Song, Seongeun;Cho, Yea Seul;Lee, Sung-Jae;Hah, Sang Soo
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.35
no.9
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pp.2665-2668
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2014
Aptamers are oligonucleotides or peptide molecules that are able to bind to their specific target molecules with high affinity via molecular recognition. In this study, we present development of aptamer-based precipitation assays (or simply aptamoprecipitation) for His-tagged proteins and thrombin to compare their purification efficiency with other conventional affinity precipitation methods. A crosslinking method was employed to immobilize thiol-functionalized aptamers onto the surface of polystyrene resins, enabling them to specifically bind to His-tag and to thrombin, respectively. The resulting aptamer-functionalized resins were successfully applied via a one-step experiment to purification of His-tagged proteins from complex E. coli and to thrombin extraction, exhibiting superior or at least comparable purification results to the conventional immobilized metal affinity precipitation or immunoprecipitation.
The lambda Integrase (Int) carries out site-specific recombination between the two partner DNA sequences, attachment P (attP) and attachment B (attB). In order to study the recombination mechanism, a large quantity of pure integrase is required. Then, we constructed an int gene inserted recombinant plasmid (pNYL3) by using the pQE31 HIS-Tag vector, and produced the fusion protein, 6xHIS-Int from the E. coli TG1 strain carrying the pNYL3 plasmid. The recombinant protein produced was purified by phosphocellulose and Ni$^{++}$-NTA affinity column chromatographies. The result of the in vitro recombination assay using the standard reaction mixture containing 6xHIS-Int and partially purified integration host factor (IHF) showed that the 6xHIS-Int tagged recombination Integrase had the full recombination activity.
The pabS gene of Agaricus bisporus 02 encoding a putative PABA synthase was cloned, and then the recombinant protein was expressed in Escherichia coli BL21 under the control of the T7 promoter. The enzyme with an N-terminal GST tag or His tag, designated GST-AbADCS or His-AbADCS, was purified with glutathione Sepharose 4B or Ni Sepharose 6 Fast Flow. The enzyme was an aminodeoxychorismate synthase, and it was necessary to add with an aminodeoxychorismate lyase for synthesizing PABA. AbADCS has maximum activity at a temperature of approximately 25℃ and pH 8.0. Magnesium or manganese ions were necessary for the enzymatic activity. The Michaelis-Menten constant for chorismate was 0.12 mM, and 2.55 mM for glutamine. H2O2 did distinct damage on the activity of the enzyme, which could be slightly recovered by Hsp20. Sulfydryl reagents could remarkably promote its activity, suggesting that cysteine residues are essential for catalytic function.
For antibody development of human serine palmitoyltransferase (SPT, EC 2.3.1.50), SPTLC1 and SPTLC2 genes were subcloned in pRset vector and expressed in E. coli BL21 (DE3)pLys cells. Eucaryotic SPT is a membrane-bound heterodimer enzyme, while all other members are soluble homodimer enzymes. cDNA library were obtained from total RNA from human embryo kidney cell line, HEK293, using RT-PCR and PCR with specific primers was carried out for preparing SPTLC1 and SPTLC2 genes. pRset vector which can express hexahistidine-tag fusion protein was used and the DNA sequences of pRsetB/SPTLC1 and pRsetA/SPTLC2 were confirmed. Recombinant BL21 cells with SPTLC subunits were selected with LB plate containing ampicillin and chroramphenicol. SPTLC1 and SPTLC2 proteins were induced with 1 mM IPTG and seperated on 10% SDS-PAGE gel. Expressed proteins were confirmed by western blotting with His-tag antibody.
