Background: The purpose of this study was to analyze the relationship between the gene mutation patterns by the GenoType MTBDRplus (MTBDRplus) assay and the phenotypic drug susceptibility test (pDST) results of isoniazid (INH) and prothionamide (Pto). Methods: A total of 206 patients whose MTBDRplus assay results revealed katG or inhA mutations were enrolled in the study. The pDST results were compared to mutation patterns on the MTBDRplus assay. Results: The katG and inhA mutations were identified in 68.0% and 35.0% of patients, respectively. Among the 134 isolated katG mutations, three (2.2%), 127 (94.8%) and 11 (8.2%) were phenotypically resistant to low-level INH, high-level INH, and Pto, respectively. Among the 66 isolated inhA mutations, 34 (51.5%), 18 (27.3%) and 21 (31.8%) were phenotypically resistant to low-level INH, high-level INH, and Pto, respectively. Of the 34 phenotypic Pto resistant isolates, 21 (61.8%), 11 (32.4%), and two (5.9%) had inhA, katG, and both gene mutations. Conclusion: It is noted that Pto may still be selected as one of the appropriate multidrug-resistant tuberculosis regimen, although inhA mutation is detected by the MTBDRplus assay until pDST confirms a Pto resistance. The reporting of detailed mutation patterns of the MTBDRplus assay may be important for clinical practice, rather than simply presenting resistance or susceptibility test results.
Resistance to isoniazid (INH), which is one of the most important drugs in Mycobacterium tuberculosis chemotherapy, has been associated with mutations in genes encoding the mycobacterial catalse-peroxidase (katG), the enoyl acyl carrier protein (ACP) reductase (inhA), alkyl hydroperoxide reductase (ahpC), beta-ketoacyl acyl carrier protein synthase (kasA), and NADH dehydrogenase (ndh). In this study, we examined INH-resistance related genes in 50 INH-resistant and 24 INH-susceptible isolates by PCR-sequence analysis. In brief, mutations at the katG gene were found at codon 315 alone (2/50), at codon 463 alone (19/50), and both at 315 and 463 (29/50). However, while mutations at codon 315 were only detected in INH-resistant isolates, mutations at codon 463 were also detected in INH-susceptible isolates indicating mutations at 463 alone do not seem to confer resistance to INH. Similar to the case of katG 463, some of inhA mutations were also found among INH-susceptible isolates. For example, whereas mutations at 8 upstream of the start codon (UPS) and 15 UPS of the inhA gene were detected only in INH-resistant isolates, mutations at 101, 115, and 125 UPS were detected only in INH-susceptible isolates. Many different kinds of mutations were detected in INHresistant isolates at ahpC, oxyR gene, and intergenic region of the oxyR-ahpC genes. Howerver, the mutations were not found oxyR and the intergenic regions in INH-susceptible isolates. No mutations were found at either kasA or at ndh gene among INH-resistant isolates. In conclusion, some of mutations such as katG 315, inhA promotor region, and oxyR-ahpC seem to be strongly related to INH-resistance. Currently we are developing a molecular diagnostic method based on these results.
Park, Tae-Jung;Choi, Soo-Keun;Jung, Heung-Chae;Lee, Sang-Yup;Pan, Jae-Gu
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.5
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pp.495-501
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2009
A new spore display method is presented that enables recombinant proteins to be displayed on the surface of Bacillus spores via fusion with InhA, an exosporium component of Bacillus thuringiensis. The green fluorescent protein and $\beta$-galactosidase as model proteins were fused to the C-terminal region of InhA, respectively. The surface expression of the proteins on the spores was confirmed by flow cytometry, confocal laser scanning microscopy, measurement of the enzyme activity, and an immunogold electron microscopy analysis. InhA-mediated anchoring of foreign proteins in the exosporium of Bacillus spores can provide a new method of microbial display, thereby broadening the potential for novel applications of microbial display.
