmentation, a hallmark of apoptosis, in a dose-dependent manner. TBHP also induced a sustained increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration, which was completely prevented either by EGTA, an extracellular $Ca^{2+}$ chelator or by flufenamic acid (FA), a non-selective cation channel (NSCC) blocker. These results indicate that the TBHP-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase may be due to $Ca^{2+}$ influx through the activation of NSCCs. In addition, treatment with either an intracellular $Ca^{2+}$ chelator (BAPTA/AM) or FA significantly suppressed the TBHP-induced apoptosis. Moreover, TBHP increased the expression of p53 gene but decreased c-myc gene expression. Taken together, these results suggest that the oxidative stress-induced apoptosis in neuronal cells may be mediated through the activation of intracellular $Ca^{2+}$ signals and altered expression of p53 and c-myc.
Park, J.S.;Lee, H.M.;Chung, Y.;Shin, D.C.;Roh, J.H.;Moon, Y.H.
Journal of Preventive Medicine and Public Health
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v.25
no.1
s.37
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pp.13-25
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1992
This study was conducted to investigate the mechanism of protective effect by sodium selenite in methylmercuric chloride neurotoxicity, increasing intracellular $Ca^{2+}$concentration of the neuron. Methylmercuric chloride of 3mg/kg of body weight was administered simultaneously with sodium selenite of 5mg/kg and pretreatment of sodium selenite via intraperitoneal injection to rats. Also, effect of methylmercuric chloride($25{\mu}M,\;50{\mu}M,\;100{\mu}M$) and sodium selenite($200{\mu}M$) on free intrasynaptosomal $Ca^{2+}$ concentration were studied using the fluorescent $Ca^{2+}$ indicator fura -2 in vitro. After the treatment, at 6, 24, and 48 hours later, mercury in the cerebral cortex, liver and kidney tissues, succlnic dehydrogenase activities, adenosin-5'-triphosphate concentration, acetylcholinesterase activities, and intracellular $Ca^{2+}$ concentration in the cerebral cortex were determined in vivo. Cerebral synaptosomes of rats were incubated with methylmercuric chloride and sodium selenite in Hepes buffer for 10 minutes and free intrasynaptosomal $Ca^{2+}$ concentration were measured with fura-2 in vitro. The results were summarized as follows ; 1. The combined administration of $CH_3HgCl$ and $Na_2SeO_3$ and pretreatment of $Na_2SeO_3$ according to time significantly more increased in the cerebral cortex and decreased in the liver, kidney mercury concentrations compared to the administration of $CH_3HgCl$ only. 2. The combined administration of $CH_3HgCl$ and $Na_2SeO_3$ and pretreatment of $Na_2SeO_3$ increased more succinic dehydrogenase and acetylcholinesterase activities compared to the administration of $CH_3HgCl$ only. Particularly pretreatment of $Na_2SeO_3$ significantly more compared to the administration of $CH_3HgCl$ only. The concentration of adenosine-5'-triphosphate in $Na_2SeO_3$ treatment groups revealed a favourable effect compared to the administration of $CH_3HgCl$ only. 3. Intracellular $Ca^{2+}$ concentration in administration of $CH_3HgCl$ only was increased significantly more than control group in all test hours but was increased significantly more at 48 hours only after treatment in combined administration of $CH_3HgCl$ and $Na_2SeO_3$ and pretreatment of $Na_2SeO_3$ according to time interval more decreased significantly intracellular $Ca^{2+}$ concentration compared to the administration of $CH_3HgCl$ only. 4. Free intrasynaptosomal $Ca^{2+}$ concentration in the combined administration of $CH_3HgCl$ and $Na_2SeO_3$ was decreased ($24%{\sim}40%$) significantly more than the administration of $CH_3HgCl$ only. From the above results, the specific dosage of $Na_2SeO_3$ decreased increment of intracellular $Ca^{2+}$ concentration induced by administration of $CH_3HgCl$. These findings suggest the protective mechanism of $Na_2SeO_3$ on the neurotoxicity of $CH_3HgCl$.
