To isolate a gene for cyclodextrin glycosyltransferase (CGTase) from alkalophilic Bacillus sp. E1, polymerase chain reaction (PCR) amplification was carried out. Direct molecular cloning of 1.2 kbp fragment and partial nucleotide sequence analysis of the PCR amplified clone, pH12, showed close homology with CGTases from Bacillus species. To investigate the genomic structure of the gene, Southern blot analysis of genomic DNA was carried out with the clone pH12 as a molecular probe. It showed that 5.3 kbp XbaI fragment was hybridized with the probe pH12. To isolate a genomic clone, genomic DNA library was constructed and a genomic clone for CGTase, pCGTE1, was isolated. Nucleotide sequence analysis of the clone pCGTE1 revealed that BCGTE1 contained 2,109 bp open reading frame encoding a polypeptide of 703 amino acids and showed over 94.3% amino acid sequence homology with CGTase of ${\beta}-cyclodextrin$ producer, Bacillus sp. KC201.(Received October 7, 1997; accepted October 20, 1997)
The FBJ murine osteosarcoma viral oncogene homolog B (FosB) gene is located at chromosome 19, and encodes 43 Kda protein. Functionally, the FosB gene is important for differentiation, development, and pathogenesis. Furthermore, the FosB gene is suggested as possible biomarker for tracing disease prognosis. In this study, we constructed plasmid containing a FosB promoter region and evaluate its promoter activity. We analyzed the putative promoter region in FosB genomic DNA using bioinformatics program, and we found important regulatory elements in 1 Kb upstream from transcription start site (TSS). Therefore, we performed polymerase chain reaction (PCR) amplification on region from-1,555 upstream to +73 of the FosB genomic DNA, and PCR product was inserted into TA vector to create the $TA-1^{st}FosBp$ plasmid. We then prepared the primer sets, which contain a restriction enzyme site for Kpn1 and Nhe1, in order to reinsert into the TA vector to prepare $TA-2^{nd}FosBp$ plasmid. It was finally subcloned into pGL3-luc vector after enzyme cutting. To evaluate whether the cloned plasmid is useful in cell based experiment, we performed luciferase assay with pGL3-FosBp-luctransfection. FosB promoter activity was increased compared to empty vector, and this activity was significantly increased by treatment of doxorubicin and taxol. We obtained consistent data on regulation of FosB gene expression after anticancer drug treatment using Western blot analysis. The results suggest that promoter cloning of the human FosB gene is very useful for studying gene expression and analyzing biomarkers.
TALEN is a newly developed gene engineering method to knock out specific genes. It contains a DNA binding domain and a Fok1 nuclease domain in the TALEN plasmid. Therefore, the engineered TALEN construct can bind to any region of genomic DNA and cut the target nucleotide, thereby inducing mutation. In this study, we constructed two TALEN constructs targeted to a protein initiation codon (DBEX2) or the 25th upstream region (DBPR25) to enable mRNA synthesis of SETDB1 HMTase. We performed the TALEN cloning in two steps. The first step was from module vectors to pFUS array vectors. We confirmed successful cloning with a colony PCR experiment and Esp31 restriction enzyme digestion, which resulted in a smear band and a 1 Kb insert band, respectively The second step of the cloning was from a pFUS array vector to a mammalian TALEN expression vector. The engineered TALEN construct was sequenced with specific primers in an expression vector. As expected, a specific array from the module vectors was shown in the sequencing analysis. The specific module sequences were regularly arrayed in every 100 bp, and SETDB1 expression totally disappeared in the TALEN-DBEX2 transfection. PCR amplification targeting of DBEX2 was performed, and the PCR product was digested with a T7E1 restriction enzyme. The expression of SETDB1 was down-regulated in the TALEN-DBPR25 transfection. Morphological changes were also observed in the two TALEN constructs with transfected HeLa cells. These results suggest that the engineered TALEN constructs in two strategic approaches are very useful to knock-out of the SETDB1 gene and to study gene function.
A 340-bp chitin synthase gene(CHS) fragment was cloned from the genomic DNA of Pyricularia oryzae using a PCR process with two primer DNAs corresponding to highly conserved sequences within fungal CHS genes. The entire DNA nucleotide sequences of the cloned DNA fragment were determined and analyzed. The amino acid sequences deduced from the nucleotide sequence of the amplified DNA fragment showed 86% homology to that of the Aspergillus fumigatus CHSE gene (9). Using this PCR-amplified DNA, about 2.3 kb of including the PCR fragment of CHSE gene was cloned from genomic library.
Zheng Gui Zhong;Kim Bo-Yeon;Yoon Hyung-Joo;Wei Ya Dong;Xijie Guo;Jin Byung-Rae;Shon Hung-Dae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.14
no.1
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pp.51-56
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2007
In a previous study, three larval cuticle protein genes were cloned from the mulberry longicorn beetle, Apriona germari (Comp. Biochem. Physiol. B 136, 803-811, 2003). In the present study, the genomic structures of these three larval cuticle protein genes (AgLCP9.2, AgLCP12.6 and AgLCP12.3) were elucidated. All three cuticle protein genes consist of one intron and two exons. Southern blot analysis of genomic DNA suggested that three cuticle protein genes are a single copy gene. In addition, a novel larval cuticle protein gene, AgLCP10.6, was cloned from A. germari in this study. The AgLCP10.6 cDNA contains an ORF of 300 nucleotides that are capable of encoding a 100-amino acid polypeptide with a predicted molecular mass of 10.6 kDa. The amino acid sequence deduced from the AgLCP10.6 cDNA contained a type-specific consensus sequence identifiable in other insect cuticle proteins and is most homologous to Drosophila melanogaster cuticle protein ACP65A (51 % protein sequence identity). Northern blot analysis revealed that AgLCP10.6 showed epidermis-specific expression.
