We designed the optimal operational strategy in repeated fed-batch ethanol fermentation using Sacchromyces cerevisiae ATCC 24858 in views of ethanol yield, specific ethanol production rate, and ethanol productivity, when the aeration rate were controlled at 0.0 and 0.33 vvm. Coincidentally, the time intervals of withdrawal-fill of culture medium (24 and 36 h) were investigated. Ethanol yield and ethanol productivity when the aeration was carried out at 0.33 vvm were superior to those when the aeration was not carried out. Additionally, those parameters when the time interval of withdrawal-fill of culture medium was 24 h were superior to those when time interval of withdrawal-fill of culture medium was 36 h. The total ethanol production reached at the greatest value, 703.8 g-ethanol, when the aeration was carried out at 0.33 vvm and the time interval of withdrawal-fill of culture medium was 24 h. In this study, we verified experimentally the necessity of designing the operational strategy for increasing ethanol production in terms of aeration rate and time interval of withdrawal-fill of culture medium in the repeated fed-batch ethanol fermentation.
Methylobacillus sp. SK1, an obligate methylotroph, was cultivated in a fed-batch culture using DO as a methanol feeding indicator with a micro computer-aided control system. While 2.07g/l of cell density was obtained after 13 hr in the batch culture (initial methanol concentration: 1.0%(v/v)),45.3g/l of cell density was obtained after 17 hr by feeding methanol and metal ions in the fed-batch culture with oxygen supply. The high-density biomass was obtained in short cultuivation time by fed-batch culture with feedback control, and consequently the biomass productivity was significantly increased. It was mainly due to extension of logarithmic growth period by methanol feeding without methanol inhibition and intensive aeration without DO limitation with microcomputer-aided control system.
A plasminogen kringle domain 1 to 3, rKl-3, was expressed in Escherichia coli under the control of T7 promoter. For the cost-effective production of rKl-3, the induction process was analyzed and optimized. Induction characteristics with lactose were analyzed in terms of induction time and inducer concentration in various culture conditions including batch and high-cell-density fed-batch cultures. In the fed-batch culture, the induction around 6 h after initiation of the DO-stat fed-batch culture resulted in the highest expression level of rKI-3 among the induction points examined. The highest demand of oxygen at this point was crucial for the maximum expression level of rKI-3. As the lactose concentration increased, the expression level also increased, though the expression level showed a plateau above a concentration of 14 mM of lactose. Lactose acted less specifically than IPTG since most of it was hydrolyzed to glucose and galactose. However, using lactose, the cell growth and the maximum expression level of rKl-3 increased by 20% and 24%, respectively, compared with those using IPTG in the fed-batch culture. The lactose seemed to be hydrolyzed by intracellular and extracellular $\beta$-galactosidase liberated by cell lysis at the same time. Residual concentration of glucose was maintained to a a limit of detection by high performance liquid chromatography, and galactose was not consumed by the host strain Escherichia coli BL2l(DE3).
For optimal production of L-tryptophan using a regulatory mutant of Escherichia coli the relationship between product formation and acid production was investigated. Experimental results showed that the production level of L-tryptophan was lowered as the specific acid production rate increased. In order to reduce the amount of acid produced during the fermentation, a controlled fed-batch fermentation was employed. In this fed-batch process, the feed rate of the nutrient feed medium was controlled in relation to the oxygen level in the culture and thus the growth of the cells was regulated in such n way that the oxygen demand of the culture could not exceed the oxygen sup-ply. When E. coli cells were cultivated in a controlled fed-batch mode of tormentor operation, the specific acid production rate was significantly reduced and L-tryptophan production was increased as much as five times that obtained in a conventional fed-batch fermentation.
To examine the feasibility of the long-term production of the human granulocyte colony stimulating factor (hG-CSF) using the $_{L}-arabinose$ promoter system of Escherichia coli, flask relay culture and cyclic fed-batch culture were performed. In the flask relay culture, it was found that the pismid was maintained stably up to about 170 generations in an uninduced condition, whereby the cells could also maintain the capability of expressing hG-CSF expression were maintained stably up to at least 100 generations. In contrast, in the cyclid fed-batch culture, segregational plasmid instability was observed within about 4 generations after induction, even though the cell growth and hG-CSF production reached their maximum balues, 78.0 g/l of dry cell weight and 7.0 g/l of hG-CSF, respectively. It would appear that, when compared to the flask relay culture, the high-cell density and high-level expression of hG-CSF in the cyclic fed-batch cultrure led to the segregational plasmid instability; in other words, a severe metabolic burden existe on the cells due to the high-level expression of hG-CSF. Accordingly, based on these long-term cultures, the segregational and structural plasmid instability was observed and a strategy to overcome such problems could be designed.
