Insulin, transferrin and selenium (ITS) complex is reported to improve in vitro development of oocytes and embryos. This study was carried out to investigate the effects of ITS during in vitro culture (IVC) of porcine parthenogenetic and nuclear transfer (NT) embryos on subsequent developmental capacity in vitro. The electrically activated oocytes were cultured in Porcine Zygote Medium (PZM-3) with various concentrations (0, 0.1, 0.5, and 1.0%) of ITS for 7 days. Also, the electrically activated reconstructed embryos were cultured in PZM-3 with various concentrations (0, 0.1, 0.5, and 1.0%) of ITS for 6 days. Addition of ITS to culture medium did not affect development of porcine parthenogenetic embryos in vitro. To test the effect of ITS on the in vitro development of porcine NT embryos, factorial experiments were also performed for in vitro maturation (IVM) medium (TCM-199) with or without 1% ITS and culture medium (PZM-3) with or without 0.5% ITS. Addition of 0.5% ITS to culture medium increased (p<0.05) the proportion of NT blastocysts compared with non-treated group. In contrast, addition of 1% ITS to culture medium was ineffective or had a detrimental effect. Also, addition of ITS only to maturation medium increased (p<0.05) the percentage of NT blastocysts formation compared with the control group. In conclusion, addition of ITS to IVM or IVC medium could improve subsequent blastocyst development of porcine NT embryos.
Gustafsson, H.;Larsson, B.;Shamsuddin, M.;Jaakma, U.;Emanuelson, U.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제14권1호
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pp.7-12
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2001
Factors Affecting the Survival of Frozen Thawed Bovine In Vitro Produced Blastocysts. The effect of some factors on the post-thaw survival of a total of 240 in vitro produced bovine blastocysts was investigated using logistic regression analysis. The explanatory variables tested were: type of culture medium before freezing (TCM 199 supplemented with BSA, BSAITS (BSA+insulin+transferrin+selenium), ECS (estrous cow serum) with or without BOEC (bovine oviductal epithelial cells), age of the blastocyst (Day 7, Day 8+9), morphological appearance before freezing (distinct=Q1 or indistinct=Q2 inner cell mass) and type of cryoprotectant (glycerol, 1.0 M or ethylene glycol, 1.6 M). The survival after thawing based on the post-thaw quality and the development after co-culture with BOEC for 24 and 48 hours. Day 7 blastocysts had an almost three times better chance of survival than Day 8+9 blastocysts. Q1, Day 8+9 blastocysts had higher odds to survive after 48 hours in culture than Q2 blastocysts (p<0.05). Blastocysts produced in BSAITS medium had the best chances of survival; however, the odds were not always significant. Blastocysts frozen in glycerol had a better post-thaw quality rating than those frozen in ethylene glycol; however, the difference in post-thaw development at culture was not significant. The relationship between post-thaw quality and post-thaw development at culture was significant (p<0.05). The developmental stage and/or age of the embryo and culture medium where development up to blastocyst takes place affect the post-thaw survival of the bovine embryos.
최근 단일클론항체의 상업적 이응가치가 증대하면서 그 수요량 또한 급격히 증가, 이를 뒷받침할 수 있는 대량생산 기술이 요구되고 있다. 본 연구에서는 쥐 하이브리도마 Alps 25-3의 대량배양을 위해 우선적으로 무혈청 배지 (serum-free media)의 개발을 시도하였다. 동물세포 배양액 IMDM과 Ham's F-12를 1:1로 혼합한 배지를 기본으로하여 ITES 용액 (insulin 10$\mu\textrm{g}$/$m\ell$, transferrin 10$\mu\textrm{g}$/$m\ell$, ethanolamine 10$\mu$M and selenium 30nM)을 첨 가하여 일차적으로 결정한 EBM(enriched basal medium)에 steroid hormones, vltamins, lipid, mineral 및 여러성분들을 각각 첨가하여 혈청과 대치될 수 있는 성분들의 최적농도를 조사하였다. 각 성분들의 개별효과와 함께 그들을 혼합하였을 때의 상호효과를 통해 혈청배지와 거의 동일한 성장을 보이는 무혈청배지 KM3(EBM with BSA 100$\mu\textrm{g}$/$m\ell$, mineral solution and 0.05% PEG)를 결정할 수 있었으며 이 배지에서의 최고 항체 생성량은 혈청배지의 약 80% 로 나타났다. 또한 무혈청 배지에서 여러 cell line의 성장과 그들의 항체 생성을 조사함으로써 다른 쥐 하이브리도마 세포배양에도 적응시킬 수 있음을 확인할 수 있었다.
