Objective: Laser-assisted intracytoplasmic sperm injection (LA-ICSI), also known as micro-opening or thinning of the zona pellucida (ZP) prior to ICSI, may help to reduce mechanical damage to the oocyte during the procedure. The aim of the present study was to evaluate and analyze the efficacy of our institutional LA-ICSI program, which features laser-assisted ZP thinning prior to ICSI, in comparison with conventional ICSI (C-ICSI), performed on patients with different clinical characteristics. Methods: Patients undergoing a total of 212 ICSI cycles were randomly divided into an LA-ICSI group (106 cycles) and a conventional ICSI group (106 cycles). To reduce tissue damage, we thinned the ZP by approximately 70%, using a laser, before ICSI. Patients thus treated formed the LAICSI group. Comparisons included the morphological quality of transferred embryos, blastocyst development of the remaining embryos, and clinical pregnancy, in terms of ICSI method and patient characteristics. Results: Fertilization, development of remaining embryos, and pregnancy rate were significantly higher in the LA-ICSI group compared with the C-ICSI group. Fertilization, embryonic development, and the pregnancy rate were all improved in younger patients (<38 years of age) and in those who underwent a low number of IVF-ET attempts (<3 trials). In addition, the pregnancy rate was increased in older patients. Conclusion: LA-ICSI may be useful in improving the chance of pregnancy in all ICSI patients.
This study was carried out to investigate on the improvement of fertilizing ability of in vitro matured oocytes from sperm density and motility by intracytoplasmic sperm injection(ICSI) into the porcine oocytes. 1. The in vitro fertilization and cleavage rates of oocytes from 1.0, 2.0, 3.0, 5.0 ($\times$10$^{6}$$m\ell$) sperm concentration by IVF and ICSI of porcine oocytes were 46.7%~75.0%, 60.0%~85.7% and 10.6%~25.0%, 20.0%~64.3%, respectively. 2. The in vitro fertilization and cleavage rates of oocytes from 20, 40, 60, 80% of sperm mortilty by IVF and ICSI of porcine oocytes were 46.4%~71.4%, 67.9%~85.7% and 7.1%~21.4%, 28.6%~60.7%, respectively. 3. The in vitro fertilization and developmental rates of oocytes by IVF and ICSI methods were 55.6%~60.0%, 77.8%~80.0% and 17.8%~24.0%, 42.2%~56.0%, respectively. This ICSI method was improved high fertilization rates of porcine oocytes.
Kim, Se-Woong;Kang, Ho-In;Sung, Ji-Hye;Roh, Sang-Ho
Journal of Embryo Transfer
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v.25
no.2
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pp.97-101
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2010
Intracytoplasmic sperm injection (ICSI) is one of the artificial fertilization methods when only a few sperm are available for insemination, and an important tool for the preservation of genetic materials of endangered animal species, especially the male is infertile. Different from other species such as mice and pigs, the conventional ICSI method which uses spiked pipette for injection (Spike-ICSI) is exhibited low success rates in cattle because the bovinesperm head membrane is hard to break during injection procedure. We chose piezo-assisted ICSI (Piezo-ICSI) for the improvement of the injection procedure including sperm head membrane rupture and efficient puncture of the plasma membrane of the oocytes. In this experiment, we compared the efficacy of the bovine ICSI embryo production between the Piezo-ICSI and Spike-ICSI. The second polar body extrusion, pronuclear formation, cleavage and blastocyst formation were evaluated after implementation of two different ICSI techniques. The Piezo-ICSI tended to show comparably higher rates of the second polar body extrusion (41.7%), the pronuclei formation (42.9%) and the two-cell cleavage (41.4%) than Spike-ICSI does (33.3%, 28.6% and 23.5%, respectively) although there is no statistic significance between two groups. In addition, the blastocysts were only obtained from the Piezo-ICSI group (10.3%). Our finding shows that the Piezo-ICSI may be used as an artificial fertilization method in cattle when in vitro fertilization is not applicable.
