Cyanobacteria의 광합성 보조색소인 phycocyanin의 PC operon(cpc gene)을 PCR로 증폭하고, 제한효소로 처리하여 RFLP pattern을 비교하였다. Intergenic spacer sequence를 포함한 cpc gene은 실험에 사용한 cyanobacteria 균주 모두에게 증폭되었으며, 산물의 size는 약 700 bp였다. PCR산물을 5종의 제한효소로 처리한 결과 AluI, MspI, HaeIII는 같은 속내으ㅐ 균주간에 동일한 pattern을 나타내어 속 구분이 가능하였으며 CfoI은 Anabeana와 Synechocystis속의 균주간에 구별되는 양상을 나타내어 속내 균주 구별에 유용하였다. Restriction enzyme profile에 의한 phenogram에서 Anabeana, Chlorogloea, Synechyhocystis는 각각 하나의 cluster를 형성하여 cyanobacteria의 분류에 PC-IGS의 RFLP pattern이 유용함을 알 수 있었다.
The rice belonging to Oryza sativa is not only has significant economic importance, for it is the major source of nutrition for about 3 billion all around the world. But also plays a vital role as a model organism, because it has a number of advantages to be a model plant, such as efficient transformation system and small genome size. Many methods and techniques have been conducted to attempt to distinguish different Oryza sativa species, such as amplified fragment length polymorphism (AFLP), random amplified polymorphic DNA (RAPD), simple sequence repeat (SSR) and so on. However, studies using sequence analysis of internal transcribed spacer (ITS), a region of ribosomal RNA has not been reported until now. This study was undertaken with an aim to understand the phylogenetic relationships among sixteen isolates of Oryza sativa collected from abroad and fifteen isolates collected from Korea, using ribosomal RNA (rRNA) internal transcribed spacer (ITS) sequences to compare the phylogeny relationships among different Oryza sativa species. The size variation obtained among sequenced nuclear ribosomal DNA (nrDNA) ITS region ranged from 515bp to 1000bp. The highest interspecific genetic distance (GD) was found between Sfejare 45 (FR12) and Anapuruna (FR15). Taebong isolate showed the least dissimilarity of the ITS region sequence with other thirty isolates. This consequence will help us further understanding molecular diversification in intra-species population and their phylogenetic analysis.
A novel protein (HEAAE, High Essential Amino Acid Encoding Protein), rich in essential amino acids ($75{\%}$ of total), was designed and constructed in our laboratory. The designed peptides were analyzed by SYBLE and stable secondary and tertiary structures were predicted. The monomeric form (HEAAE-1) of the protein consists of 20 amino acid residues with four additional amino acids comprising a potential ${\beta}$-turn (HEAAE-4). Size exclusion analysis demonstrated that the monomer is self-aggregates in aqueous solution to form higher ordered multimeric structures, which are very reminiscent of natural plant storage proteins. The DNA encoding this amino acid sequence was synthesized, and from this monomeric gene fragment (heaae-1), the stable tetrameric form of the gene (heaae-4) was generated by subcloning into the E. coli expression vector pKK223-3. A clear 6 kDa polypeptide band corresponding to the molecular weight of the dimeric form (HEAAE-2) was detected. The smeared band which appeared around the molecular weight corresponding to HEAAE-4 of 11 kDa suggested that the tetramer form of this protein might be processed into smaller size products.
Terminal restriction fragment length polymorphism (T-RFLP) is a method that has been frequently used to survey the microbial diversity of environmental samples and to monitor changes in microbial communities. T-RFLP is a highly sensitive and reproducible procedure that combines a PCR with a labeled primer, restriction digestion of the amplified DNA, and separation of the terminal restriction fragment (T-RF). The reliable identification of T-RF requires the information of nucleotide sequences as well as the size of T-RF. However, it is difficult to obtain the information of nucleotide sequences because the T-RFs are fragmented and lack a priming site of 3'-end for efficient cloning and sequence analysis. Here, we improved on the T-RFLP method in order to analyze the nucleotide sequences of the distinct T-RFs. The first method is to selectively amplify the portion of T-RF ligated with specific oligonucleotide adapters. In the second method, the termini of T-RFs were tailed with deoxynucleotides using terminal deoxynucleotidyl transferase (TdT) and amplified by a second round of PCR. The major T-RFs generated from reference strains and from T-RFLP profiles of activated sludge samples were efficiently isolated and identified by using two modified T-RFLP methods. These methods are less time consuming and labor-intensive when compared with other methods. The T-RFLP method using TdT has the advantages of being a simple process and having no limit of restriction enzymes. Our results suggest that these methods could be useful tools for the taxonomic interpretation of T-RFs.
