This study aims to evaluate the effects of the root bark of Morus alba (RMA) on the regulation of the Hippo-YAP pathway. Hippo-YAP signaling is a critical regulator in controlling organ size and tissue homeostasis. Hippo, the serine/threonine kinase phosphorylate the LATS. Phosphorylated LATS then phosphorylates and inactivates the YAP and TAZ, which are two closely related transcriptional co-activator. Here we report RMA activates the Hippo signaling, thereby inhibits the YAP/TAZ activity. First, we examine the cytotoxic effects of RMA by MTT assay. RMA was cytotoxic at concentrations higher than $50{\mu}g/ml$ in HEK293A cells. The reporter gene assay was performed to measure the activity of TEAD, a key transcription factor that controls cell growth and proliferation. RMA significantly suppressed the luciferase activity. By phos-taq gel shift assay, and western blotting, we showed that RMA enhanced the phosphorylation of YAP in wild type cells, but not in LATS1/2 knock out cells, which means RMA activates classical Hippo pathway. RMA induced the cytoplasmic sequestration of YAP. RMA also suppressed the mRNA expression of CTGF and CYR61; the two major YAP dependent genes. Taken together, RMA is considered to be a good candidate for proliferative disease such as cancer, by facilitating cell death through activating the Hippo signaling pathway.
The lymphatic vasculature plays important role in regulating fluid homeostasis, intestinal lipid absorption, and immune surveillance in humans. Malfunction of lymphatic vasculature leads to several human diseases. Understanding the fundamental mechanism in lymphatic vascular development not only expand our knowledge, but also provide a new therapeutic insight. Recently, Hippo-YAP/TAZ signaling pathway, a key mechanism of organ size and tissue homeostasis, has emerged as a critical player that regulate lymphatic specification, sprouting, and maturation. In this review, we discuss the mechanistic regulation and pathophysiological significant of Hippo pathway in lymphatic vascular development.
The Hippo-YAP signaling pathway is critical for cell proliferation, survival, and self-renewal in both Drosophila and mammals. Disorder of Hippo-YAP pathway leads to tumor development, progression and poor prognosis in various cancers. YAP/TAZ are the key downstream effectors of the Hippo pathway and they can be inhibited through LATS1/2, core kinases in the Hippo pathway, mediated phosphorylation. In this study, we investigated the effect of Angelica gigas Nakai extract (AGNE) on Hippo-YAP/TAZ pathway. First, ANGE induced YAP/TAZ phosphorylation and dissociation of the YAP/TAZ-TEAD transcription complex. By qRT-PCR, we found that ANGE inhibits the expression of YAP/TAZ-TEAD target gene, CTGF and CYR61. In addition, the transcriptional activity of YAP/TAZ was not suppressed significantly in LATS1/2 double-knockout (DKO) cells by ANGE compared to LATS1/2 wild-type (WT) cells, which means AGNE inhibits YAP/TAZ signaling through direct action on LATS1/2. Further, it was confirmed that AGNE-induced activation of LATS1/2 inhibited the migration potential of the vector-expressing cells by suppressing YAP/TAZ activity. The reduced migration potential was restored in active YAP-TEAD expressing cells. Taken together, the results of this study indicate that ANGE downregulates YAP/TAZ signaling in cells through the activation of LATS1/2.
The Hippo pathway plays prominent and widespread roles in various forms of human carcinogenesis. Specifically, the Yes-associated protein (YAP), a downstream effector of the Hippo pathway, can lead to excessive cell proliferation and the inhibition of apoptosis, resulting in tumorigenesis. It was reported that the YAP is strongly elevated in multiple types of human malignancies such as breast, lung, small intestine, colon, and liver cancers. Recent work indicates that, surprisingly, Hippo signaling components' (SAV1, MST1/2, Lats1/2) mutations are virtually absent in human cancer, rendering this signaling an unlikely candidate to explain the vigorous activation of the YAP in most, if not all human tumors and an activated YAP promotes the resistance to RAF-, MAPK/ERK Kinase (MEK)-, and Epidermal growth factor receptor (EGFR)-targeted inhibitor therapy. The analysis of YAP expressions can facilitate the identification of patients who respond better to an anti-cancer drug treatment comprising RAF-, MEK-, and EGFR-targeted inhibitors. The prominence of YAP for those aspects of cancer biology denotes that these factors are ideal targets for the development of anti-cancer medications. Therefore, our report strongly indicates that the YAP is of potential prognostic utility and druggability in various human cancers.
As highly conserved signaling cascades of multicellular organisms, Wnt and Hippo pathways control a wide range of cellular activities, including cell adhesion, fate determination, cell cycle, motility, polarity, and metabolism. Dysregulation of those pathways are implicated in many human diseases, including cancer. Similarly to ${\beta}-catenin$ in the Wnt pathway, the YAP transcription co-activator is a major player in Hippo. Although the intracellular dynamics of YAP are well-known to largely depend on phosphorylation by LATS and AMPK kinases, the molecular effector of YAP cytosolic translocation remains unidentified. Recently, we reported that the Dishevelled (DVL), a key scaffolding protein between canonical and non-canonical Wnt pathway, is responsible for nuclear export of phosphorylated YAP. The DVL is also required for YAP intracellular trafficking induced by E-cadherin, ${\alpha}-catenin$, or metabolic stress. Note that the p53/LATS2 and LKB1/AMPK tumor suppressor axes, commonly inactivated in human cancer, govern the reciprocal inhibition between DVL and YAP. Conversely, loss of the tumor suppressor allows co-activation of YAP and Wnt independent of epithelial polarity or contact inhibition in human cancer. These observations provide novel mechanistic insight into (1) a tight molecular connection merging the Wnt and Hippo pathways, and (2) the importance of tumor suppressor contexts with respect to controlled proliferation and epithelial polarity regulated by cell adhesion.
