Objective: Preimplantation genetic diagnosis (PGD) is reserved for couples with a risk of transmitting a serious and incurable disease, and hence avoids the undesirable therapeutic abortion. In this study, we evaluated the efficacy of PGD for Duchenne muscular dystrophy (DMD) cases by the fluorescent PCR with polymorphic linked markers and the conventional duplex-nested PCR methods. Methods: Biopsy of one or two blastomeres was done from the embryos fertilized by ICSI on the third day after fertilization. We performed two cases of PGD-DMD by the duplex-nested PCR for the causative mutation loci and the SRY gene on Y chromosome. The triplex fluorescent PCR for the mutation loci, the SRY gene and the polymorphic microsatellite marker on X chromosome was applied for two cases of PGD-DMD. Results: By the duplex-nested PCR, successful diagnosis rate was 95.5% (21/22), but we could not discriminate the female embryos whether normal or carrier in this X-linked recessive disease. However, the triplex fluorescent PCR method showed 100% (27/27) of successful diagnosis rate, and all female embryos (n=17) were distinguished normal (n=10) from carrier (n=7) embryos. Unaffected and normal embryos were transferred into mother's uterus after diagnosis. A healthy normal male was achieved after PGD with the duplex-nested PCR method and a twin, a male and a female, were delivered with triplex fluorescent PCR method. The normality of dystrophin gene was confirmed by amniocentesis and postnatal genetic analysis in all offsprings. Conclusion: The fluorescent PCR with polymorphic marker might be useful in improving the specificity and reliability of PGD for single gene disorders.
목 적: 본 연구에서는 삼핵산 반복서열 확장에 의해 발병하는 헌팅톤병, 척수소뇌성 운동실조증과 X-염색체 취약 증후군 등에 대한 착상전 유전진단을 시행하기 위한 전임상 검사에서 진단 방법을 최적화하는 과정을 통해 얻은 결과들에 대해 기술하고자 한다. 연구방법: 단일 림프구를 이용한 임상전 검사에서는 서로 다른 allele를 갖고 있는 환자의 단일 세포를 사용하였으며, 헌팅톤병과 척수소뇌성 운동실조증에서는 fluorescent semi-nested PCR 시행 후 fragment analysis를 수행하였다. X-염색체 취약 증후군의 경우 multiple displacement amplification (MDA) 방법을 이용한 whole genome amplification에서 얻어진 MDA 산물로 fluorescent PCR을 시도하였다. 결 과: 헌팅톤병의 경우 단일 림프구 시료 모두에서 CAG repeats 증폭에 성공하여 100.0%의 증폭성공률과 14.0% allele drop-out (ADO) rate를, 척수소뇌성 운동실조증의 경우 94.7%의 증폭성공률과 5.6%의 ADO rate을 나타내었다. X-염색체 취약 증후군의 경우 fluorescent semi-nested PCR 방법만으로는 단일 림프구 시료에서 CGG repeats이 증폭되지 않았지만, MDA 산물을 이용한 fluorescent PCR 결과 84.2%의 증폭성공률과 31.3%의 ADO rate을 얻을 수 있었다. 결 론: 본 연구를 통해 헌팅톤병과 척수소뇌성 운동실조증의 착상전 유전진단에는 fluorescent semi-nested PCR 방법의 적용이 가능함을 확인하였으며, X-염색체 취약 증후군의 경우에는 MDA를 이용한 fluorescent PCR 방법을 사용해야 함을 알 수 있었다. 유전자의 변이에 대한 분석이 쉽지 않은 단일 유전자 이상에 대한 착상전 유전진단의 경우 다양한 유전자 분석 방법을 이용한 단일 세포에서의 진단 방법의 최적화 연구가 필수적으로 선행되어야 할 것으로 사료된다.
The efficiency of transgenic livestock production could be improved by early screening of transgene-integration and sexing of embryos at preimplantational stages before trasferring them into recipients. We examined the effciency of multiplex PCR analysis for the simultaneous confirmation of the trasgene and sex during the preimplantational development of bovine embryos and the possibility of green fluorescent protein(GFP) gene as a non-invasive marker for the early screening of transgenic embryos. The GFP gene was microinjected into the male pronuclei of bovine zygotes produced in vitro. The injected zygotes were co-cultured in TCM-199 containing 10% FCS with boving oviductal epithelial cells in a 5% CO2 incubator. Seventeen(13.0%) out of 136 gene-injected bovine zygotes developed by multiplex PCR analysis and the expression of GFP was detected by observing green fluorescence in embryos under a fluorescent microscope. Eight(67%) of 12 embryos at 2-cell to blastocyst stage were positive in the PCR analysis, but only two(11.8%) of 17 blastocysts expressed the GFP gene. Their sex was determined as 7 female and 5 male embryos by the PCR analysis. The results indicate that the screening of GFP gene and sex in bovine embryos by PCR analysis and fluorescence detection could be a promisible method for the preselection of transgenic embryos.
