Fructose in the form of sucrose and high fructose corn syrup is absorbed by the intestinal transporter and mainly metabolized in the small intestine. However, excess intake of fructose overwhelms the absorptive capacity of the small intestine, leading to fructose malabsorption. Carbohydrate response element-binding protein (ChREBP) is a basic helix-loop-helix leucine zipper transcription factor that plays a key role in glycolytic and lipogenic gene expression in response to carbohydrate consumption. While ChREBP was initially identified as a glucose-responsive factor in the liver, recent evidence suggests that ChREBP is essential for fructose-induced lipogenesis and gluconeogenesis in the small intestine as well as in the liver. We recently identified that the loss of ChREBP leads to fructose intolerance via insufficient induction of genes involved in fructose transport and metabolism in the intestine. As fructose consumption is increasing and closely associated with metabolic and gastrointestinal diseases, a comprehensive understanding of cellular fructose sensing and metabolism via ChREBP may uncover new therapeutic opportunities. In this mini review, we briefly summarize recent progress in intestinal fructose metabolism, regulation and function of ChREBP by fructose, and delineate the potential mechanisms by which excessive fructose consumption may lead to irritable bowel syndrome.
Sugar ester compounds were synthesized in organic solvent using lipase. Anhydrous pyridinc was selected as ;I solvent because of reasonable solubility of sugar. The synthesis of sugar ester compound was catalyzed by Pseudomonas sp. lipase in the reaction system containing anhydrous pyridine as .i solvent and vinyl butylate as an acyl donor. The analysis of the reaction product by TLC and GC showed thilt monobutyryl and dibutyryl fructose esters were synthesized by transesterification reaction between fructose and vinyl butyrate. Optimal conditions for the transesterification reaction were as follows: the ratio of fructoselvinyl butylate, I : lO(M : M): reaction temperature, 40^{\circ}C.$, velocity of shaking, 150 rprn: concentration of enzyme, 10 mglml. The longer the reaction period, the higher the conversion rate, and the conversion rate reached up to 90% after about 10 days of reaction. Monobutyryl fructose was mainly synthesized in the early stage of reaction, but the amount of dibutyryl fructose increased gradually as the rcdction progressed. When a small amount of water was added to the reaction mixture (micro-water system), the reaction rate decreased, while that of rnonobutyr~l fructosc increased. Only monobutyryl fructose was obtained when 1% water was added to the reaction mixture.
High fructose intake induces hyperglycemia and hypertension. However, the mechanism by which fructose induces metabolic syndrome is largely unknown. We hypothesized that high fructose intake induces activation of the renin-angiotensin system (RAS), resulting in hypertension and metabolic syndrome. We provided 11-week-old Sprague-Dawley rats with drinking water, with or without 20% fructose, for two weeks. We measured serum renin, angiotensin II (Ang II), and aldosterone (Aldo) using ELISA kits. The expression of RAS genes was determined by quantitative reverse transcription polymerase chain reaction. High fructose intake increased body weight and water retention, regardless of food intake or urine volume. After two weeks, fructose intake induced glucose intolerance and hypertension. High fructose intake increased serum renin, Ang II, triglyceride, and cholesterol levels, but not Aldo levels. High fructose intake increased the expression of angiotensinogen in the liver; angiotensin-converting enzyme in the lungs; and renin, angiotensin II type 1a receptor (AT1aR), and angiotensin II type 1b receptor (AT1bR) in the kidneys. However, expression of AT1aR and AT1bR in the adrenal glands did not increase in rats given fructose. Taken together, these results indicate that high fructose intake induces activation of RAS, resulting in hypertension and metabolic syndrome.
Undifferentiated suspension cells had the ability to transfer glucose and fructose actively, but the suspension culture cells were unable to transfer saccharide without previously splitting to monosccarides. The uptake of fructose showed the low- and high-affinity system compared to of glucose, which possessed only one saturable uptake system. In this paper, the low affinity system of the uptake of fructose has been studied intensively. Glucose did not inhibit the low affinity system of fructose competitively. The Km value was 47 mM for fructose, 7.4 mM for glucose and Vmax was 69 $\mu$mol/h.g fresh weight for fuctose, 9.8 $\mu$ mol/h.g fresh weight for glucose. Metabolizer inhibitors, both 50 $\mu$M of CCCP and DNP, inhibited 70% of the uptake of the low affinity system of fructose. The proton ions were accompanied by the uptake of fructose. The stoichiometry showed ratio of proton to fructose was 0.17. The mechanism ofthe uptake was fructose-proton-symport. The molecules of fructose accmululated inside 25 times more than outside. Therefore, the low affinity system of fructose was not mere diffusion, but depended on metabolic energy and thus transported actively. The importance of this system was discussed.
