Kim Hong-Gyum;Kim Byung-Chul;Kim Kyunghoon;Park Eun-Hee;Lim Chang-Jin
Journal of Microbiology
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제42권4호
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pp.353-356
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2004
In a previous study, a gst gene was isolated from the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. This gene was dubbed gstI, and was characterized using the gstI -lacZ fusion plasmid pYSH2000. In this work, four additional fusion plasmids, pYSHSDl, pYSHSD2, pYSHSD3 and pYSHSD4, were constructed, in order to carry (respectively) 770, 551, 358 and 151 bp upstream regions from the translational initiation point. The sequence responsible for induction by aluminum, mercury and hydrogen peroxide was located in the range between -1,088 and -770 bp upstream of the S. pombe gstI gene. The same region was identified to contain the nucleotide sequence responsible for regulation by Papl, and has one putative Papl binding site, TTACGTAT, located in the range between $-954\~-947$ bp upstream of the gstI gene. Negatively acting sequences are located between -1,088 and -151 bp. These findings imply that the Papl protein is involved in basal and inducible transcription of the gstI gene in the fission yeast S. pombe.
The retroviral Gag polyprotein directs the assembly of virion particles and plays an important role in some events after entry into a host cell. The Gag polyprotein of a virus mixture is responsible for inducing murine acquired immunodeficiency syndrome (MAIDS) when injected into susceptible strains of mice. In order to identify the host cellular proteins which interact with the MAIDS virus Gag proteins and possibly mediate the function of the Gag proteins, mouse T-cell leukemic cDNA expression library was screened using the yeast GAL4 two hybrid system. Of 11 individual positive clones, the clone Y1 was selected for the study of protein-protein interaction. Its DNA sequence revealed that it was an exact match to the murine SH3 domain-containing protein SH3P8. It is expressed as 2.4 kbp transcripts in testis at higher levels and in various tissues tested at lower levels. Glutathione S-transferase-Y1 fusion protein binds tightly to $Pr60^{def-gag}$ as well as $Pr65^{eco-gag}$.
Park, Dae-Wook;Kim, Sang-Soo;Nam, Min-Kyung;Kim, Goo-Young;Kim, Jung-Ho;Rhim, Hyang-Shuk
BMB Reports
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제44권4호
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pp.279-284
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2011
The glutathione S-transferase (GST) system is useful for increasing protein solubility and purifying soluble GST fusion proteins. However, purifying half of the GST fusion proteins is still difficult, because they are virtually insoluble under non-denaturing conditions. To optimize a simple and rapid purification condition for GST-pyruvate kinase muscle 2 (GST-PKM2) protein, we used 1% sarkosyl for lysis and a 1 : 200 ratio of sarkosyl to Triton X-100 (S-T) for purification. We purified the GST-PKM2 protein with a high yield, approximately 5 mg/L culture, which was 33 times higher than that prepared using a conventional method. Notably, the GST-high-temperature requirement A2 (GST-HtrA2) protein, used as a model protein for functional activity, fully maintained its proteolytic activity, even when purified under our S-T condition. This method may be useful to apply to other biologically important proteins that become highly insoluble in the prokaryotic expression system.
항균 펩타이드(Antimicrobial peptides(AMPs)는 그람 양성, 그람 음성 세균과 진균병원체에 대항하는 생명체에서 중요한 역할을 하는 물질이다. 인간의 Cathelicidin 항균 펩타이드는 임상학적으로 사용할 수 있는 여러 가지의 생물학적 활성을 가진다. 항균 펩타이드의 생산 비용은 재조합 방법으로 낮출 수가 있다. 대장균은 저렴하며 손쉬운 조작이 가능하기 때문에 다른 재조합 단백질처럼 항균 펩타이드의 발현에 훌륭한 숙주가 될 수 있다. 그러나 대장균에서의 항균 펩타이드의 과발현은 항균 펩타이드가 과발현 되었을 때 대장균에 독성을 보일 수 있으므로 어려움이 보고가 되어있다. 본 연구에서는 이러한 문제점을 극복하고자 항균 펩타이드를 Glutathione S-transferase(GST) 결합 단백질에 융합하여 항균펩타이드의 독성을 감소시키도록 설계하여 발현을 시도하였다. 이 때 발현한 항균 펩티드는 LL37과, gaegurin4과 LL37의 잡종 펩타이드 GGN4-LL37(GL32로 명명)를 GST에 융합되도록 벡터를 구축하고 설계하여 대장균에서 GST 융합단백질로 발현시켰다. 융합 단백질은 친화력 컬럼을 사용하여 분리하고 GST를 절단하여 항균펩타이드 만을 분리하였고 분리한 펩타이드는 웨스턴 블롯팅으로 확인하였고 그람 양성, 그람 음성 세균에 대하여 항균 활성을 나타내는 것을 확인하였다.