A strain producing a potent protease was isolated from turban shell. The strain was identified as Bacillus sp. S17110 based on phylogenetic analysis. The enzyme was purified from culture supernatant of Bacillus sp. S17110 to homogeneity by ammonium sulfate precipitation, SP-Sepharose, and DEAE-Sepharose anion exchange chromatography. Protease activity of the purified protein against casein was found to be stable at pH 7 to pH 10 and around $50^{\circ}C$. Approximately 70% of proteolytic activity of the enzyme was detected either in the presence of 100 mM SDS or Tween 20. The enzyme activity was enhanced in the presence of $Ca^{2+},\;Zn^{2+},\;Mg^{2+}$, but was inhibited by EDTA, indicating that it requires metal for its activity. The purified enzyme was found to be a monomeric protein with a molecular mass of 75 kDa, as estimated by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and gel filtration chromatography. The purified enzyme was analyzed through peptide fingerprint mass spectra generated from matrix-assisted laser desorption ionization-time-of-flight-mass spectrometry (MALDI-TOF-MS) and a BLAST search, and identified as immune inhibitor A (inhA) deduced from nucleotide sequence of B. cereus G9241. Since InhA was identified as protease that cleave antibacterial proteins found in insect, inhA-like protease purified from Bacillus sp. S17110 might be pathogenic to sea invertebrates.
Anthrax is the deadly disease for human being caused by Bacillus anthracis. Instantaneous research work on the mode of infection of the organism revealed that different proteases are involved in different steps of pathogenesis. Present study reports the in silico characterization and the detection of pathogenic proteases involved in anthrax infection through protein-protein interaction. A total of 13 acid, 9 neutral, and 1 alkaline protease of Bacillus anthracis were selected for analysing the physicochemical parameter, the protein superfamily and family search, multiple sequence alignment, phylogenetic tree construction, protein-protein interactions and motif finding. Among the 13 acid proteases, 10 were found as extracellular enzymes that interact with immune inhibitor A (InhA) and help the organism to cross the blood brain barrier during the process of infection. Multiple sequence alignment of above acid proteases revealed the position 368, 489, and 498-contained 100% conserved amino acids which could be used to deactivate the protease. Among the groups analyzed, only acid protease were found to interact with InhA, which indicated that metalloproteases of acid protease group have the capability to develop pathogenesis during B. anthracis infection. Deactivation of conserved amino acid position of germination protease can stop the sporulation and germination of B anthracis cell. The detailed interaction study of neutral and alkaline proteases could also be helpful to design the interaction network for the better understanding of anthrax disease.
The major urinary proteins(MUPs) of mice that bind hydrophobic molecules known as pheromones are regulated in part by the actions of growth hormone. The expression of the MUPs was therefore investigated in transgenic mice that express a human growth hormone-releasing factor gene from a metallothionein gene promoter(MT-GRF) and as a result have elevated growth hormone levels. MUPs were severely down-regulated in the urine of these animals compared to normal mice or to control transgenic mice expressing another gene(the inhibin a subunit) from the same metallothionein promoter(MT-Inh) and more MUPs disappeared in male mice than female ones. MUPs were also down-regulated in the urine of the UT-GRF-injected mice. In addition, it was observed that the urine of the MT-GRF mice included a high molecular weight protein that co-migrates with the major serum protein albumin, indicating an impairment in glomerular filtration within the kidney. The urinary loss of serum proteins was more severe in male MT-GRF mice than female ones. Thus the overexpression of human GRF mimics changes observed in MUP protein expression and glomerular function in other models of growth hormone hypersecretion with sex-dependent differential effects.