적정 배양액의 선정, ITS의 첨가와 BSA의 농도조절 및 NaCl 농도의 조절을 통해 소 수정란의 무혈청, 체세포배제 배양체계를 확립하기 위하여 수행한 실험에서 다음과 같은 결론을 얻었다. 1. 배양액으로 CRlaa, TALP 및 SOF를 사용하여 발육률을 검토한 결과, 발육률의 유의적인 차이는 나타나지 않았다. 2. 배양액내의 고분자물질원으로 BSA, FBS 및 PVA를 첨가하여 사용한 결과 BSA 및 FBS 첨가군이 PVA 첨가군보다 유의적으로 높은 발육률을 나타내었다(p〈0.01). 3. 배양액내의 BSA 농도를 달리 하면서(1, 3, 8 mg/ml) 1% ITS를 첨가하여 실험한 결과 BSA의 농도가 증가할수록 후기배로의 발육률이 높았으며 모든 군에서 ITS 첨가군이 후기배로의 발육률이 높았으나 BSA가 1 mg/ml로 첨가된 군에서만 ITS 첨가에 따른 유의적인 차이가 인정되었다(p〈0.05). 4. 배양액내의 N3Cl 농도를 114 mM과 90 mM 로 나누어 소 수정란을 배양한 결과 90 mM 군의 후기배로의 발육률이 114 mM 군에 비해 유의적으로 높게 나타났다(p〈0.05).
Although the sera used in animal cell culture media provide the macromolecules, nutrients, hormones, and growth factors necessary to support cell growth, it could also be an obstacle to the production of recombinant proteins in animal cell culture systems used in many sectors of the biotechnology industry. For this reason, many research groups, including our laboratory, have been trying to develop serum-free media (SFM) or serum-supplemented media (SSM) for special or multi-purpose cell lines. The Chinese hamster ovary (CHO) cell, for example, is frequently used to produce proteins and is especially valuable in the large-scale production of pharmaceutically important proteins, yet information about its genome is lacking. Also, SFMs have only been evaluated by comparing growth patterns for cells grown in SFMs with those grown in SSM or by measuring the titer of the target protein obtained from cells grown in each type of medium. These are not reliable methods of obtaining the type of information needed to determine whether an SFM should be replaced with an SSM. We carried out a cDNA microarray analysis to evaluate MED-3, an SFM developed in our laboratory, as a CHO culture medium When CHO cells were cultured in MED-3 instead of an SSM, several genes associated with cell growth were down-regulated, although this change diminished over time. We found that the insulin-like growth factor (IGF) gene was representative of the proteins that were down-regulated in cells cultured in MED-3. When several key supplements - including insulin, transferrin, ethanolamine, and selenium - were removed from MED-3, the IGF expression was consistently down- regulated and cell growth decreased proportionately. Based on these results, we concluded that when an SFM is used as a culture medium, it is important to supplement it with substances that can help the cells maintain a high level of IGF expression. The data presented in this study, therefore, might provide useful information for the design and development of SFM or SSM, as well as for the design of genome-based studies of CHO cells to determine how they can be used optimally for protein production in pharmaceutical and biomedical research.