To study the functional roles of dopamine receptors, we decided to raise antibodies against these proteins. To make antigen, we expressed the whole 3rd cytoplasmic loop of dopamine receptors in a fusion protein with glutathione-S-transferase (GST). $For D_2\; and\; D_3$ receptors, it was successful to express and purify fusion proteins for the whole 3rd cytoplasmic loops. However, we could not express the fusion protein for the whole 3rd cytoplasmic loop of $D_4$ dopamine receptor in the bacteria. To study the causes that prevent the bacterial expression of the GST-fusion protein of the 3rd cytoplasmic loop of $D_4$ dopamine receptor, we conducted more detailed studies on $D_4$ dopamine receptor. To locate the region which prevents bacterial expression, we made sequential constructs in the 3rd cytoplasmic loop decreasing the size step by step, and confirmed their expressions in the SDS PAGE. It was found that certain regions of 3rd cytoplasmic loop of $D_4$ dopamine receptor, located in N-terminal side of the 3rd cytoplasmic loop of $D_4$ dopamine receptor suppress the bacterial expression of fusion protein.
We assessed heterologous protein expression in 64 strains obtained from the Escherichia coli Reference (ECOR) collection, a collection representing diverse natural E. coli populations. A plasmid generating a glutathione S-transferase and plant carbonic anhydrase fusion protein (GST-CA) under the control of the tac promoter was introduced into the ECOR strains, and the quantity of the fusion protein was determined by SDS-PAGE. The foreign protein was generated at various levels, from very high (40 strains, high producers) to very low (six strains, low producers). Immunoblotting showed that the high producers expressed approximately 250-500 times more GST-CA protein than the low producers. The results of semi-quantitative RT-PCR showed that the low producers generated mRNA levels comparable to those of the high producers, thereby suggesting that, at least in this case, inefficient translation is a major cause of the low production. We introduced a different plasmid, which expressed a maltose binding protein and plant guanylate kinase fusion protein (MBP-GK) into the six low producers. Interestingly, five of these expressed MBP-GK at very high levels. Thus, we conclude that the production of a particular protein from an expression vector can vary considerably, depending on the host strain. Strains in the ECOR collection could function as useful alternative hosts when a desired level of protein expression is not obtained from commonly used strains, such as E. coli K12 or B derivatives.
To investigate whether human $\beta$$_2$-adrenergic receptor devoid of the C-terminal two transmembrane helices retain its ligand binding activity and specificity, 5'780-bp DNA fragment of the receptor gene which encodes amino acid 1-260 of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor was subcloned into the bacterial fusion protein expression vector and expressed as a form of glutathione-S-transferase (GST) fusion protein in E. coli DH5$\alpha$. The receptor fusion protein was expressed as a membrane bound form which was verified by SDS-PAGE and Western blot. The fusion protein expressed in this study specifically bound $\beta$-adrenergic receptor ligand [$^3$H] Dihydroalprenolol. In saturation ligand binding assay, the $K_{d}$ value was 7.6 nM which was similar to that of intact $\beta$$_2$-adrenergic receptor in normal animal tissue ( $K_{d}$=1~2 nM) and the $B_{max}$ value was 266 fmol/mg membrane protein. In competition binding assay, the order of binding affinity of various adrenergic receptor agonists to the fusion protein was isoproterenol》epinephrine norepinephrine, which was similar to that of intact receptor in normal animal tissue. These results suggest that N-terminal five transmembrane helices of the $\beta$$_2$-adrenergic receptor be sufficient to determine the ligand binding activity and specificity, irrespective of the presence or absence of the C-terminal two transmembrane helices.s.s.s.