The $\beta$-1,4-endoglucanase gene from Actinomyces sp. 40 was cloned into Escherichia coli DH5$\alpha$ with pUC19. Chromosomal DNA from Actinomyces sp. 40 was cleaved with the restriction enzyme Sau3AI and ligated into pUC19 for the transformation of Escherichia coli DH5$\alpha$. Positive clones of $\beta$-1,4-endoglucanase gene were detected as the clear zones on a medium supplemented with carboxymethylcellulose (CMC). This transformant possessed a single plasmid, designated pDS1, which contained the vector DNA and a 3.5 kilobase (kb) Sau3AI insertion fragment encoding endoglucanase. The size of the cloned fragment was reduced to 2.0 kb. The endoglucanase activity produced by the E. coli DH5$\alpha$ (pDS6) was higher than that of Actinomyces sp. 40 strain. The optimum pH and temperature of the cloned enzyme were pH 4.0$\sim$5.0 and 55$^{\circ}C$, respectively. The cloned enzyme was stable at 55$^{\circ}C$ or below and in buffer ranging from pH 4.0 to 7.0. The enzyme degraded CMC but did not degrade xylan, cellobiose, and methyl-umbelliferylcellobiopyranoside (MUC).
Park, Su-Ryun;Seo, Mi-Suk;Lee, Sang-Kug;Park, Jee-Young;Kim, Hye-Ran;Lee, Hyo-Yeon;Bang, Jae-Wook;Lim, Yong-Pyo
Journal of Plant Biotechnology
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제2권2호
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pp.89-96
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2000
For large DNA fragment transformation in dicots and monocots, BIBAC2 vector system was applied to Arabidopsis thaliana and Oryza sativa L. cv. Jinmi as a model plant, respectively. For Arabidopsis, the Th1 gene in T23L3 BAC clone whose size is about 90 kb was used as the target gene source for transformation. Because T23L3 BAC clone was originally constructed in pBelloBAC11, the target gene was reconstructed into BIBAC2. As the results of reconstruction, 476 colonies were survived in selection medium containing 40 mg/L kanamycin. In colony hybridization analysis, 24 out of 476 colonies exhibited positive signals. In the pulsed-field gel electrophoresis analysis, 11 out of 24 positive clones exhibited the band at the location of 90 kb. In Southern hybridization, positive signal band at the location of 90 kb was observed in all 11 transformants. Using these verified clones, Agrobacterium-mediated transformation was applied to Arabidopsis thaliana th1-201 mutant for genetic complementation test. Twelve thousands T$_1$ seeds were harvested, and antibiotic selection test is being analyzed to verify whether these seeds were transformed. for rice, COR356 that contains 150 kb human genomic DNA in a BIBAC2 vector was used as the target gene. As the results of transformation, 151 out of 210 co-cultivated calli were survived in selection medium containing 5 mg/L hygromycin, and 45 out of 151 survived calli were regenerated into plants. Transformation efficiency was 21.6%. Progeny test using 71 seeds is being analyzed now. These results provide the potential that large DNA fragments can be transferred into both dicots and monocot by Agrobacterium-mediate d transformation system.
글루타치온 생산증대를 도모하기 위하여 글루타치온 합성에 관여하는 효소들인 GSH-I 및 GSH-II 유전자들 pBR322 벡터에 클로닝하였다. gshI 유전자를 클로닝하기 위하여 GSH-I 효소활성이 결여된 GS903 균주를 분리하였다. E. coli K-12 염색체 DNA로부터 분리된 3.6Kb PstI DNA 절편을 pBR322 벡터에 클로닝하였다. gshII 유전자는 2.2Kb PstI-BamHI DNA 절편내에 존재하며 이 절편을 pUC13 벡터에 클로닝하였다. 플라스미드의 copy number와 gsh 유전자들을 포함하고 있는 삽입 DNA의 크기의 차이에 의한 gsh 유전자들의 발현 정도를 조사하기 위하여 pGH1090, pGH101, pGH200, pGH201, pLF4, pLF6 그리고 pGH300같은 여러 플라스미드를 사용함으로써 gshI 유전자의 발현이 의해 2배이상 증가하였다. 그러나 벡터 플라스미드내에 존재하는 gsh 유전자들을 포함하는 삽입 DNA의 크기의 차이에 의해서는 gsh 유전자들의 발현이 영향을 받지 않았다.