Lee, Jung Mi;Kim, Jin Sook;Kim, Young Kyoon;Kim, Seung Joon;Lee, Sook Young;Kwon, Soon Seog;Park, Sung Hak
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.58
no.4
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pp.375-384
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2005
Background and Aims : Pre-induction of heat shock protein 70 (HSP70) is known to effectively attenuate the lipopolysaccharide (LPS)-induced inflammatory response in lung tissue. However, it is unclear if HSP70 induction after LPS exposure attenuates the subsequent LPS-induced inflammatory response in alveolar epithelial cells. This study examined the effects of HSP70 induction after LPS exposure on the IL-6 production and the cell viability after a subsequent LPS challenge in murine alveolar epithelial cells, and investigated whether or not HSP70 itself may be involved in those effects. Methods : Murine alveolar epithelial cells were cultured and divided into two groups; the Non-Pre-LPS group without a LPS pre-treatment and the Pre-LPS group with a LPS pre-treatment. Each group was subdivided into the following four subgroups: subgroup C (control), subgroup Q (quercetin), subgroup HSP70 (HSP70 induction), and subgroup HSP70-Inh (HSP70 inhibition). HSP70 expression, which was induced by sodium arsenite and inhibited by quercetin, was analyzed by western blot analysis. The IL-6 levels in the culture supernatant were measured by ELISA, and the cell viability was measured using a simplified MTT assay. Results : The IL-6 levels were lower in subgroup HSP70 than in subgroup C (P<0.01), and were higher in subgroup HSP70-Inh than in subgroup HSP70 in both the Non-Pre-LPS and Pre-LPS groups (P<0.05, P<0.01). The cell viability tended to decrease in the Pre-LPS group compared with the Non-Pre-LPS group. While the cell viability was higher in subgroups Q, HSP70, and HSP70-Inh than in subgroup C in the Non-Pre-LPS group (P<0.05, P<0.05, P<0.01), there was no difference in cell viability among the subgroups in the Pre-LPS group. Conclusion : HSP70 induction after a LPS pre-treatment in murine alveolar epithelial cells inhibits the subsequent LPS-induced IL-6 production without affecting the cell viability, and HSP70 by itself may play an important role in this proccess.
In the continued search for inhibitors of enoyl-acyl carrier protein (ACP) reductase, we found that four acylbenzenediol sulfate metabolites from Streptomyces sp. AN1761 potently inhibited bacterial enoyl-ACP reductases of Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae, and Mycobacterium tuberculosis. Their structures were identified as panosialins A, B, wA, and wB by MS and NMR data. They showed stronger inhibition against S. aureus FabI and S. pneumoniae FabK with $IC_{50}$ of 3-5 ${\mu}M$ than M. tuberculosis InhA with $IC_{50}$ of 9-12 ${\mu}M$. They also exhibited a stronger antibacterial spectrum on S. aureus and S. pneumoniae than M. tuberculosis. In addition, the higher inhibitory activity of panosialin wB than panosialin B on fatty acid biosynthesis was consistent with that on bacterial growth, suggesting that they could exert their antibacterial activity by inhibiting fatty acid synthesis.
Serratia proteamaculans HY-3 isolated from the digestive tract of a spider produces an extracellular protease named arazyme, with an estimated molecular mass of 51.5 kDa. The purified enzyme was characterized as having high activities at wide pH and temperature ranges. We further characterized biochemical features of the enzymatic reactions under various reaction conditions. The protease efficiently hydrolyzed a broad range of protein substrates including albumin, keratin, and collagen. The dependence of enzymatic activities on the presence of metal ions such as calcium and zinc indicated that the enzyme is a metalloprotease, together with the previous observation that the proteolytic activity of the enzyme was not inhibited by aspartate, cysteine, or serine protease inhibitors, but strongly inhibited by 1,10-phenanthroline and EDTA. The araA gene encoding the exoprotease was isolated as a 5.6 kb BamHI fragment after PCR amplification using degenerate primers and subsequent Southern hybridization. The nucleotide sequence revealed that the deduced amino acid sequences shared extensive similarity with those of the serralysin family of metalloproteases from other enteric bacteria. A gene(inh) encoding a putative protease inhibitor was also identified immediately adjacent to the araA structural gene.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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