Apios americana Medik (hereinafter Apios) has been reported to treat diseases, including cancer, hypertension, obesity, and diabetes. The therapeutic effect of Apios is likely to be associated with its anti-inflammatory activity. This study was conducted to evaluate the protective effects of Apios in animal models of acute lung injury induced by lipopolysaccharide (LPS) or pandemic H1N1 2009 influenza A virus (H1N1). Mice were exposed to LPS or H1N1 for 2-4 days to induce acute lung injury. The treatment groups were administered Apios extracts via oral injection for 8 weeks before LPS treatment or H1N1 infection. To investigate the effects of Apios, we assessed the mice for in vivo effects of Apios on immune cell infiltration and the level of pro-inflammatory cytokines in the bronchoalveolar lavage (BAL) fluid, and histopathological changes in the lung. After induction of acute lung injury, the numbers of neutrophils and total cells were lower in the Apios-treated groups than in the non-Apios-treated LPS and H1N1 groups. The Apios groups tended to have lower levels of tumor necrosis factor-a and interleukin-6 in BAL fluid. In addition, the histopathological changes in the lungs were markedly reduced in the Apios-treated groups. These data suggest that Apios treatment reduces LPS- and H1N1-induced lung inflammation. These protective effects of Apios suggest that it may have therapeutic potential in acute lung injury.
Worldwide, avian influenza H9N2 viruses of different lineages are the most widespread viruses in poultry. However, to date, cases in Russia have not been documented. In this study, we report the first detection of a G1-like H9N2 virus from poultry sampled at live-bird markets in Russia (Far East region) during the winter of 2018 (isolate A/chicken/Amur_Russia/17/2018). We assume there has been further circulation of the A/chicken/Amur_Russia/17/2018 H9N2 virus in the Russian Far East with possible distribution to other regions or countries in 2018-2019.
Background: It is difficult but important to differentiate between bacterial and viral infections, especially for respiratory infections. Hence, there is an ongoing need for sensitive and specific markers of bacterial infections. We investigated novel biomarkers for discriminating community acquired bacterial pneumonia from 2009 H1N1 influenza A infections. Methods: This was a prospective, observational study of patients with community acquired bacterial pneumonia, 2009 H1N1 Influenza A infection, and healthy controls. Serum samples were obtained on the initial visit to the hospital and stored at $-80^{\circ}C$. We evaluated CRP (C-reactive protein), PCT (procalcitonin), LBP (lipopolysaccharide-binding protein) and copeptin. These analytes were all evaluated retrospectively except CRP. Receiver operating characteristic curve (ROC) analyses were performed on the resulting data. Results: Enrolled patients included 27 with community acquired bacterial pneumonia, 20 with 2009 H1N1 Influenza A infection, and 26 who were healthy controls. In an ROC analysis for discriminating community acquired bacterial pneumonia from 2009 H1N1 influenza A infection, areas under the curve (AUCs) were 0.799 for CRP (95% Confidence interval [CI], 0.664~0.934), 0.753 for PCT (95% CI, 0.613~0.892) and 0.684 for LBP (95% CI, 0.531~0.837). Copeptin was not different among the three groups. Conclusion: These findings suggest that serum CRP, PCT and LBP can assist physicians in discriminating community acquired bacterial pneumonia from 2009 H1N1 influenza A infection.
