This report describes a high-level expression of human alpha-2a interferon ($IFN{\alpha}-2a$) in Escherichia coli and its pilot scale purification by using a monoclonal antibody-independent chromatographic procedure that is based on anion-exchange, cation-exchange, hydrophobic interaction, and gel filtration. The recombinant E. coli produced much more $IFN{\alpha}-2a$ in a soluble form, when cultivated at low temperatures than at high-temperature fermentation. However, if the bacterial growth was taken into consideration, fermentation at $30^{\circ}C$ seemed optimal for the interferon production. By using our new protocol, we recovered approximately 160 mg of $IFN{\alpha}-2a$ with a specific activity of $3.59{\times}10^8$ IU/mg from 201 of the broth. The gel permeation chromatographic and SDS-PAGE indicated that the interferon preparation was purified to homogeneity and was of the correctly folded fast-migrating monomer.
The human ribosomal protein S3 (rpS3) was expressed in E. coli using the pET-I5b vector and the monoclonal antibodies (mAbs) were produced and characterized. A total of five hybridoma cell lines were established and the antibodies recognized a single band of molecular weight of 33 kDa on immunoblot with purified rpS3. When the purified rpS3 was incubated with the mAbs, the UV endonuclease activity of rpS3 was inhibited up to a maximum of 49%. The binding affinity of mAbs to rpS3 determined by using a biosensor technology showed that they have similar binding affinities. Using the anti-rpS3 antibodies as probes, we investigated the cross-reactivities of various other mammalian brain tissues and cell lines, including human. The immunoreactive bands on Western blots appeared to be the same molecular mass of 33 kDa in all animal species tested. They also appear to be extensively cross-reactive among different organs in rat. These results demonstrated that only one type of immunologically similar rpS3 protein is present in all of the mammalian brain tissues including human. Furthermore, these antibodies were successfully applied in immunohistochemistry in order to detect rpS3 in the gerbil brain tissues. Among the various regions in the brain tissues, the rpS3 positive neurons were predominantly observed in the ependymal cells, hippocampus and substantia nigra pars compacta. The different distributions of rpS3 in brain tissues reply that rpS3 protein may play an important second function in the neuronal cells.
To enhance therapeutic potential of murine monoclonal antibody, humanization by CDR grafting is usually used to reduce immunogenic mouse residues. Most humanized antibodies still have mouse residues critical for antigen binding, but the mouse residues may evoke immune responses in humans. Previously, we constructed a new humanized version (AKA) of mouse CC49 antibody specific for tumor-associated glycoprotein, TAG-72. In this study, to select a completely human antibody light chain against TAG-72, guided selection strategy using phage display was used. The heavy chain variable region (VH) of AKA was used to guide the selection of a human TAG-72-specific light chain variable region (VL) from a human VL repertoire constructed from human PBL. Most of the selected VLs were identified to be originated from the members of the human germline VK1 family, whereas the VL of AKA is more homologous to the VK4 family. Competition binding assay of the selected Fabs with mouse CC49 suggested that the epitopes of the Fabs overlap with that of CC49. In addition, they showed better antigen-binding affinity compared to parental AKA. The selected human VLs may be used to guide the selection of human VHs to get completely human anti-TAG72 antibody.
Ceruloplasmin (CP) is the major plasma antioxidant and copper transport protein. Monoclonal antibodies (mAbs) against human CP were produced and characterized. A total of five hybridoma cell lines were established (CP2, CP10, CP20, CP25, CP30). From the epitope mapping analysis, two subgroups of mAbs recognize different peptide fragments were identified. When the purified CP was incubated with the mAbs, the ferroxidase activity of CP was inhibited up to a maximum 57%. Immunoblotting with various tissue homogenates indicated that all the mAbs specifically recognize a single protein band of 130 kDa. They also appear to be extensively cross-reactive among different mammalian including human and avian sources. These results demonstrated that only one type of immunologically similar CP is present in all of the mammalian tissues including human. The CP mAbs could be of great benefit to design the diagnostic kit for CP-related diseases such as Wilson's disease.