The effects of extremely low frequency electromagnetic fields (EMF) on intracellular $Ca^{2+}$ mobilization and cellular function in RBL 2H3 cells were investigated. Exposure to EMF (60 Hz, 0.1 or 1 mT) for 4 or 16 h did not produce any cytotoxic effects in RBL 2H3 cells. Melittin, ionomycin and thapsigargin each dose-dependently increased the intracellular $Ca^{2+}$ concentration. The increase of intracellular $Ca^{2+}$ induced by these three agents was not affected by exposure to EMF (60 Hz, 1 mT) for 4 or 16 h in RBL 2H3 cells. To investigate the effect of EMF on exocytosis, we measured beta-hexosaminidase release in RBL 2H3 cells. Basal release of beta-hexosaminidase was $12.3{\pm}2.3%$ in RBL 2H3 cells. Exposure to EMF (60 Hz, 0.1 or 1 mT) for 4 or 16 h did not affect the basal or $1{\mu}m$ melittin-induced beta-hexosaminidase release in RBL 2H3 cells. This study suggests that exposure to EMF (60 Hz, 0.1 or 1 mT), which is the limit of occupational exposure, has no influence on intracellular $Ca^{2+}$ mobilization and cellular function in RBL 2H3 cells.
The $Na^+-and\;K^+-induced\;Ca^{++}$ release was measured isotopically by millipore filter technique in pig heart mitochondria. With EGTA-quenching technique, the characteristics of mitochondrial $Ca^{++}-pool$ and the sources of $Ca^{++}$ released from mitochondria by $Na^+\;or\;K^+$ were analyzed. The mitochondrial $Ca^{++}-pool$ could be distinctly divided into two components: internal and external ones which were represented either by uptake through inner membrane, or by energy independent passive binding to external surface of mitochondria, respectively. In energized mitochondria, a large portion of $Ca^{++}$was transported into internal pool with little external binding, while in de-enerigzed state, a large portion of transported $Ca^{++}$ existed in the external pool with limited amount of $Ca^{++}$ in the internal pool which was possibly transported through the $Ca^{++}-carrier$ present in the inner membrane. $Na^+$ induced the $Ca^{++}$ release from both internal pool and external pool and external binding pool of mitochondria. In contrast, $K^+$ did not affect $Ca^{++}$ of the internal pool, but, displaced $Ca^{++}$ bound to external surface of the mitochondria. When the $Ca^{++}-reuptake$ was blocked by EGTA, the $Ca^{++}$ release from the internal pool by $Na^+$ was rapid; the rate of $Ca^{++}-efflux$ appeared to be a function of $[Na^+]^2$ and about 8mM $Na^+$ was required to elicit half-maximal velocity of $Ca^{++}-efflux$. So it was revealed that $Ca^{++}-efflux$ velocity was particulary sensitive to small changes of the $Na^+$ concentration in physiological range. Energy independent $Ca^{++}-binding$ sites of mitochondrial external surface showed unique characteristics. The total number of external $Ca^{++}-binding$ sites of pig heart mitochondria was 29 nmoles per mg protein and the dissociation constant(Kd) was $34{\mu}M$. The $Ca^{++}-binding$ to the external sites seemed to be competitively inhibited by $Na^+\;and\;K^+$; the inhibition constant(Ki) were 9.7 mM and 7.1 mM respectively. Considering the intracellular ion concentrations and large proportion of $Ca^{++}$ uptake in energized mitochondria, the external $Ca^{++}-binding$ pool of the mitochondria did not seem to play a significant role on the regulation of intracellular free $Ca^{++}$ concentration. From this experiment, it was suggested that a small change of intracellular free $Na^+$ concentration might play a role on regulation of free $Ca^{++}$ concentration in cardiac cell by influencing $Ca^{++}-efflux$ from the internal pool of mitochondria.