Background: Since 2003, the H5 highly pathogenic avian influenza (HPAI) subtype has caused massive economic losses in the poultry industry in South Korea. The role of inland water bodies in avian influenza (AI) outbreaks has not been investigated. Identifying water bodies that facilitate risk pathways leading to the incursion of the HPAI virus (HPAIV) into poultry farms is essential for implementing specific precautionary measures to prevent viral transmission. Objectives: This matched case-control study (1:4) examined whether inland waters were associated with a higher risk of AI outbreaks in the neighboring poultry farms. Methods: Rivers, irrigation canals, lakes, and ponds were considered inland water bodies. The cases and controls were chosen based on the matching criteria. The nearest possible farms located within a radius of 3 km of the case farms were chosen as the control farms. The poultry farms were selected randomly, and two HPAI epidemics (H5N8 [2014-2016] and H5N6 [2016-2017]) were studied. Conditional logistic regression analysis was applied. Results: Statistical analysis revealed that inland waters near poultry farms were significant risk factors for AI outbreaks. The study speculated that freely wandering wild waterfowl and small animals contaminate areas surrounding poultry farms. Conclusions: Pet birds and animals raised alongside poultry birds on farm premises may wander easily to nearby waters, potentially increasing the risk of AI infection in poultry farms. Mechanical transmission of the AI virus occurs when poultry farm workers or visitors come into contact with infected water bodies or their surroundings. To prevent AI outbreaks in the future, poultry farms should adopt strict precautions to avoid contact with nearby water bodies and their surroundings.
Influenza virus is the major cause of seasonal and pandemic flu. Currently, oseltamivir, a potent and selective inhibitor of neuraminidase of influenza A and B viruses, is the drug of choice for treating patients with influenza virus infection. However, recent emergence of oseltamivir-resistant influenza viruses has limited its efficacy. Morin hydrate (3,5,7,2',4'-pentahydroxyflavone) is a flavonoid isolated from Morus alba L. It has antioxidant, anti-inflammatory, neuroprotective, and anticancer effects partly by the inhibition of the NF-κB signaling pathway. However, its effects on influenza virus have not been studied. We evaluated the antiviral activity of morin hydrate against influenza A/Puerto Rico/8/1934 (A/PR/8; H1N1) and oseltamivir-resistant A/PR/8 influenza viruses in vitro. To determine its mode of action, we carried out time course experiments, and time of addition, hemolysis inhibition, and hemagglutination assays. The effects of the co-administration of morin hydrate and oseltamivir were assessed using the murine model of A/PR/8 infection. We found that morin hydrate reduced hemagglutination by A/PR/8 in vitro. It alleviated the symptoms of A/PR/8-infection, and reduced the levels of pro-inflammatory cytokines and chemokines, such as TNF-α and CCL2, in infected mice. Co-administration of morin hydrate and oseltamivir phosphate reduced the virus titers and attenuated pulmonary inflammation. Our results suggest that morin hydrate exhibits antiviral activity by inhibiting the entry of the virus.
Lichens contain diverse bioactive secondary metabolites with various chemical and biological properties, which have been widely studied. However, details of the inhibitory mechanisms of their secondary metabolites against influenza A virus (IAV) have not been documented. Here, we investigated the antiviral effect of lichen extracts, obtained from South Korea, against IAV in MDCK cells. Of the lichens tested, Nipponoparmelia laevior (LC24) exhibited the most potent inhibitory effect against IAV infection. LC24 extract significantly increased cell viability, and reduced apoptosis in IAV-infected cells. The LC24 extract also markedly reduced (~ 3.2 log-fold) IAV mRNA expression after 48 h of infection. To understand the antiviral mechanism of LC24 against IAV, proteomic (UPLC-$HDMS^E$) analysis was performed to compare proteome modulation in IAV-infected (V) vs. mock (M) and LC24+IAV (LCV) vs. V cells. Based on Ingenuity Pathway Analysis (IPA), LC24 inhibited IAV infection by modulating several antiviral-related genes and proteins (HSPA4, HSPA5, HSPA8, ANXA1, ANXA2, $HIF-1{\alpha}$, AKT1, MX1, HNRNPH1, HNRNPDL, PDIA3, and VCP) via different signaling pathways, including $HIF-1{\alpha}$ signaling, unfolded protein response, and interferon signaling. These molecules were identified as the specific biomarkers for controlling IAV in vitro and further confirmation of their potential against IAV in vivo is required. Our findings provide a platform for further studies on the application of lichen extracts against IAV.