This study was designed to determine whether acute fructose or sucrose administration at different levels (0.05 g/kg, 0.1 g/kg or 0.4 g/kg body weight) might affect oral glucose tolerance test (OGTT) in normal and type 2 diabetic rats. In OGTT, there were no significant differences in glucose responses between acute fructose- and sucrose-administered groups. However, in normal rats, the AUCs of the blood glucose response for the fructose-administered groups tended to be lower than those of the control and sucrose-administered groups. The AUCs of the lower levels fructose- or sucrose-administered groups tended to be smaller than those of higher levels fructose- or sucrose-administered groups. In type 2 diabetic rats, only the AUC of the lowest level of fructose-administered (0.05 g/kg body weight) group was slightly smaller than that of the control group. The AUCs of fructose-administered groups tended to be smaller than those of the sucrose-administered groups, and the AUCs of lower levels fructose-administered groups tended to be smaller than those fed higher levels of fructose. We concluded from this experiment that fructose has tendency to be more effective in blood glucose regulation than sucrose, and moreover, that smaller amount of fructose is preferred to larger amount. Specifically, our experiments indicated that the fructose level of 0.05 g/kg body weight as dietary supplement was the most effective amount for blood glucose regulation from the pool of 0.05 g/kg, 0.1 g/kg and 0.4 g/kg body weights. Therefore, our results suggest the use of fructose as the substitute sweetener for sucrose, which may be beneficial for blood glucose regulation.
A process for the production of mannitol from fructose (5% to 25%) using Leuconosyoc mesenteroides NRRL B-1149 was investigated. Fermentations were carried out in bat도 of fed-batch fermentations without aeration at 28℃, pH 5.0. When 5% fructose was used in batch culture fermentation, the yield of mannitol was 78% of that expected theoretically. When the fructose concentration was increased to 10%, the yield dropped to 59.6% of the theoretical value. However, in the fed-batch culture, using 10% fructose, the yield was 81.9% of the theoretical value. In a 15% fructose fed-bat도 culture, with 5% fructose being added initially and the other 10% fructose being added as a continuous supply, the final yield was 83.7% of the theoretical yield. When 20% fructose was used in the same manner, the yield was 89.5% of theoretical yield.
The purpose of this thesis is to investigate whether taurine supplementation in combination with fructose improves both energy metabolism and exercise capacity. Eight collegiate female subjects were recruited for the study. Each subject went through threecross-over designs: control(fluid), fructose, and taurine plus fructose supplementation trials. Subjects received taurine supplementation 100 mg/kg a day for two weeks. After the supplementation, all subjects take 10% fructose at 15 min prior to exercise, immediately before exercise, and every 15 min during exercise. Subjects received 150 ml fluid as placebo during the same procedure. The subjects performed submaximal exercise at the exercise intensity of 60% for 45 min and then 80% of maximal oxygen uptake (VO2max) until exhaustion time. A 10ml blood sample was taken for measuring the level of glucose, ammonia, lactate, free fatty acids, and insulin every 15 min during exercise at 60% of VO2max. The blood glucose levels was significantly higher at 45 min and 50 min exercise after supplementation of fructose, and immediately before exercise and 50 min exercise after taurine plus fructose compared to the placebo trial. However, the values tended to be lower in taurine plus fructose supplementation compared to the fructose trial. The levels of both lactate and ammonia were significantly lower compared to the placebo, while the exhaustion time was significantly increased. The level of free-fatty acids was significantly lower at 30, 45, and 50 min after fructoseand fructose plus taurine supplementation compared to the placebo trial. The level of glucagon was significantly lower at 15, 30, 45, and 50 min after fructose and fructose plus taurine supplementation compared to the placebo trial. There was no differences in insulin concentration among three treatments. This thesis concludes that combined taurine and fructose supplementation prior to exercise may improve exercise tolerance time and energy metabolism, lowering the muscle fatigue factors such as lactate and ammonia.