Phage display technique as a new antibody production method can express the protein on the minor coat of phage particle in a library constructed by utilizing a recombination of genes coding the variable regions of immunoglobulin. This new method is particularly advantageous in producing antibodies against toxic substances and compounds with low immunogenicities. We first confirmed the concept of antibody expression on the phage particle by selecting a positive control of the phage library (e.g., Griffin.l donated from MRC center in England). The library was then employed to produce antibodies specific to human serum albumin via repetitive bio-panning procedure. The mean affinity of the antibodies selected gradually increased along with the number of bio-panning, which demonstrated that the phage display method could produce monocloanl antibodies with high affinities.
A one-step, two-site enzyme immunoassay was developed for measuring human alpha-fetoprotein (AFP) in serum and amniotic fluid using monoclonal antibodies (McAb) by eliminating the high-dose hook effect. Three McAbs that recognize different epitopes were selected among 16 different clones on the basis of epitope mapping, two for immobilization and one for horseradish peroxidase conjugation. This one-step immunoassay system is more convenient and rapid compared to a conventional two-step sandwich immunoassay system. It did not exhibit the hook effect to around 2.7 mg/ml of AFP, which is probably one of the highest concentrations of AFP in the serum. The dose-response curve of the system was linear to 500 mg/ml of AFP and the system could differentiate as low as 1 mg/ml of AFP The intra- and inter-assay variations were in an acceptable range; 95~104% and 97~105% respectively Its correlation with other commercial systems was around 95%.
Shin, Chan Young;Noh, Min Su;Lee, Sang Derk;Lee, Sang Bong;Ko, Kwang Ho
Biomolecules & Therapeutics
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v.3
no.4
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pp.266-272
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1995
The analysis of membrane receptors for hormones and neurotransmitters has progressed considerably by pharmacological and biochemical means and more recently through the use of specific antibodies. To generate and characterize a moloclonal antibody against $\beta$-adrenergic receptor, a synthetic $\beta$2-adrenergic receptor peptide (Phe-Gly-Asn-Phe-Trp-Cys-Phe-Trp-Thr-Ser-lle-Asp-Val-Leu) which may comprise part of $\beta$-adrenergic receptor ligand binding pocket was coupled to Keyhole Limpet Hemocyanin (KLH) and used as an immunogen. Male BALB/C mice were immunized with this antigen and the immunized spleen was fused with myeloma SP2/0-Ag14 cells to produce monoclonal antibodies. Two clones were obtained but one of monoclonal antibodies, mAb5G09, was used throughout in this study because the other clone, mAb5All showed weak immunoreactivity against KLH as well. The mouse monoclonal antibody mAb5G09 produced in this study showed immunoreactivity to peptide-KLH conjugates and also to human A43l cells and guinea pig lung $\beta$2-adrenergic receptor as revealed by ELISA and western blot. In the course of determination of the effects of mAb5G09 on $\beta$-receptor ligand binding, it was observed that mAb5G09 specifically bound $\beta$-adrenergic radioligand [$^3$H]dihydroalprenolol (DHA) with a dissociation constant (Kd) of 60 nM. The [$^3$H]DHA binding activity of mAb5G09 had characteristics of immunoglobulins and the binding activity was not observed in the control anti-KLH monoclonal antibody. The monoclonal antibody, mAb5G09 produced in this study may provide useful models for the study of the structure of receptor binding sites.