Several neurodegenerative diseases such as Huntington's disease, dentatorubralpallidoluysian atrophy, spinobulbar muscular atrophy, Machado-Joseph disease, and spinocerebellar ataxias type 1 are associated with the aggregation of expanded glutamine repeats within their proteins. Generally, in clinically affected individuals, the expansion of the polyglutamine sequences is beyond 40 residues. To address the length of polyglutamine that forms aggregation, we have constructed plasmids encoding glutathione S-transferase (GST) Machado-Joseph disease gene fusion proteins containing polyglutamine and investigated the formation of aggregates in E. coli. Surprisingly, even $(Gin)_8$, in the normal range as well as $(Gin)_{65}$ in the pathogenic range enhanced the formation of insoluble protein aggregates, whereas $(Ser)_8$, and $(Aia)_8$, did not form aggregates. Our results indicate that the formation of protein aggregates in GST-polyglutamine proteins is specifically mediated by the polyglutamine repeat sequence within their protein structure. Our study may contribute to the understanding of the molecular mechanism of the formation of protein aggregates in neurodegenerative disorders and the development of preventative strategies.
C 형 간염 바이러스 (Hepatitis C Virus, HCV)는 두종류의 외피당단백질 $E1_{192-383}$ 및 $E2_{384-746}$를 갖고 있다. $E1_{192-383}$ 및 $E2_{384-740}$ 단백질은 glutathione S-transferae (GST) 융합단백질의 형태로 대장균에서 발현되지 않았으나, 이 단백질들의 C말단에 존재하는 소수성영역을 제거하였을 때 $GST-E1_{192-283}$ 융합단백질은 과량으로 가용성 형태로 발현되었고, $GST-E2_{384-649}$ 융합단백질은 비 가용성 형태로 발현되었다. 이 융합단백질들 각각은 HCV 양성환자의 혈청과 특이적으로 반응하였다. Thrombin으로 처리하여 얻은 정제된 $E1_{192-283}$ 단백질 및 융합형태의 $GST-E2_{384-649}$ 단백질 각각을 생쥐에 접종하였을 때 E1 및 E2 특이적인 항체가 생성되었다. 이 결과들은 $E1_{192-383}$ 및 $E2_{384-649}$ 융합단백질 C 말단에 존재하는 소수성영역이 이 단백질들의 발현량 및 가용성에 영향을 주며 $E1_{192-283}$ 단백질 영역내에 HCV 양성환자의 혈청과 특이적으로 반응하는 epitope (s)이 존재한다는 것을 제시해 주고 있다.
The Jun and Fos families of eukaryotic transcription factors form heterodimers capable of binding to their cognate DNA enhancer elements. We are interested in searching for inhibitors or antagonists of the binding of the Jun-Fos heterodimer to the activator protein-1 (AP-1) site. The basic-region leucine zipper (bZIP) domain of c-Fos was expressed as a fusion protein with glutathione S-transferase, and allowed to form a heterodimer with the bZIP domain of c-Jun. The heterodimer was bound to glutathione-agarose, to which were added radiolabeled AP-1 nucleotides. After thorough washing, the gel-bound radioactivity was counted. The assay is faster than the coventional electrophoretic mobility shift assay because the gel electrophoresis step and the autoradiography step are eliminated. Moreover, the assay is very sensitive, allowing the detection of picomolar quantities of nucleotides, and is not affected by up to 50% dimethylsulfoxide, a solvent for hydrophobic inhibitors. Curcumin and dihydroguaiaretic acid, recently known inhibitors of Jun-Fos-DNA complex formation, were applied to this Jun-GST-fused Fos system and revealed to decrease the dimer-DNA binding.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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