The effect of metabolic substrate fructose on the force of contraction of isolated rat atria depressed with lidocaine was determined. Fructose produced dose-dependent increase in the force of contraction of isolated atria depressed by substrate-free Krebs-Ringer bicarbonate medium. The maximally effective concentration of fructose was 30 mM. The isolated atria, suspended in Krebs-Ringer bicarbonate glucose medium aerated with 95% $O_2-5%CO_2$at $30^{\circ}C$ and pH 7.4, were depressed 50% by approximately 2.34 mg/100 ml of lidocaine. Addition of 30 mM fructose to these depressed atria resulted in a marked increase in the contractile force similar to that with pyruvate and acetate. Fructose had no significant effect, however, on atria exposed to low-calcium medium. The results are consistent with a previous report suggesting blockade by lidocaine of the uptake or utilization of glucose in the glycolytic pathway, and further pinpoint the blockade as an early step in the glycolytic sequence prior to the phospho-fructokinase step.
Soo-Jin Lee;Sung-E Choi;Seokho Park;Yoonjung Hwang;Youngho Son;Yup Kang
Molecules and Cells
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v.46
no.8
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pp.496-512
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2023
A fructose-enriched diet is thought to contribute to hepatic injury in developing non-alcoholic steatohepatitis (NASH). However, the cellular mechanism of fructose-induced hepatic damage remains poorly understood. This study aimed to determine whether fructose induces cell death in primary hepatocytes, and if so, to establish the underlying cellular mechanisms. Our results revealed that treatment with high fructose concentrations for 48 h induced mitochondria-mediated apoptotic death in mouse primary hepatocytes (MPHs). Endoplasmic reticulum stress responses were involved in fructose-induced death as the levels of phosho-eIF2α, phospho-C-Jun-N-terminal kinase (JNK), and C/EBP homologous protein (CHOP) increased, and a chemical chaperone tauroursodeoxycholic acid (TUDCA) prevented cell death. The impaired oxidation metabolism of fatty acids was also possibly involved in the fructose-induced toxicity as treatment with an AMP-activated kinase (AMPK) activator and a PPAR-α agonist significantly protected against fructose-induced death, while carnitine palmitoyl transferase I inhibitor exacerbated the toxicity. However, uric acid-mediated toxicity was not involved in fructose-induced death as uric acid was not toxic to MPHs, and the inhibition of xanthine oxidase (a key enzyme in uric acid synthesis) did not affect cell death. On the other hand, treatment with inhibitors of the nicotinamide adenine dinucleotide (NAD)+-consuming enzyme CD38 or CD38 gene knockdown significantly protected against fructose-induced toxicity in MPHs, and fructose treatment increased CD38 levels. These data suggest that CD38 upregulation plays a role in hepatic injury in the fructose-enriched diet-mediated NASH. Thus, CD38 inhibition may be a promising therapeutic strategy to prevent fructose-enriched diet-mediated NASH.
Rats that are fed a fructose-rich diet develop hypertension, insulin resistance, and hypertriglyceridemia. To elucidate whether altered expression levels of endothelin-1 and nitric oxide synthase are related to the development of insulin-resistant hypertension, we examined the present study. Male Sprague-Dawley rats were fed a fructose-rich diet for 5 weeks. Systolic blood pressure significantly increased in fructose-fed rats. While serum free fatty acid and plasma nitrite/nitrate levels did not significantly differ between the fructose-fed and control groups, plasma insulin and serum triglyceride concentrations significantly increased in the former. Endothelin-1 mRNA expression in the aorta increased in fructose-fed rats. Neither the protein expression of constitutive nitric oxide synthase nor that of inducible nitric oxide synthase were significantly affected by fructose feeding. However, nitrite/nitrate levels in the aorta were significantly increased. These results suggest that an increase in vascular endothelin-1 is an important contributing factor to the development of hypertension in fructose-fed rats. However, the vascular nitric oxide pathway may not be causally related to the development of fructose-induced hypertension.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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