In order to investigate the biostimulatory effect of low power density laser radiation in vitro, human gingival fibroblasts were cultured in MEM in which experiment groups respectively were made to 30 sec, 60 sec and 90 sec group. The experiments were performed by cell count, DNA and protein content measurements after experimental groups were irradiated with GaAlAs laser every day by forth day and then control group and experimental groups were compared. The results were as follows: 1. Cell counts of experimental groups were increased with exposure time, but showed no significance (P>0.05). 2. When the protein contents were compared, there was a very significant increase in 90 sec. experimental group (P<0.01). 3. When the DNA contents were compared, there was a significant difference only between control and 70 sec. group (P<0.05).
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.33
no.3
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pp.211-220
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2007
Objective: In organotypic culture of immortalized human oral keratinocytes (IHOK), the change of the growth and differentiation was investigated according to the fibroblast type and the involvement of mitogen-activated protein (MAP) kinase. Materials & Methods: IHOK was cultured three dimensionally with gingival fibroblast (GF), dermal fibroblast (DF) and immortalized gingival fibroblast (IGF). We characterized biologic properties of three dimensionally reconstructed IHOK by histological, immunohistochemical, and Western blot analysis. We also investigated whether MAP kinase pathway was involved in epithelial-mesenchymal interaction by Western blot analysis. Results: The best condition of three dimensionally cultured IHOK was the dermal equivalent consisting of type I collagen and IGF. IGF increased the expression of more proliferating cell nuclear antigen (PCNA), involucrin than GF and DF in response to co-culture with IHOK. Extracellularly regulated kinase (ERK) pathway was activated in organotypic co-culture with IGF. Conclusion: The organotypic co-culture of IHOK with dermal equivalent consisting of type I collagen and IGF resulted in excellent morphologic and immunohistochemical characteristics and involved ERK pathway. The epithelial-mesenchymal interaction was activated according to the fibroblast type.
The Chlorhexidine(CHX) has been a widely used adjunt in periodontal therapy due to its bactericidal effect. In spite of the effects of CHX exhibits cytotoxic to human cells and delays granulation tissue formation. Therefore, understanding the effects of CHX on fibroblast attachment and cell growth will provide the rationale for its use during healing phase of periodontal surgery. This study was undertaken to examine the effects of standardized CHX-pretreated dentin slices and direct CHX exposure on human gingival fibroblasts. The results were as follow : 1. In experiment 1, there was a significant reduction in the number of fibroblast attachment in 0.12, 1%-pretreated groups relative to the control, 0.05%-pretreated groups(P<0.05). 2. In experiment 1, the control, 0.05%-pretreated groups showed considerable attachment and typical fibroblastic morphology, but 0.12, 1%-pretreated groups showed irregular, round-up (unattached) fibroblastic morphology. 3. In experiment 2, it appeared that all experimental groups exhibits significant inhibition of cell growth when compared with the control group.
The purpose of present study was to investigate the effects of physiologically active compound (SD62-122) from Phlomidis Radix on the cell cycle progression and its molecular mechanism in human gingival fibroblasts(HGFs). For this purpose, fibroblasts were isolated and cultured from excisioned gingiva during crown lengthening procedure in healthy adult. The following parameter were evaluated that there are cell number counting, MIT assay, cell cycle progression, western blot analysis. The cell number and MIT assay of primary cultured fibroblast was not increased at 2 days but significant increased compare to negative control at 3days(p<0.05). S phase was increased and G1 phase decreased in both $10^{-8}M$ and $10^{-9}M$ of SD62-122 in cell cycle analysis. The cell cycle regulation protein levels of Cyclin $D_1$, Cyclin E, cdk 2, cdk 4 and cdk 6 were increased compare to control in both $10^{-8}M$ and $10^{-9}M$ of SD62-122. The protein levels of p21 and p53 were decreased compare to control, but the level of pRb was not changed compare to control in $10^{-9}M$ of SD2-122. These results suggested that physiologically active compound (SD62-122) isolated from Phlomidis Radix increases the cell proliferation and cell cycle progression in HGFs, which is linked to increased cell cycle regulation protein levels of Cyclin $D_1$, Cyclin E, cdk 2, cdk 4 and cdk 6, and decreased the levels of p21, p53.
Purpose: The atmospheric pressure plasma jet (APPJ) has been introduced as an effective disinfection method for titanium surfaces due to their massive radical generation at low temperatures. Helium (He) has been widely applied as a discharge gas in APPJ due to its bactericidal effects and was proven to be effective in our previous study. This study aimed to evaluate the safety and effects of He-APPJ application at both the cell and tissue levels. Methods: Cellular-level responses were examined using human gingival fibroblasts and osteoblasts (MC3T3-E1 cells). He-APPJ was administered to the cells in the experimental group, while the control group received only He-gas treatment. Immediate cell responses and recovery after He-APPJ treatment were examined in both cell groups. The effect of He-APPJ on osteogenic differentiation was evaluated via an alkaline phosphatase activity assay. In vivo, He-APPJ treatment was administered to rat calvarial bone and the adjacent periosteum, and samples were harvested for histological examination. Results: He-APPJ treatment for 5 minutes induced irreversible effects in both human gingival fibroblasts and osteoblasts in vitro. Immediate cell detachment of human gingival fibroblasts and osteoblasts was shown regardless of treatment time. However, the detached areas in the groups treated for 1 or 3 minutes were completely repopulated within 7 days. Alkaline phosphatase activity was not influenced by 1 or 3 minutes of plasma treatment, but was significantly lower in the 5 minute-treated group (P=0.002). In vivo, He-APPJ treatment was administered to rat calvaria and periosteum for 1 or 3 minutes. No pathogenic changes occurred at 7 days after He-APPJ treatment in the He-APPJ-treated group compared to the control group (He gas only). Conclusions: Direct He-APPJ treatment for up to 3 minutes showed no harmful effects at either the cell or tissue level.