Transformation-associated recombination (TAR) cloning is based on co-penetration into yeast spheroplasts of genomic DNA along with TAR vector DNA that contains 5'- and 3'-sequences (hooks) specific for a gene of interest, followed by recombination between the vector and the human genomic DNA to establish a circular YAC. Typically, the frequency of recombinant insert capture is 0.01-1% for single-copy genes by TAR cloning. To further refine the TAR cloning technology, we determined the effect of GC content on target hooks required for gene isolation utilizing the $Tg\cdot\AC$ mouse transgene as the targeted region. For this purpose, a set of vectors containing a B1 repeated hook and Tg AC-specific hooks of variable GC content (from 18 to 45%) was constructed and checked for efficiency of transgene isolation by radial TAR cloning. Efficiency of cloning decreased approximately 2-fold when the TAR vector contained a hook with a GC content ~${\leq}23$% versus ~40%. Thus, the optimal GC content of hook sequences required for gene isolation by TAR is approximately 40%. We also analyzed how the distribution of high GC content (65%) within the hook affects gene capture, but no dramatic differences for gene capturing were observed.
A chitinase gene of Serratia marcescens ATCC 27117 was cloned and expressed in Escherichiu di. A genomic library of S, marcescens was constructed with pUC 19 and screened using the swollen chitin agar plate for chitinolytic clones. A positive clone showing chitinclearance contains a recombinant pCHI 89, composed of 8.9 Kb chromosomal DNA fragment and pUC 19. Plasmid pCHI 89 produced 58 KD chitinase in E. coli, which was coincided with one of five extracellular chitinases produced by S. nzarccscens. Restriction endonuclease cleavage sites of the 8.9 Kb insert DNA fragment were mapped. E. coli JM109 harboring pCHI 89 inhibits the growth of a plant pathogenic fungus, Fusarium oxysporum.
Santiago, Clayton P.;Quick, Laura N.;Wilson, James W.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.21
no.11
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pp.1123-1126
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2011
The IncP plasmid R995 has been a useful self-transmissible, broad-host-range vector for a number of applications including the recombinase/conjugation-based cloning of large genomic DNA segments. However, R995 derivatives (or related plasmids) expressing a wide range of different resistance markers and Flp recombinase target sites do not exist in the literature. In addition, documented strategies for applying such plasmids in cloning applications that take advantage of conjugation for the convenient isolation and recovery of constructs are extremely limited. Here, we report a new series of R995 plasmids with alternative markers to increase options for applications in backgrounds already expressing resistance to a particular antibiotic(s). These R995 plasmids have been engineered to contain FRT sites that can be used for recombinase-based cloning. We demonstrate the utility of this approach by cloning 20 kb regions from the Salmonella Typhimurium and Escherichia coli genomes and by cloning DNA from an exogenous plasmid source. To our knowledge, this represents the first systematic engineering of an intact, self-transmissible IncP plasmid with a series of alternative antibiotic markers and FRT sites.
Lee, Sang-Hoon;Bidle, Kay;Falkowski, Paul;Marchant, David
Ocean and Polar Research
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v.27
no.2
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pp.205-214
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2005
From ancient Antarctic glacier ice, we extracted total genomic DNA that was suitable for prokaryotic 16S rDNA gene cloning and sequencing, and bacterial artificial chromosome (BAC) library and end-sequencing. The ice samples were from the Dry Valley region. Age dating by $^{40}Ar/^{39}Ar$ analysis on the volcanic ashes deposited in situ indicated the ice samples are minimum 100,000-300,000 yr (sample DLE) and 8 million years (sample EME) old. Further assay proved the ice survived freeze-thaw cycles or other re-working processes. EME, which was from a small lobe of the basal Taylor glacier, is the oldest known ice on Earth. Microorganisms, preserved frozen in glacier ice and isolated from the rest of the world over a geological time scale, can provide valuable data or insight for the diversity, distribution, survival strategy, and evolutionary relationships to the extant relatives. From the 16S gene cloning study, we detected no PCR amplicons with Archaea-specific primers, however we found many phylotypes belonging to Bacteria divisions, such as Actinobacteria, Acidobacteria, Proteobacteria $({\alpha},\;{\beta},\;and\;{\gamma})$, Firmicutes, and Cytophaga-Flavobacterium-Bacteroid$. BAC cloning and sequencing revealed protein codings highly identical to phenylacetic acid degradation protein paaA, chromosome segregation ATPases, or cold shock protein B of present day bacteria. Throughput sequencing of the BAC clones is underway. Viable and culturable cells were recovered from the DLE sample, and characterized by their 16S rDNA sequences. Further investigation on the survivorship and functional genes from the past should help unveil the evolution of life on Earth, or elsewhere, if any.
To clone the gene coding for steroid $\Delta^1$-dehydrogenase of Arthrobacter simplex, its genomic library was constructed with a , $\lambda$gt11 expression vector and immunoscreened with antiserum against the enzyme. One positive clone was found to carry a 1.6-kb EcoR I restriction endonuclease fragment of A. simplex DNA. The restriction map of the 1.6-kb EcoR I fragment was determined after cloning of the DNA into pBS vector.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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