Differential capacity of the parthenogenetic embryonic stem cells (PESCs) is still under controversy and the mechanisms of its neural induction are yet poorly understood. Here we demonstrated neural lineage induction of PESCs by addition of insulin-like growth factor-2 (Igf2), which is an important factor for embryo organ development and a paternally expressed imprinting gene. Murine PESCs were aggregated to embryoid bodies (EBs) by suspension culture under the leukemia inhibitory factor-free condition for 4 days. To test the effect of exogenous Igf2, 30 ng/ml of Igf2 was supplemented to EBs induction medium. Then neural induction was carried out with serum-free medium containing insulin, transferrin, selenium, and fibronectin complex (ITSFn) for 12 days. Normal murine embryonic stem cells derived from fertilized embryos (ESCs) were used as the control group. Neural potential of differentiated PESCs and ESCs were analyzed by immunofluorescent labeling and real-time PCR assay (Nestin, neural progenitor marker; Tuj1, neuronal cell marker; GFAP, glial cell marker). The differentiated cells from both ESC and PESC showed heterogeneous population of Nestin, Tuj1, and GFAP positive cells. In terms of the level of gene expression, PESC showed 4 times higher level of GFAP expression than ESCs. After exposure to Igf2, the expression level of GFAP decreased both in derivatives of PESCs and ESCs. Interestingly, the expression level of $Tuj1$ increased only in ESCs, not in PESCs. The results show that IGF2 is a positive effector for suppressing over-expressed glial differentiation during neural induction of PESCs and for promoting neuronal differentiation of ESCs, while exogenous Igf2 could not accelerate the neuronal differentiation of PESCs. Although exogenous Igf2 promotes neuronal differentiation of normal ESCs, expression of endogenous $Igf2$ may be critical for initiating neuronal differentiation of pluripotent stem cells. The findings may contribute to understanding of the relationship between imprinting mechanism and neural differentiation and its application to neural tissue repair in the future.
The objective of this study was to compare of different isolation method of mouse preantral follicles, and to examine in vitro development of mouse preantral follicles isolated by different method. Preantral follicles were mechanically or enzymatically extracted from mouse ovaries. Mechanical isolation method used fine gauge needles and enzymatic method of isolating follicles used collagenase. The recovered preantral follicles were cultured for 10 days in alpha-minimal essential medium (${\alpha}$-MEM) + 5% FBS + Insulin-Transferrin-Selenium (ITS) + 100 mIU/ml FSH. The collected primary follicles by enzymatic treatment were higher than mechanical method. Others stage preantral follicle by mechanical isolation were higher than enzymatic method. After 10 days of culture, no statistical differences were shown in survival rates of preantral follicle among the 2 culture groups. The metaphase II rates of the oocytes were significantly higher (p<0.05) in mechanical method (17.8%) than in enzymatic method (5.1%). These results suggest that the isolation method of choice depends on the target stage preantral follicles and mechanical isolation is an optimal method of preantral folliclesin a culture of mouse preantral follicle.
Lysophosphatidic acid (LPA; 1-acyl-glycerol-3-phosphate) has been known as an intercellular phospholipid messenger with a wide range of biological activities. In this study, the effect of LPA on both the proliferation and differentiation of rat E63 myoblasts has been investigated. In the serum-free Insulin-Transferrin-Selenium (ITS) media, the proliferation of E63 cells was largely restricted. Addition of LPA into the ITS media strongly promoted the cell proliferation and resulted in two to four fold increase of cell number. Furthermore, it appeared to increase the percent fusion in a dose-dependent manner up to 15 ug/ml. The synthesis of myosin heavy chain (MHC) was increased by LPA as well. These results indicate that LPA is able to promote both cell proliferation and differentiation in rat E63 myoblasts. Suramin, known to have uncoupling activity on growth factor-receptor interaction, was tested for antagonistic activity in myoblast proliferation and differentiation. Myoblasts grown in the ITS medium containing LPA were able to proliferate well even in the presence high concentration of suramin whereas myoblast differentiation was completely blocked by 30 ug/ml of suramin. The inhibitory effect of suramin on the myoblast differentiation was completely reversible by removing the suramin. This result indicates that the intracellular signaling pathway of LPA leading to cell proliferation might be distinct from that leading to cell differentiation on E63 myoblasts. Also, the antagonistic effect of suramin suggests that the differentiation activity elicited by LPA might be mediated by a specific G protein-coupled receptor.