The objective of this study was to evaluate the development of porcine follicular oocytes fertilized by intracytoplasmic sperm injection (ICSI). Cumulus-oocyte-complexes (COCs) were collected by aspiration from follicles of 2~7 mm in diameter from a local slaughterhouse. Oocytes were matured in vitro for 40~44 h, and spermatozoa were prepared by swim-up in the presence or absence of 5 mM dithiothreitol (DTT) and then M II stages of the oocyte were either centrifuged or not centrifuged for the following injection of ooplasm. Injected oocytes were cultured in NCSU 23 medium for 6 to 8 days. The results obtained were as follows: 1. The rates of cleavage and development rates into blastocyst by ICSI were not significantly different between the with (53.0% and 19.7%) or without (48.3% and 23.8%) centrifugation, respectively (P<0.05). 2. The cleavage and developmental rates to blastocyst after ICSI with or without 5 mM DTT treated-sperm were not significantly different (60.4% vs 16.4% and 45.5% vs 22.2%), respectively (P<0.05). 3. The cleavage and the developmental rates to btastocyst were not significantly different between the zygotes obtained by IVF (51.8% vs. 22.4%) and ICSI (51.4% vs. 21.6%) (P<0.05). 4. The number of blastomere in blastocyst stages after IVF or ICSI was not significantly different (46.7$\pm$2.9 and 41.9$\pm$4.6).
The objective of this study was to examine the effect of in vitro maturation (IVM) medium, cytochalasin B (CB) treatment during intracytoplasmic sperm injection (ICSI), and electric activation on in vitro development ICSI-derived embryos in pigs. Immature pig oocytes were matured in vitro in medium 199 (M199) or porcine zygote medium (PZM)-3 that were supplemented with porcine follicular fluid, cysteine, pyruvate, EGF, insulin, and hormones for the first 22 h and then further cultured in hormone-free medium for an additional 21~22 h. ICSI embryos were produced by injecting single sperm directly into the cytoplasm of IVM oocytes. The oocytes matured in PZM-3 with 61.6 mM NaCl (low-NaCl PZM-3) tended to decrease (0.05
Objectives: This study was to investigate the fertilization rate after intracytoplasmic sperm injection (ICSI) or partial zona dissection (PZD) of human and hamster sperm into hamster oocyte in in vitro fertilization (IVF). In addition, the possibility of clinical application was evaluated by the comparison of usefulness and difference of these method. Materials and Methods: Hamster immature oocytes were obtained from oviducts superovulated by PMSG and hCG, and hamster sperms were obtained from epididymis. The freezed human sperms were thawed before use. Fertilization were confirmed by two pronuclei, one pronucleus, swollen sperm head or/and two polar bodies at $7{\sim}8$ hour after ICSI or PZD. Results: The fertilization rates after ICSI and PZD of human sperm to hamster oocyte were 3.6%, 64.2%,73.6%, and 55.6% for negative control, positive control, ICSI, and PZD respectively, suggesting that ICSI only showed improved fertilization rate (p<0.01). The fertilization rates after ICSI and PZD of hamster sperm to hamster oocyte were 11.1%, 51.2%, 39.6%, and 72.7% for negative control, positive control, ICSI, and PZD respectively, suggesting that PZD only showed improved fertilization rate (p<0.01). PZD showed significantly higher fertilization rate than ICSI (p<0.05). Conclusions: As for the fertilization rate by ICSI and PZD using hamster oocyte in IVF, ICSI technique was considered to be more useful for human sperm and PZD technique for hamster sperm. Therefore, ICSI technique was considered more appropriate for experimental application using human sperm and hamster oocyte.
The cryopreservation of germ cells, sperm and embryos, has been largely used to increase the effect of artificial reproductive techniques for human infertility, but the efficiency of germ cell cryopreservation has been conkoversial till now. Thus, the effect of the cryopreservation of human sperm used for ICSI and the effect of the cryopreservation of embryos produced by ICSI on fertilizatiof development and pregnancy were investigated. Sperm freezing did not affect fertilizatiort development and pregnancy rates. Also, there was no significant difference between ejaculated and testicular sperm in ferclizatiort development and pregnancy. Embryo freezing methods, slow freezing and vitrificatior did not differ each other in viability and pregnncy rates. However, ICSI embryo freezing significantly decreased pregnancy rate compared to fresh embryos freezing (p<0.05). In conclusiof this result suggested that cryopreservation of sperm for ICSI did not affect on the resulted embryo development and pregnancy, but ICSI embryo cryopreservation would significantly inhibit pregnancy.