The purpose of this study was to evaluate the biocompatibility of the Nd:YAG lased root surface followed by root planing and/or tetracyline-HCI(T.C.-HCI) conditioning. $30,4mm{\times}4mm$ root segments were obtained from unerupted third molars and 21, periodontally involved root segments. The treatment groups were as follows : (1) healthy root cementum surface groups : 1) control(non-treated group), 2) lased only, 3) lased/root planed, and 4) lased/T.C.-HCI. (2) diseased root cementum surface groups : 1) control(root planed only), 2) lased/root planed, and 3) lased/root planed/T.C.-HCI. The specimens were treated with a Nd:YAG laser using a $320{\mu}m$ noncontact optic fiber handpiece with an energy setting of 1.5W($114.6J/cm^2$), 2.0W($152.9J/cm^2$), 5.0W($382J/cm^2$) for one minute. The fiber was held perpendicular to the petri dish(NUNC) 2cm apart in an attempt to expose the entire root segments equally. Human gingival fibroblasts were cultured from explants of normal interdental gingival tissue obtained during third morlar extraction. The attachment assay was performed with third-generation fibroblasts. The numbers of gingival fibroblasts attached to the root surface were counted on each specimen under the light microscope, and were statistically analyzed by the oneway ANOVA followed by Tukey's test in SPSS/PC+programs. The results were as follows : 1) In healthy root cementum surfaces, lased/root planed groups exhibited a significantly increased fibroblast attachment compared to controls, lased only, and lased/T.C.-HCI groups(p<0.05), 2) In diseased root cementum surfaces, laser treatment followed by root planing and/or T.C.HCl groups exhibited a increased tendency of fibroblast attachment compared to root planed only group. The results suggest that laser treatment followed by root planing and/or T.C.-HCl would appear necessary so as to render the root surface biocompatible.
Periodontal disease is a major oral disorder and comprises a group of infections that lead to inflammation of the gingiva and the destruction of periodontal tissues. $PPAR{\gamma}$ plays an important role in the regulation of several metabolic pathways and has recently been implicated in inflammatory response pathways. However, its effects on periodontal inflammation have yet to be clarified. In our current study, we evaluated the anti-inflammatory effects of $PPAR{\gamma}$ on periodontal disease. Human gingival fibroblasts (HGFs) treated with lipopolysaccharide (LPS) showed high levels of intracellular adhesion molecule-1 (ICAM-1), vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1), matrix metalloproteinase-2 (MMP-2), and -9 (MMP-9). Moreover, these cells also showed upregulated activities for extracellular signal regulated kinase (ERK1/2), inducible nitric oxide synthase (iNOS) and cyclooxygnase-2. However, cells treated with Ad/$PPAR{\gamma}$ and rosiglitazone in same culture system showed reduced ICAM-1, VCAM-1, MMP-2, -9 and COX-2. Finally, the anti-inflammatory effects of $PPAR{\gamma}$ appear to be mediated via the suppression of the ERK1/2 pathway and consequent inhibition of NF-kB translocation. Our present findings thus suggest that $PPAR{\gamma}$ indeed has a pivotal role in gingival inflammation and may be a putative molecular target for future therapeutic strategies to control chronic periodontal disease.
PURPOSE. The objective of this study was to investigate the biologic effects of enamel matrix derivative (EMD) with different concentrations on cell viability and the genetic expression of human gingival fibroblasts (HGF) to zirconia surfaces. MATERIALS AND METHODS. Immortalized human gingival fibroblasts (HGF) were cultured (1) without EMD, (2) with EMD $25{\mu}g/mL$, and (3) with EMD $100{\mu}g/mL$ on zirconia discs. MTT assay was performed to evaluate the cell proliferation activity and SEM was carried out to examine the cellular morphology and attachment. The mRNA expression of collagen type I, osteopontin, fibronectin, and TGF-${\beta}1$ was evaluated with the real-time polymerase chain reaction (RT-PCR). RESULTS. From MTT assay, HGF showed more proliferation in EMD $25{\mu}g/mL$ group than control and EMD $100{\mu}g/mL$ group (P<.05). HGFs showed more flattened cellular morphology on the experimental groups than on the control group after 4h culture and more cellular attachments were observed on EMD $25{\mu}g/mL$ group and EMD $100{\mu}g/mL$ group after 24h culture. After 48h of culture, cellular attachment was similar in all groups. The mRNA expression of type I collagen increased in a concentration dependent manner. The genetic expression of osteopontin, fibronectin, and TGF-${\beta}1$ was increased at EMD $100{\mu}g/mL$. However, the mRNA expression of proteins associated with cellular attachment was decreased at EMD $25{\mu}g/mL$. CONCLUSION. Through this short term culture of HGF on zirconium discs, we conclude that EMD affects the proliferation, attachment, and cell morphology of HGF cells. Also, EMD stimulates production of extracellular matrix collagen, osteopontin, and TGF-${\beta}1$ in high concentration levels. CLINICAL RELEVANCE. With the use of EMD, protective barrier between attached gingiva and transmucosal zirconia abutment may be enhanced leading to final esthetic results with implants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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