간질환 환자의 대부분은 간 조직 손상으로 인해 간세포의 재생 능력이 감소한다. 간세포 이식은 이러한 간질환을 치료하는데 있어 혁신적인 방법으로 대두되고 있으나, 여전히 많은 의문과 문제점이 제기되고 있다. 사람의 양막으로부터 얻은 줄기 세포를 이용하여 간세포 분화를 위한 최적의 조건을 알아 보고자 하였다. 세포내 알부민에 대한 면역 화학적 방법, 세포내 글리코겐의 특이 염색법, 세포의 형태적 변화 연구 방법 등을 이용하여 여러가지 배양 조건을 조사한 결과, 배양 접시를 fibronectin으로 coating하고 배양액내에 insulin/transferrin/selenium(ITS)을 첨가하는 것이 양막 줄기세포의 간세포로의 분화에 효과적이었다. 또한 배양액내에 fibroblast growth factor(FGF)-1과 FGF-2를 함께 첨가하는 것이 둘 중 하나만 첨가하거나 첨가하지 않는 것보다 효과적이었다. 한편 분화 배양은 한가지 배양액을 사용한 지속적인 배양법(continuous culture method)보다 배양 조건을 달리하여 두 단계로 배양하는 2단계 배양법(two-step culture method)가 훨씬 효과적이었다. 마지막으로, 기본 배양액에 FGF-2와 FGF-4를 첨가한 조건과 FGF-4와 $TGF-{\alpha}$를 첨가한 조건이 다른 조건 보다 알부민 분비를 많이 하는 것으로 보아 FGF-4가 간세포 분화 과정에 중요한 역할을 하는 것으로 여겨지며 FGF-2 및 $TGF-{\alpha}$ 첨가는 더욱 효과적인 배양 조건으로 관찰되었다. 따라서, 양막에서 유래한 성체 줄기 세포는 적절한 배양 조건이 주어질 때, 간세포로 분화가 가능하며, 분화 과정에서 FGF-4가 주도적인 역할을 하며 FGF-2와 $TGF-{\alpha}$는 상승 효과를 갖는 것으로 사료된다.
Kim, Chung-Hoon;Cheon, Yong-Pil;Lee, You-Jeong;Lee, Kyung-Hee;Kim, Sung-Hoon;Chae, Hee-Dong;Kang, Byung-Moon
한국발생생물학회지:발생과생식
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제17권3호
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pp.269-274
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2013
This study was performed to evaluate the effects of fibroblast co-culture on in vitro maturation (IVM) of prepubertal mouse preantral follicles. The intact preantral follicles were obtained from the ovaries of 12-14 day old mice and these were cultured individually in ${\alpha}$-minimal essential medium (${\alpha}$-MEM) supplemented with 5% fetal bovine serum (FBS), $100mIU/m{\ell}$ recombinant follicle stimulating hormone (rFSH), 1% insulin-transferrin-selenium, $100{\mu}g/ml$ penicillin and $50{\mu}g/m{\ell}$ streptomycin as base medium for 12 days. A total of 200 follicles were cultured in base medium co-cultured with mouse embryonic fibroblast (MEF) (MEF group) (n=100) or only base medium as control group (n=100). Survival rate of follicles on day 12 of culture were significantly higher in the MEF group of 90.0%, compared with 77.0% of the control group (p=0.021). Follicle diameters on day 6 and 8 of the culture period were significantly larger in the MEF group than those in the control group (p=0.021, p=0.007, respectively). Estradiol levels in culture media on day 4, 6, 8, 10 and 12 of the culture period were significantly higher in the MEF group (p=0.043, p=0.021, p=0.006, p<0.001 and p=0.008, retrospectively). Our data suggest that MEF cell co-culture on IVM of mouse preantral follicle increases survival rate and promotes follicular growth and steroid production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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