The efficiency of transgenic livestock animal production may be improved by early selection of transgenci preimplantation embryos. To examine the possibility of GFP gene as a non-invasive marker for the early screening of transgenic embryo, the GFP gene was microinjected into rabbit zygotes and the later stages of preimplantation embryos were examined for the expression of GFP. The presence of injected DNA was detected by PCR analysis and the expression of GFP was detected by observing green fluorescence in embryos under a fluorescent microscope. Out of 108 GFP gene-injected rabbit zygotes, seventy three(67.6%) were fluorescence-positive. When 11 fluroresecence-positive blastocysts were analyzed for the presence of GFP gene by PCR, 6(54.5%) were positive, and all of the 8 flrouescence-negative blastocysts were also negative by PCR. The results indicate that the screening of transgene in rabbit embryos by PCR analysis and GFP detection could be a promising method for the preselection of transgenic embryos.
A new GFP-based T-vector for cloning of PCR products was developed by using a green fluorescent protein (GFP) as a mafker. In order to facilitate the DNA inserts, multiple restriction sites, SP6 and T7 RNA polymerase promoter sites, were introduced close to the PCR DNA insertion site of a pCRGv vector. The XcmI-digested pHNT plasmid can be used to clone a 3' A-overhanged PCR DNA amplified by Taq DNA polymerase. A potential method of easing some difficulties from its use along with its cost savings proveded by this vector are likely to lead to the replacement of other T-vectors for PCR DNA cloning.
It is essential to analyze rare mutations in many fields of biomedical research. However, the detection of rare mutations is usually failed due to the interference of predominant wild-type DNA surrounded. Herein we describe a sensitive and facile method of detecting rare point mutation on the basis of allele-specific amplification in emulsion PCR. The identification and selective amplification of rare mutation are accomplished in one-pot reaction. The allele-specific primers coupled on magnetic beads allow the exclusive amplification and enrichment of the mutant amplicons. The productive beads bearing mutant amplicons are subsequently stained with the fluorescent dyes. Thus, the rare point mutations with a percentage as low as 0.1%, can be detected by fluorescent analysis. The relative percentages of mutation among different samples can be roughly accessed by counting the fraction of fluorescent positive beads through flow cytometry.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제13권1호
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pp.31-35
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2006
The ubiquitin conjugating enzyme 2 (E2) is core component of ubiquitin proteasome pathway (UPP) which represents a selective mechanism for intracellular proteolysis in eukaryotic cells. The E2 has been implicated in the intracellular transfer of ubiquitin to target protein. We show here the involvement of E2 in antiviral immune of Bombyx mori to Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV). In this study, mRNA fluorescent differential display PCR (FDD-PCR) was performed with BmNPV highly resistant silkworm strain NB and susceptible silkworm strain 306. At 24 h post BmNPV infection, FDD-PCR with the arbitrary primer AP34 showed that one cDNA band was down-regulated in the midgut of resistant strain, but highly expressed in susceptible strain. The deduced amino acid sequence of this cDNA clone share 99% identity with the recently published B. mori ubiquitin conjugating enzyme E2 (Genbank NO: DQ311351). Fluorescent quantitative PCR corroborated down regulation of E2 in resistant strain. We there conclude that BmNPV infection evokes strong response of susceptible strain including activation of UPP. BmNPV may evolve escape mechanisms that manipulate the UPP in order to persist in the infected host. In addition, the identification of down-regulation of E2 in resistant strain, as well as structure data, are essential to understanding how UPP operates in silkworm antiviral immune to BmNPV disease.
Baculovirus(WSBV) was isolated from infected Penaeide was collected from shrimp farm at southern sea of Korea from 1993 to 1995. The Infectious virus was purified and used for diagnosis of infected shrimp. Anti-viral serum were used for immunological detection as enzyme linked immunoabsorbent assay(ELISA) and indirect fluorescent antibody technique(IFAT). In IFAT, stomach, lymphoid organ and antenae gland of infected shrimp showed fluorescent reaction. In ELISA, tissues of spontaneously infected shrimp appeared higher O.D. values than in artificial infected shrimp. Primer set was constructed from sequence of 420bp of cloned Baculovirus(WSBV) genome. Specific band for infected shrimp was detected in Polymerase chain reaction(PCR)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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