Kim, Dong-Hwa;Kim, Young-Jick;Shin, Ji-Won;Shin, Jung-Woog
Proceedings of the KSME Conference
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2008.11a
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pp.1580-1581
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2008
We investigated the effects of intermittent hydrostatic pressure with various duration of resting period on changes in calcium ($Ca^{2+}$) concentration and adhesive forces of cells on substrates. The quantitive adhesive forces of cells were measured under various resting periods. When the pressure applied to the cells, the concentration of $Ca^{2+}$ increased. Under intermittent hydrostatic pressure, the concentration of $Ca^{2+}$ was maintained under a resting period of 15 min, while it was not decreased with other resting periods of less than 15 min. With a resting period of 15 min, the magnitudes of adhesive forces were significantly increase. In addition, the adhesive forces were measured with and without $Ca^{2+}$ chelating agents to evaluate the effect of $Ca^{2+}$ on cell adhesiveness. When $Ca^{2+}$ ions were chelated, the adhesive forces dramatically decreased, even under intermittent hydrostatic pressure. We conclude that $Ca^{2+}$ plays an crucial role in modulating the adhesive forces of cells, and that the concentration of $Ca^{2+}$ can be increased by intermittent hydrostatic stimuli.
Infection of fish cells with IHNV resulted in gradual increase in cytosolic free $Ca^{2+}$ concentration $([Ca^{2+}]_i)$ in CHSE, gradual decrease in $[Ca^{2+}]_i$ in FHM, and no significant change in RTG cells. The degree of $[Ca^{2+}]_i$ increase or decrease was dependent on the amount of infectious virus, and these $[Ca^{2+}]_i$ variations were maximal at 16 hours after virus infection (p. i.) in both cell lines. When the fish cells were infected with inactivated IHNV, evident variation in $[Ca^{2+}]_i$ was not observed. Thus, infectivity of IHNV appears to correlate with changes in $[Ca^{2+}]_i$ in virus-infected cells. These IHNV-induced $[Ca^{2+}]_i$ changes were partially blocked by cycloheximide, but not affected by cordycepin. It seems to be that virus-induced $Ca^{2+}$ variations were more related with protein synthesis than RNA synthesis. Various $Ca^{2+}$ related drugs were used in search for the mechanisms of the $[Ca^{2+}]_i$, changes following IHNV infection of CHSE cells. Decreasing extracellular $Ca^{2+}$ concentration or blocking $Ca^{2+}$ influx from extracellular media inhibited the IHNV-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$, in CHSE cells. Similar results were obtained with intracellular $Ca^{2+}$ blockers. Thus it is suggested that both the extracellular and the intracellular $Ca^{2+}$ sources are important in IHNV-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in CHSE cells.
In the present study, it was aimed to further indentify the intracellular action mechansm of cromakalim and levcromakalim in the porcine coronary artery. In intact porcine coronary arterial strips loaded with fura-2/AM, acetylcholine caused an increase in intracellular free $Ca^{2+}$$([Ca^{2+}]_i)$ in association with a contraction in a concentration-dependent manner. Cromakalim (1 ${\mu}M$) caused a reduction in acetylcholine-induced increased $[Ca^{2+}]_i$ not only in the mormal physiological salt solution (PSS) but also in $Ca^{2+}$-free PSS (containing 1 mM EGTA). In the skinned strips prepared by exposure of tissue to 20 .${\mu}M$ B-escin, inositol 1,4,5-trisphosphate ($IP_3$) evoked an increase in $[Ca^{2+}]_i$, but it was without effect on the intact strips. The $IP_3$-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$ was inhibited by cromakalim by 78% and levcromakalim by 59% (1 .${\mu}M$, each). Pretreatment with glibenclamide (a blocker of ATP-sensitive $K^+$ channels, 10 .${\mu}M$) and apamin (a blocker of small conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channels, 1 .${\mu}M$) strongly blocked the effect of cromakalim and levcromakalim. However, charybdotoxin (a blocker of large conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channels, 1 .${\mu}M$) was without effect. In addition, cromakalim inhibited the $GTP{\gamma}S$ (100 .${\mu}M$, non-hydrolysable analogue of GTP)-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$. Based on these results, it is suggested that cromakalim and levcromakalim exert a potent vasorelaxation, in part, by acting on the $K^+$ channels of the intracellular sites (e.g., sarcoplasmic reticulum membrane), thereby, resulting in decrease in release of $Ca^{2+}$ from the intracellular storage site.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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