Background: Monoclonal antibodies (mAb) of rodent origin are produced with ease by hybridoma fusion technique, and have been successfully used as therapeutic reagents for humans after humanization by genetic engineering. However, utilization of these antibodies for therapeutic purpose has been limited by the fact that they act as immunogens in human body causing undesired side effects. So far, there have been several attempts to produce human mAbs for effective in vivo diagnostic or therapeutic reagents including the use of humanized xenomouse that is generated by mating knockout mice which lost Ig heavy and light chain genes by homologous recombination and transgenic mice having both human Ig heavy and light gene loci in their genome. Methods: Genomic DNA fragments of mouse Ig heavy and light chain were obtained from a mouse brain ${\lambda}$ genomic library by PCR screening and cloned into a targeting vector with ultimate goal of generating Ig knockout mouse. Results: Through PCR screening of the genomic library, three heavy chain and three light chain Ig gene fragments were identified, and restriction map of one of the heavy chain gene fragments was determined. Then heavy chain Ig gene fragments were subcloned into a targeting vector. The resulting construct was introduced into embryonic stem cells. Antibiotic selection of transfected cells is under the progress. Conclusion: Generation of xenomouse is particularly important in medical biotechnology. However, this goal is not easily achieved due to the technical difficulties as well as huge financial expenses. Although we are in the early stage of a long-term project, our results, at least, partially contribute the successful generation of humanized xenomouse in Korea.
Kim, Jae Wha;Yoon, Sun Young;Joo, Joung-Hyuck;Kang, Ho Bum;Lee, Younghee;Choe, Yong-Kyung;Choe, In Seong
IMMUNE NETWORK
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v.2
no.3
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pp.175-181
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2002
Background: S100A6 is a calcium-binding protein overexpressed in several tumor cell lines including melanoma with high metastatic activity and involved in various cellular processes such as cell division and differentiation. To detect S100A6 protein in patient' samples (ex, blood or tissue), it is essential to produce a monoclonal antibody specific to the protein. Methods: First, cDNA coding for ORF region of human S100A6 gene was amplified and cloned into the expression vector for GST fusion protein. We have produced recombinant S100A6 protein and subsequently, monoclonal antibodies to the protein. The specificity of anti-S100A6 monoclonal antibody was confirmed using recombinant S100A recombinant proteins of other S100A family (GST-S100A1, GST-S100A2 and GST-S100A4) and the cell lysates of several human cell lines. Also, to identify the specific recognition site of the monoclonal antibody, we have performed the immunoblot analysis with serially deleted S100A6 recombinant proteins. Results: GST-S100A6 recombinant protein was induced and purified. And then S100A6 protein excluding GST protein was obtained and monoclonal antibody to the protein was produced. Monoclonal antibody (K02C12-1; patent number, 330311) has no cross-reaction to several other S100 family proteins. It appears that anti-S100A6 monoclonal antibody reacts with the region containing the amino acid sequence from 46 to 61 of S100A6 protein. Conclusion: These data suggest that anti-S100A6 monoclonal antibody produced can be very useful in development of diagnostic system for S100A6 protein.
This study was attempted to generate a monoclonal antibody against human $\alpha$-fetoprotein (AFP) and to produce an immunoassay, recognizing AFP in plasma and amniotic fluid. AFP was purified from human amniotic fluid and used to immunize mice. Spleens were taken from the mice and the cells were fused with mouse myeloma cells (Sp2/0-Ag-14) for the production of monoclonal antibodies by employing the hybridoma technology. As a result, a hybridoma cell line producing anti-AFP monoclonal antibody was cloned out and designated as MabF22. From isotyping analysis, it was found that monoclonal antibody MabF22 was IgG type with IgG1 heavy chain and k light chain. The binding specificity of MabF22 was analyzed by immunoblotting as well as by ELISA. MabF22 was highly specific, reacting with only AFP-containing samples. The binding affinity was determined by ELISA (free-capture mode) and Scatchard analysis. As a result, the value of Kd was 0.8$\times$10$^{-10}$M. The validity of the MabF22 for AFP assay was examined by two kinds of ELISAs, i.e., non-competitive and competitive ELISA. Both assays revealed that MabF22 reacted well with AFP in sample in a concentration-dependent manner. Standard curve and antibody titration curve were obtained by using purified AFP and MabF22. These results indicate that the monoclonal antibody produced in this study would be useful not only for research purposes but also for further development of immune-diagnostic kit for the measurement of AEP concentration.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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