Recognition of real time locations of crews for a naval ship is important, not only for the operation efficiency but also for the safety of onboard crews in the ship. More than 100 crews are dwelling in a modem naval ship and they are involved in various duties. Moreover many visitors come in and out frequently while the ship is moored in a harbor. It sometimes requires considerable time and efforts to find a person for urgent mission. It would enhance the operational efficiency if locations of onboard crews are recognized and monitored in real time. An active type RFID tag, which has a specific ID number, is distributed to each crew member, which should be carried during his stay in the ship. A number of fixed type RFID readers are to be located at the major passages of the ship, which are connected to the main computer via Local Area Network. The location of a crew would be identified by the ID number of his RFID tag and the location of the RFID reader which detected the RFID tag. A middleware is needed to process the collected data in the main computer. The data is fed to application softwares, which actually display locations of the concerned crews. The software is coded using GUI (Graphic User Interface) for better user friendliness, which has the function of storing the location history of a crew, and sending warning messages to appropriate persons, if unallowable behavior is detected. An auxiliary naval ship is selected for an experimental application study of the proposed system. It turns out that the required budget and time for the realization of the system is within the allowable limits. But complementary measures to protect the privacy of onboard crews should be considered and adopted, before the application of the system is realized.
Detection of pathogenic microorganisms takes several days by conventional methods. It is necessary to assess microorganisms in a timely manner to reduce the risk of spreading infection. For this purpose, bacteriophages are chosen for use as a biosensing tool due to their host specificity, wide abundance, and safety. However, their lytic cycle limits their efficacy as biosensors. Phage proteins involved in binding to bacteria could be a robust alternative in resolving this drawback. Here, a fragment of tail protein J (residues 784 to 1,132) of phage lambda fused with 6X His-tag (6HN-J) at its N-terminus was cloned, overexpressed, purified, and characterized for its binding with microorganisms. The purified protein demonstrated a size of about 38 kDa in sodium dodecyl sulfate - polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and bound with anti-His monoclonal antibodies. It bound specifically to Escherichia coli K-12, and not Salmonella typhimurium, Bacillus subtilis, or Pseudomonas aeruginosa in dot blotting. Binding of the protein to E. coli K-12 inhibited about 50% of the in vivo adsorption of the phage lambda to host cells at a concentration of $1{\mu}g/ml$ 6HN-J protein and almost 100% at $25{\mu}g/ml$ 6HN-J. The results suggest that a fusion viral protein could be utilized as a biosensing element (e.g., protein chips) for detecting microorganisms in real time.
Park, Jung-Ryeol;Kim, Sung-Woo;Kim, Jae-Bum;Jung, Woo-Hyuk;Han, Myung-Wan;Jo, Young-Bae;Jung, Joon-Ki
KSBB Journal
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v.21
no.3
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pp.204-211
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2006
For the production of the recombinant human interferon-gamma(rhIFN-${\gamma}$) in Escherichia coli, human glucagon and ferritin heavy chain were used as fusion partners. Even though rhIFN-${\gamma}$ is expressed as an inclusion body form in E. coli because of strong hydrophobicity of itself, over 50% of fused rhIFN-${\gamma}$ was expressed as soluble form in E. coli $Origami^{TM}$(DE3) harboring pT7FH(HE)-IFN-${\gamma}$ which encodes ferritin heavy chain-fused rhIFN-${\gamma}$. In the case of using glucagon-ferritin heavy chain hybrid mutant as a fusion partner, 6X His-tag was additionally introduced to N-terminus of GFHM(HE)-IFN-${\gamma}$ for enhancing purification yields of rhIFN-${\gamma}$. Fusion protein HGFHM(HE)-IFN-${\gamma}$ with two 6X His-tag was more effectively bound to Ni-NTA agarose bead than GFHM(HE)-IFN-${\gamma}$ with a 6X His-tag. rhIFN-${\gamma}$ was completely purified from enterokinase-treated HGFHM(HE)-IFN-${\gamma}$ by Ni-NTA affinity column. For high-level production of rhIFN-${\gamma}$, glucose was used as the sole carbon source with simple exponential feeding rate($2.4{\sim}7.2g/h$) in fed-batch process. The effective lactose concentration for the expression of the rhIFN-${\gamma}$ was $10{\sim}20mM$. Under the fed-batch culture conditions, rhIFN-${\gamma}$ production yield reached 11 g DCW/L for 6 hours after lactose induction.