Objective: The purpose of this study was to evaluate outcome of intracytoplasmic sperm injection (ICSI) using epididymal and testicular sperm in patients with azoospermia. Methods: From March, 1993 to May, 1999, a retrospective clinical analysis was done of a total of 140 cycles in 112 patients who underwent ICSI. Subjects were divided into three groups: ejaculated-ICSI group included 42 cycles in 34 patients with ejaculated sperm who underwent ICSI due to severe oligospermia and past history of failed or poor fertilization in the previous in vitro fertilization and embryo tranfer (IVF-ET) cycles, microsurgical epididymal sperm aspiration and intracytoplasmic sperm injection (MESA-ICSI) group included 50 cycles in 42 patients with congenital absence of the vas deferens (CAVD) or unreconstructable obstructive azoospermia and testicular sperm extraction and intracytoplasmic sperm injection (TESE-ICSI) group included 48 cycles in 36 patients with no spermatozoa which can be retrieved from epididymis or non-obstructive azoospermia. Results: Normal two-pronuclear fertilization rates were similar in three groups: 64.4% for ejaculated-ICSI group, 59.4% for MESA-ICSI group and 60.4% for TESE-ICSI group. The pregnancy rates were 26.2%, 26.0% and 25.0% respectively. There were no significant differences in the fertilization, cleavage, and clinical pregnancy rates among ICSI cycles using ejaculated, epididymal and testicular sperm. Conclusion: Epididymal and testicular sperm obtained in azoospermic patients can fertilize oocyte successfully and may lead to be similar fertilization rates and clinical pregnancy rates to ejaculated sperm.
Lee, Sun Hee;Lee, Jae Hyun;Park, Yong-Seog;Yang, Kwang Moon;Lim, Chun Kyu
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.44
no.2
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pp.96-104
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2017
Objective: This study aimed to compare the clinical outcomes between in vitro fertilization (IVF) and intracytoplasmic sperm injection (ICSI) in sibling oocytes. Additionally, we evaluated whether the implementation of split insemination contributed to an increase in the number of ICSI procedures. Methods: A total of 571 cycles in 555 couples undergoing split insemination cycles were included in this study. Among them, 512 cycles (89.7%) were a couple's first IVF cycle. The patients were under 40 years of age and at least 10 oocytes were retrieved in all cycles. Sibling oocytes were randomly allocated to IVF or ICSI. Results: Total fertilization failure was significantly more common in IVF cycles than in ICSI cycles (4.0% vs. 1.4%, p<0.05), but the low fertilization rate among retrieved oocytes (as defined by fertilization rates greater than 0% but < 30%) was significantly higher in ICSI cycles than in IVF cycles (17.2% vs. 11.4%, p<0.05). The fertilization rate of ICSI among injected oocytes was significantly higher than for IVF ($72.3%{\pm}24.3%$ vs. $59.2%{\pm}25.9%$, p<0.001), but the fertilization rate among retrieved oocytes was significantly higher in IVF than in ICSI ($59.2%{\pm}25.9%$ vs. $52.1%{\pm}22.5%$, p<0.001). Embryo quality before embryo transfer was not different between IVF and ICSI. Although the sperm parameters were not different between the first cycle and the second cycle, split insemination or ICSI was performed in 18 of the 95 cycles in which a second IVF cycle was performed. Conclusion: The clinical outcomes did not differ between IVF and ICSI in split insemination cycles. Split insemination can decrease the risk of total fertilization failure. However, unnecessary ICSI is carried out in most split insemination cycles and the use of split insemination might make ICSI more common.
Objective: The decision to use in vitro fertilization (IVF), intracytoplasmic sperm injection (ICSI), or split insemination (IVF-ICSI) in the first cycle is based on the number of motile sperm. Hence, total fertilization failure (TFF) often occurs during IVF cycles, despite normozoospermia. To investigate whether the cumulative motile swim-up spermatozoa percentage at 22 hours post-insemination (MSPPI) is an indicator for ICSI, we analyzed TFF, fertilization, blastocyst development, chemical pregnancy, clinical pregnancy, and live birth rates. Methods: This prospective study was performed using data obtained from 260 IVF cycles. At 22 hours after insemination, the remaining swim-up spermatozoa were observed and divided into six groups according to MSPPI (<10%, 10% to <30%, 30% to <50%, 50% to <70%, 70% to <90%, and 90% to 100%). Results: Regardless of the ejaculated motile sperm concentration ($0.6-280{\times}10^6/mL$ motile spermatozoa), the incidence of TFF significantly increased when MSPPI was <10%, and the fertilization rate significantly decreased when MSPPI was <30%. We found that cumulative MSPPI correlated with the cumulative fertilization rate (Spearman correlation, 0.508, p<0.001). Regarding embryo development, we observed no significant differences in the rates of blastocyst development, chemical pregnancy, clinical pregnancy, or live birth among all groups. Conclusion: Our findings suggest that MSPPI is a viable indicator for split IVF-ICSI and ICSI. Taken together, by employing the MSPPI test in advance before IVF, ICSI, or split IVF-ICSI cycles, unnecessary split IVF-ICSI and ICSI may be avoided.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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