Shahryari, F.;Safarnejad, M.R.;Shams-Bakhsh, M.;Schillberg, S.;Nolke, G.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제23권8호
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pp.1047-1054
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2013
Witches' broom of lime is a disease caused by Candidatus Phytoplasma aurantifolia, which represents the most significant global threat to the production of lime trees (Citrus aurantifolia). Conventional disease management strategies have shown little success, and new approaches based on genetic engineering need to be considered. The expression of recombinant antibodies and fragments thereof in plant cells is a powerful approach that can be used to suppress plant pathogens. We have developed a single-chain variable fragment antibody (scFvIMP6) against the immunodominant membrane protein (IMP) of witches' broom phytoplasma and expressed it in different plant cell compartments. We isolated scFvIMP6 from a naïve scFv phage display library and expressed it in bacteria to demonstrate its binding activity against both recombinant IMP and intact phytoplasma cells. The expression of scFvIMP6 in plants was evaluated by transferring the scFvIMP6 cDNA to plant expression vectors featuring constitutive or phloem specific promoters in cassettes with or without secretion signals, therefore causing the protein to accumulate either in the cytosol or apoplast. All constructs were transiently expressed in Nicotiana benthamiana by agroinfiltration, and antibodies of the anticipated size were detected by immunoblotting. Plant-derived scFvIMP6 was purified by affinity chromatography, and specific binding to recombinant IMP was demonstrated by enzyme-linked immunosorbent assay. Our results indicate that scFvIMP6 binds with high activity and can be used for the detection of Ca. Phytoplasma aurantifolia and is also a suitable candidate for stable expression in lime trees to suppress witches' broom of lime.
HTLV-I 의 gag-pro 유전자 중첩영역내에서 -1 ribosomal frameshifting 이 일어나는 자리를 결정하기 위하여 gag-pro 중첩영역의 일부를 SP6 promoter 를 가진 백터내에 클로닝하였다. 그 결과 닭의 prelysozyme 에서 유래한 5개의 아미노산을 코드하는 합성유전자와 141 bp 로된 gag-pro 중첩영역의 뒤에 Straphylococcus aureus 의 protein A 유전자단편이 연결된 hybrid 유전자를 보유한 플라스미드를 제작하였다. 이 DNA 클론을 주형으로 SP6 RNA polymerase 의 작용에 의해 한종류의 mRNA 를 다량으로 합성하였다. Invitro 에서 합성된 mRNA 로 무세포계에서 단백질을 합성한 결과 21 kDal 의 단백질이 생성되었고 IgG-Sepharose 를 사용한 affinity chromatography 로 합성된 단백질을 순수하게 정제할 수 있었다. 본연구에서 설명한 in vitro 실험계는 Gag-Pro transframe 단백질의 신속한 정제 및 일차구조의 결정에 유익하게 사용될 것으로 보이며 이와 같은 실험의 결과 mRNA 에서 ribosomal frameshifting 이 일어나는 정확한 site 를 결정할 수 있을 뿐 같은 실험의 결과 mRNA 에서 ribosomal frameshifting 이 일어나는 정확한 site 를 결정할 수 있을 뿐 아니가 pro 유전자의 발현에 필요한 frameshift 를 유도하는 tRNA 의 동정도 가능하게 될 것이다.
황해서식 참조기(Pseudosciaena polyactis)에 대한 계군을 분석하기 위한 연구의 일환으로 우선 황해의 목포 연근해에서 채집된 참조기의 난자와 근육으로부터 mt-DNA와 근육 actin을 추출하였다. 난자의 경우 mt-DNA를 추출한 뒤 제한효소로 처리하여 절편다형현상을 관찰하였으며 근육 actin의 경우 단백질 분해효소(Staphylococcus aureus $V_8$ protease)로 처리하여 N-terminal 절편의 다형현상을 각각 관찰하였다. Mt-DNA의 genome 크기는 약 $\16\pm0.2$ Kb였고 전체 절편수는 37개였으며 사용된 20개의 제한효소 중 8개의 제한효소만이 3개 정도의 절편을 보이므로써 유의성을 관찰할 수 있었다 한편 근육 actin을 Staphylococcus aureus $V_8$단백질 분해효소로 처리하였을 때 N-terminal 부위에서 26 KDa 및 16 KDa의 분자량을 갖는 특이절편을 관찰할 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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