To verify anti-diabetic effect of oligopeptide with His-Pro repeats (mHP peptide), the oligopeptide was first secreted and optimized using the secretion vector, pRBAS with alkaline protease gene promoter and the signal sequence in Bacillus subtilis and directly the anti-diabetic effect of the mHP peptide was investigated in insulinoma cell, RINm5F cell line. The oligopeptide gene was obtained by annealing oligonucleotides with repeated His-Pro sequence and finally was constructed as 18 dipeptides (108 bp and 4.0 kDa) coding gene, named oligopeptide with His-Pro repeats (mHP peptide) to make cyclo(His-Pro) known to be anti-diabetic effects. The region encoding the oligopeptide gene was subcloned into the pRBAS secretion vector (E.coli-Bacillus shuttle vector) after PCR amplification using the designed primers including initiation and termination codons and His tag, named pRBAS-mHP (6.56 kb). To optimize secretion of the oligopeptide, various culture conditions were investigated in Bacillus subtilis LKS. As a result, the secreted oligopeptide was maximally measured (approximately $59.6{\mu}g/mL$) in 3 L batch culture and the highest secretion was achieved at $30^{\circ}C$, PY medium, and carbon sources (particularly barley and glycerol). In the RINm5F cells treated with 2 mM STZ, the oligopeptide treatment (0.1 mg/mL) restored the cell viability (10%) and reduced the nitric oxide (NO) generation (35%) and DNA fragmentation (90%). And also, insulin secretion level was increased to 17% higher than in STZ-treated RINm5F cells. These results suggest that the oligopeptide with His-Pro repeats could be a candidate material for anti-diabetic agent against STZ-induced diabetes.
This study was carried out to analyze the differences in enzyme activity and stability between the native Fe superoxide dismutase (FeSOD) and the 6xHis-tagged superoxide dismutase (6xHis-FeSOD) of Streptomyces subrutilus P5. The optimum pHs for both native FeSOD and 6xHis-FeSOD were 7, while the pH range of the activity was narrower for the 6xHis-FeSOD. The native FeSOD was stable at pH 4-9, but the 6xHis-FeSOD lost its stability at pH > 9. The temperatures of the optimum activities were same for both types of enzymes. However, the heat stability of the 6xHis-FeSOD was clearly decreased; even at $20^{\circ}C$ the enzyme lost the activity after 360 min. In contrast, the native FeSOD was stable after 720 min at below $40^{\circ}C$. $H_2O_2$ inhibition was occurred already at 0.5 mM for the 6xHis-tagged enzyme. Therefore, from the results that the 6xHis-FeSOD retained the enzyme activity at pH 6-7 and $20-40^{\circ}C$, it can be assumed that the protein structure became destabilized under different storage conditions and sensitive to the enzyme inhibitor.
Plant Chloroplast have several advantages as an expression platform of biopharmaceuticals over conventional expression platforms such as mammalian cells, yeast and bacteria. First, plants do not serve as a host for mammalian infectious virus and have endotoxin like bacteria which can cause anaphylactic shock. In addition, high copy number of chloroplast genome allows for chloroplast transformants to reach the high level of expression of heterologous genes. Moreover, the integration of transgenes into specific region of chloroplast genomes makes chloroplast transformants unaffected by positional effect which can be frequently observed from nuclear transformants, resulting in loss of transgene expressions. Antimicrobial peptides (AMPs) are a kind of innate immunity which is found from bacteria to humans. Unlike conventional antibiotics, very less dosage of AMPs can have catastrophic effect on bacterial survival. Further, the repeated use of AMPs does not trigger the development of bacterial resistance. Moricin, one of the AMPs, was isolated from Bombyx mori, a silkworm moth. The C-terminal of moricin consists largely of basic amino acids, and the N-terminal has an α-helix structure. Moricin was chosen and expressed in a SUMO/SUMOase without leaving any unwanted amino acids which could potentially affect the anti-bacterial activity of the moricin. The transformation vector used in this study has already been created in this lab for the expression in both prokaryotic systems such as E. coli and chloroplast. The expressed moricin was purified using Ni columns and SUMOase, and the antibacterial activity of the purified moricin was confirmed using an agar diffusion assay.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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