Photobiomodulation therapy has been proposed as a promising therapeutic approach for retinal degenerative diseases. However, its effect on the regenerative capacity in mammalian retina and its intracellular signalling mechanisms remain unknown. Here, we show that photobiomodulation with 670 nm light stimulates Müller glia cell cycle re-entry and dedifferentiation into a progenitor-like state in both the uninjured and injured retina. We also find that 670 nm light treatment inhibits the Hippo pathway, which is activated in Müller glia following NaIO3-induced retinal injury. YAP, a major downstream effector of the Hippo signalling pathway was translocated into the nucleus of Müller glia along with YAP dephosphorylation in retina treated with 670 nm light. Deficiency of YAP attenuated Müller glia cell cycle re-entry and dedifferentiation. Our data reveal that the Hippo-YAP signalling pathway is associated with the photostimulatory effect on regenerative response in mammalian retina, and suggest a potential therapeutic strategy for retinal degenerative diseases.
The Hippo pathway was originally discovered in Drosophila by genetic screening and it has been shown to be conserved in various organisms including human. Until now, the essential roles of Hippo pathway in regulating cell proliferation, apoptosis, tumorigenesis, and organ size control is extensively studied. Currently, Mats1/2 (Mob1a/1b), one of the important components in Hippo pathway, mutant mice were generated which has abnormal phenotype such as resistance to apoptosis and spontaneous tumorigenesis. Of note, Mats1/2 mutant mice also showed dental malocclusion. Therefore, in this study, we have evaluated the bone phenotype of Mats1/2 mutant mice. Although the mRNA expressions of Mats1 or Mats2 were observed in both osteoclastogenesis and osteoblastogenesis, the increase of Mats1 level was most prominent during osteoblastogenesis. The RANKL-induced osteoclast differentiation from bone marrow-derived macrophages (BMMs) was unaltered upon Mats1/2 mutation; however, the osteoblast differentiation using calvarial pre-osteoblasts was significantly reduced in Mats1/2 mutant mice compare to that of wild type mice. In accordance with in vitro results, Mats1/2 mutant mice showed decreased bone volume as well as increased trabecular separation in ${\mu}CT$ analyses. These results may provide novel prospect of the probable linkage between Hippo pathway and bone homeostasis.
The Hippo signaling pathway controls nuclear accumulation and stability of the transcriptional coregulator YAP and its paralog TAZ. The activity of Hippo-YAP signaling is influenced not only by biochemical signals, but also by cell shape and mechanical tension transmitted through cell-cell junctions and cell-matrix adhesions. Data accumulated thus far indicates that the actin cytoskeleton is a key mediator of the regulation of Hippo-YAP signaling by means of a variety of biochemical and mechanical cues. In this review, we have outlined the role of actin dynamics and actin-associated proteins in the regulation of Hippo-YAP signaling. In addition, we discuss actin-mediated regulation of YAP/TAZ activity independent of the core Hippo kinases MST and LATS. Although our understanding of the link between Hippo-YAP signaling and the actin cytoskeleton is progressing rapidly, many open questions remain.
Advances in the understanding of the Hippo signaling as a key regulatory pathway of proliferation and apoptosis have provided mechanical insights for controlling organ size and tumorigenicity. Recently, much attention has been directed to the regulation of LATS1/2 (large tumor suppressor) kinases that phosphorylate YAP/TAZ, a transcriptional co-activator in the Hippo pathway, and control the level and nuclear localization of YAP/TAZ. In our recent work, we showed that deubiquitinase YOD1 stabilizes ITCH, and facilitates ITCH-mediated LATS1/2 ubiquitination and degradation, resulting in increased YAP/TAZ level. Furthermore, we found that the YOD1-ITCH-LATS1/2-YAP/TAZ signaling axis is controlled by the differential expression of miR-21 in a cell-density-dependent manner. Using a transgenic mouse model, we showed that the inducible expression of YOD1 enhances the proliferation of hepatocytes and leads to hepatomegaly in a YAP/TAZ-activity-dependent manner. Moreover, a strong correlation was observed between YOD1 and YAP expression in liver cancer patients. Overall, our data suggest that YOD1 is a novel regulator of the Hippo pathway, and thereby a potential therapeutic target for liver cancer.
Liu, Qiuyue;Gu, Xiaorong;Zhao, Yiqiang;Zhang, Jin;Zhao, Yaofeng;Meng, Qingyong;Xu, Guoheng;Hu, Xiaoxiang;Li, Ning
BMB Reports
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제43권2호
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pp.97-102
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2010
Clenbuterol, a $\beta_2$-adrenoceptor agonist, has been proven to be a powerful repartition agent that can decrease fat deposition. Based on results from our previous cDNA microarray experiment of pig clenbuterol administration, a novel up-regulated EST was full-length cloned (4859 bp encoding 1041 amino acids) and found to be the pig homolog of large tumor suppressor 2 (Lats2). We mapped pig Lats2 to chromosome 11p13-14 by using FISH, and western blotting demonstrated that pig Lats2 protein was most abundant in adipose. In Drosophila, Lats2 ortholog was reported as a key component of the Hippo pathway which regulates cell differentiation and growth. Here, we show that pig Lats2 exhibit inverted expression to YAP1, another member of the Hippo pathway which positively regulates cell growth and proliferation, during the differentiation of 3T3-L1 preadipocytes. Our results suggested that Lats2 may involve in Hippo pathway regulating the fat reduction by inhibiting adipocyte differentiation and growth.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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