Background: To evaluate chest CT findings of pandemic influenza A/H1N1 pneumonia without co-infection. Methods: Among 56 patients diagnosed with pandemic influenza A/H1N1 pneumonia, chest CT was obtained in 22 between October 2009 and Februrary 2010. Since two patients were co-infected with bacteria, the other twenty were evaluated. Predominant parenchymal patterns were categorized into consolidation, ground glass opacity (GGO), and mixed patterns. Distribution of parenchymal abnormalities was assessed. Results: Median age was 46.5 years. The CURB-65 score, which is the scoring system for severity of community acquired pneumonia, had a median of 1. Median duration of symptoms was 3 days. All had abnormal chest x-ray findings. The median number of days after the hospital visit that Chest CT was performed was 1. The reasons for chest CT performance were radiographic findings unusual for pneumonia (n=13) and unexplained dyspnea (n=7). GGO was the most predominant pattern on CT (n=13, 65.0%). Parenchymal abnormalities were observed in both lungs in 13 cases and were more extensive in the lower lung zone than the upper. Central and peripheral distributions were identified in ten and nine cases, respectively. One showed diffuse distribution. Peribronchial wall thickening was found in 16 cases. Centrilobular branching nodules (n=7), interlobular septal thickening (n=4), atelectasis (n=1), pleural effusion (n=5), enlarged hilar and mediastinal lymph nodes (n=6 and n=7) were also noted. Conclusion: Patchy and bilateral GGO along bronchi with predominant involvement of lower lungs are the most common chest CT findings of pandemic influenza A/H1N1 pneumonia.
Acute necrotizing encephalopathy (ANE) is a rare but deadly complication with an unclear pathogenesis. We aimed to elucidate the immune characteristics of H1N1 influenza virus-associated ANE (IANE) and provide a potential therapeutic approach for IANE. Seven pediatric cases from a concentrated outbreak of H1N1 influenza were included in this study. The patients' CD4+ T cells from peripheral blood decreased sharply in number but highly expressed Eomesodermin (Eomes), CD69 and PD-1, companied with extremely high levels of IL-6, IL-8 in the cerebrospinal fluid and plasma. Patient 2, who showed high fever and seizures and was admitted to the hospital very early in the disease course, received intravenous tocilizumab and subsequently showed a reduction in temperature and a stable conscious state 24 h later. In conclusion, a proinflammatory cytokine storm associated with activated CD4+ T cells may cause severe brain pathology in IANE. Tocilizumab may be helpful in treating IANE.
A variety of influenza A viruses from animal hosts are continuously prevalent throughout the world which cause human epidemics resulting millions of human infections and enormous industrial and economic damages. Thus, early diagnosis of such pathogen is of paramount importance for biomedical examination and public healthcare screening. To approach this issue, here we propose a fully integrated Rotary genetic analysis system, called Rotary Genetic Analyzer, for on-site detection of influenza A viruses with high speed. The Rotary Genetic Analyzer is made up of four parts including a disposable microchip, a servo motor for precise and high rate spinning of the chip, thermal blocks for temperature control, and a miniaturized optical fluorescence detector as shown Fig. 1. A thermal block made from duralumin is integrated with a film heater at the bottom and a resistance temperature detector (RTD) in the middle. For the efficient performance of RT-PCR, three thermal blocks are placed on the Rotary stage and the temperature of each block is corresponded to the thermal cycling, namely $95^{\circ}C$ (denature), $58^{\circ}C$ (annealing), and $72^{\circ}C$ (extension). Rotary RT-PCR was performed to amplify the target gene which was monitored by an optical fluorescent detector above the extension block. A disposable microdevice (10 cm diameter) consists of a solid-phase extraction based sample pretreatment unit, bead chamber, and 4 ${\mu}L$ of the PCR chamber as shown Fig. 2. The microchip is fabricated using a patterned polycarbonate (PC) sheet with 1 mm thickness and a PC film with 130 ${\mu}m$ thickness, which layers are thermally bonded at $138^{\circ}C$ using acetone vapour. Silicatreated microglass beads with 150~212 ${\mu}L$ diameter are introduced into the sample pretreatment chambers and held in place by weir structure for construction of solid-phase extraction system. Fig. 3 shows strobed images of sequential loading of three samples. Three samples were loaded into the reservoir simultaneously (Fig. 3A), then the influenza A H3N2 viral RNA sample was loaded at 5000 RPM for 10 sec (Fig. 3B). Washing buffer was followed at 5000 RPM for 5 min (Fig. 3C), and angular frequency was decreased to 100 RPM for siphon priming of PCR cocktail to the channel as shown in Figure 3D. Finally the PCR cocktail was loaded to the bead chamber at 2000 RPM for 10 sec, and then RPM was increased up to 5000 RPM for 1 min to obtain the as much as PCR cocktail containing the RNA template (Fig. 3E). In this system, the wastes from RNA samples and washing buffer were transported to the waste chamber, which is fully filled to the chamber with precise optimization. Then, the PCR cocktail was able to transport to the PCR chamber. Fig. 3F shows the final image of the sample pretreatment. PCR cocktail containing RNA template is successfully isolated from waste. To detect the influenza A H3N2 virus, the purified RNA with PCR cocktail in the PCR chamber was amplified by using performed the RNA capture on the proposed microdevice. The fluorescence images were described in Figure 4A at the 0, 40 cycles. The fluorescence signal (40 cycle) was drastically increased confirming the influenza A H3N2 virus. The real-time profiles were successfully obtained using the optical fluorescence detector as shown in Figure 4B. The Rotary PCR and off-chip PCR were compared with same amount of influenza A H3N2 virus. The Ct value of Rotary PCR was smaller than the off-chip PCR without contamination. The whole process of the sample pretreatment and RT-PCR could be accomplished in 30 min on the fully integrated Rotary Genetic Analyzer system. We have demonstrated a fully integrated and portable Rotary Genetic Analyzer for detection of the gene expression of influenza A virus, which has 'Sample-in-answer-out' capability including sample pretreatment, rotary amplification, and optical detection. Target gene amplification was real-time monitored using the integrated Rotary Genetic Analyzer system.
조류 독감바이러스(avian influenza virus, AIV)는 사람에게서 발생하는 인플루엔자 대유행에 중요한 역할을 한다. 특히 최근 AIV H9N2형에 의한 가금류 감염이 빈번히 나타나고 있어 인체 감염이 상당히 우려되는 실정이다. 본 연구에서는 최종적으로 AIV의 HA와 NA 단백질에 특이적으로 반응하는 항혈청을 생산하고자 하였다. 먼저 감염된 닭에서 분리된 AIV H9N2 한국분리주 A/Ck/Kr/MS96/96의 게놈RNA로부터 RT-PCR 방법으로 HA와 NA 단백질 N-말단부위에 해당하는 염기서열을 증폭하였다. 이렇게 증폭된 DNA단편은 E. coli 발현벡터 pGEX4T-1에 삽입한 후, BL21 세포에서 각각의 GST fusion protein (GST-HAln와 GST-NAn) 형태로 발현하였다. GST-HAln와 GST-NAn은 모두 glutathione sepharose column을 사용하여 분리 및 정제하였으며, 정제된 단배질을 항원으로 사용하여 토끼 항혈청을 생산하였다. 생산된 항혈청의 항원특이성은 AIV H9N2 한국분리주 A/Ck/Kr/MS96/96로 감염된 MDCK 세포의 cell extract를 사용하여 immunoblotting을 수행함으로써 확인하였다. 본 실험결과AIV H9N2의 HA와 NA단백질 N-말단부위에 해당하는 재조합GST fusion protein과, 이들 각각의 단백질에 특이적으로 반응하는 항혈청은 앞으로AIV 감염의 진단 뿐만 아니라, AIV에 대한 기초연구에 중요한 재료로 사용될 것으로 기대한다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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