A process of organically bound germanium preparation was developed for healthy food using inorganic germanium adapted Saccharomyces cerevisiae. Adaptations of Saccharomyces cerevisiae against inorganic germanium were successively carried out through stepwise increase of GeO$_{2}$ concentration in order to produce high quantities of germanium bound yeast. Productivity of yeast and quantities of germanium in yeast were obtained 70.2 g/l and 9780 ppm, repectively, when adapted yeast and fed batch culture were used. Germanium taken-up yeast is to be organically bound germanium by evidence of no difference of germanium content after dialysis.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1979.10a
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pp.242-242
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1979
The general efforts of applied research and development can be divided into product development, process development, process design, process equipment design, and operation The fed batch culture as one effort of theprocess development in fermentation industry has been practiced since the early times of human history. One particular industrial application with long history is in the cultivation of the baker's yeast where the glucose effect at relatively high glucose concentration is the general rule.
A highly productive fed-batch fermentation process was developed for the production of L-ornithine by using a new stabilized strain, Breviabcterium ketoglutamicum BK52. Fed-batch cultures with a continuous feeding of the complex medium were conducted on various operating conditions. The optimal concentration of phosphate in the complex medium was 2.1g/L. The optimal feeding rate of L-arginine was 0.028g/L/hr. The optimal feeding point of the complex medium was determined to be at 40 OD of the cell mass. The final L-ornithine concentrations within 64hrs of cultivation in 5 and 50 liter fermenters were 73g/L and 71g/L, respectively. The maximum overall L-ornithine productivity was 1.14g/L/hr which was about 2 times higher than that of the conventional fed-batch culture with intermittent feeding. The overall productivity of the fermentation system is remarkably improved by employing the optimized conditions, and it offers a significant potential for industrial application.
To enhance the production of flavonoids [baicalin, wogonin-7-Ο-glucuronic acid (GA)], which are secondary metabolites of Scutellaria baicalensis Georgi(G.) plant cells, a multilayer perceptron control system was applied to regulate the substrate feeding in a fed-batch cultivation. The optimal profile for the substrate feeding rate in a fed-batch culture of S. baicalensis G. was determined by simulating a kinetic model using a genetic algorithm. Process variable profiles were then prepared for the construction of a multilayer perceptron controller that included massive parallelism, trainability, and fault tolerance. An error back-propagation algorithm was applied to train the multiplayer perceptron. The experimental results showed that neurocontrol incorporated with a genetic algorithm improved the flavonoid production compared with a simple fuzzy logic control system. Furthermore, the specific production yield and flavonoid productivity also increased.
Fed-batch fermentation was used to produce the high concentrations of poly-$\beta $-hydroxybutyrate (PHB) and poly-$\beta $-(hydroxybutyrate-co-hydroxyvalerate) (PHB/V). Specific growth rate ($\mu $), yield of cell from glucose (Y$_{x/s}$) were calculated from the two samples in 3 to 5 hours of interval and they were reflected on the determination of glucose feeding rate to maintain the glucose concentration at around 10 g/l in the culture broth. PHB was accumulated after the nitrogen became limited at 60 g/l of dry cell weight by changing ammonia water to 4N-NaOH solution. As results, the final dry cell weight (DCW) of 170 g/l, PHB of 115 g/l were obtained in 50 hours and the overall productivity was 2.4 g/l$\cdot $h. After PHB accumulation, cosubstrate of glucose and propionic acid (PA) was fed to accumulate PHB/V. But, PA feeding rate was decreased from 3 g/l$\cdot $h to 1 g/l$\cdot $h to prevent PA from accumulating to high level in the broth, which is very inhibitory to the cells. As results, DCW, PHB and PHV were 147.5 g/l, 90 g/l and 8 mole % of hydroxyvalerate, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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