The aerobic batch growth of Issatchenkia orientalis DY252 with glucose and fructose medium was investigated at 32$\^{C}$ and pH 5.0. Aerobic ethanol production was evident with yeast I, orientalis. A diauxic lag of about 1 h between growth on glucose and growth on ethanol during batch culture was observed. However, no diauxic growth occurred with fructose. As the incubation temperature was increased from 32 to 39$\^{C}$, viability at the end of each batch culture declined significantly, from 93 to 43%, Unlike the effect of temperature, viability was not greatly affected by incubation pH, and cell yield values in a range of 0.45-0.48 were obtained. In order to overcome overflow metabolism, a fedbatch culture under glucose limitation was carried out. Compared with aerobic batch culture, about 10% improvement in cell yield was achieved with a fed-batch culture in optimal conditions.
A kinetic model incorporating cell morphology in cephalosporin C biosynthesis by Cephalosporium amemoniurn was developed. The double-substrate Double-substrate kinetic model was used to describe cell growth. Methionine controlled the rate of growth while glucose ultimately controlled the extent of growth. The changes in specific product formation rate were associated with morphologenesis, especially cell differentiation. To increase the productivity of cephalosporin C, the proposed model equations were applied to a fed-batch culture. The algorithm to optimize the fed-batch culture consists of two steps; cell growth was maximized in the growth phase and then cephalosporin C production was maximized in the production phase. The increase of about 33% in the cephalosporin C titre was obtained by the optimal feeding scheduling in comparison with that of batch culture.
To produce staphylokinase (SAK) in B. subtilis WB700, media optimization was carried out and the operation of batch and fed-batch fermentation were compared. Tryptone is a good nitrogen source and its optimum concentration in modified super rich(MSR) media is 15 g/L. When glucose is used as a limiting carbon source in the MSR media, 5 g/L of an optimum glucose concentration was identified for the SAK production under the control of P43 promoter. As the expression of P43 promoter is controlled by the limitation of oxygen, the SAK production was controlled at the 30% DO level in the fed-batch fermentation. Unexpectedly, batch fermentation using MSR media showed 1.5 times higher yield of SAK than that of the fed-batch fermentation. The main cause of the results comes from not achieving higher cell concentration in the fed-batch fermentation and the optimum expression level of P43 promoter under oxygen or nutrient limitations. We could not achieve the increase in cell concentration by any means in batch culture as well as fed-batch culture. The highest yield in the batch culture was 2880 units of SAK activity and 455 mg/L of secreted SAK.
A process for the production of mannitol from fructose (5% to 25%) using Leuconosyoc mesenteroides NRRL B-1149 was investigated. Fermentations were carried out in bat도 of fed-batch fermentations without aeration at 28℃, pH 5.0. When 5% fructose was used in batch culture fermentation, the yield of mannitol was 78% of that expected theoretically. When the fructose concentration was increased to 10%, the yield dropped to 59.6% of the theoretical value. However, in the fed-batch culture, using 10% fructose, the yield was 81.9% of the theoretical value. In a 15% fructose fed-bat도 culture, with 5% fructose being added initially and the other 10% fructose being added as a continuous supply, the final yield was 83.7% of the theoretical yield. When 20% fructose was used in the same manner, the yield was 89.5% of theoretical yield.
Several culture systems including batch, two-stage CSTR, semi-fed batch, and two-stage cyclic fed-batch were investigated for the efficient production of the Fab fraction of PDC-E2 specific human monoclonal antibody using high cell density recombinant E. coli. A two-phase batch system and a two-stage continuous system were examined to overcome plasmid instability problems, by separating the growth and the production stages. The cell density and productivity of the two-stage continuous culture was better than that of the two-phase batch fermentation. In the two-stage continuous culture system with DO-stat, the cell growth and the productivity were superior to those of the system without the DO control. Also, almost total plasmid stability was maintained in the two-stage continuous culture system. Modified M9 medium was selected as an optimum feeding medium for the fed-batch process, and the optimum C/N ratio determined to be 2:3. The optimum feeding rate was $0.6g/\ell/hr$ for a constant feeding strategy in semi-fed batch system. When the feeding medium was fed by pulsing, it was observed that more frequent pulsing resulted in improved cell growth. The linear feeding method was the most efficient of the various feeding methods tested. Finally, high cell density culture using a two-stage cyclic fed batch system with pH-stat was tried because the linear feeding method showed limitations in terms of obtaining high cell densities, and a cell density of $54 g/\ell$ was achieved. It was concluded that the two-stage cyclic fed batch system was the most efficient system for high cell density culture of the systems tested. However, productivity improvements were lower than expected due to the extremely high accumulations of acetate, although the low levels of residual glucose were maintained.
The production of poly-$\beta$-hydroxybutyrate(PHB) from methanol by batch and fed-batch cultivations of Methylobacterium sp. GL-10 was studied. PHB accumulation was stimulated by the nutrients deficiency including, NH4+, SO42-, and K+. The nitrogen deficiency was the most critical factor for PHB accumulation. In batch cultivation, the maximum cell concentration and PHB content were 1.86g/l and 0.62g/l, respectively, with 1.0%(v/v) of methanol and 0.5g/1 of ammonium sulfate. The mass doubling time of Methylobacterum sp. GL-10 was in the range of 4-5 hrs. The cell growth and PHB accumulation were severely inhibited at the methanol concentration over than 2% (v/v). To overcome methanol Inhibition, constant feeding and intermittent feedillg fed-batch cultivations were adopted, using C/N molar ratio as a control factor. In constant feeding fed-batch process, cell concentration was increased up to 2.67g/1, and PHB yield was enhanced from 0.33 of batch culture to 0.53. The relatively low cell concentration was caused by methanol accumulated in culture broth at late growth phase. To prevent methanol accumulation and to maximize PHB production, DO-state intermittent fed-batch cultivation was attempted. The cell and PHB concentration was reached up to 4.55g/1 and 1.80g/1, respectively. It was possible to maintain methanol concentration low and also to feed nutrient of desired C/N molar ratio.
In order to maximize the RNA accumulation and biomass production is Saccharomyces cerevisiae MTY62, a high-content RNA yeast strain, batch and fed-batch cultures were performed. Among the feeding modes of fed-batch cultures examined, the intermittent feeding mode R\`(IFB-lV), in which 50 ml of 40% molasses and 20% com steep liquor (CSL) solution was intermittently fed for 5 times, resulted in the cell concentration of 33.8 g- dry cell weight/1 and the RNA concentration of 5221 mg-/l, and RNA content of 153 mg-RNA/g-dry cell weight. The constant fed-batch with feeding mode III (CFB-III), in which the feeding rate of 40% molasses and 20% CSL solution was stepwisely decreased from 48 mph (9-13 h), to 24 mph (13-21 h), and to 18 ml/h (21∼ 48 h), gave the highest cell concentration of 42.7 g-dry ceil weigh71 and R7IA concentration of 5536 mg-RNA/1, which were about 2.4-fold and 1.9-fold increased levels, respectively, compared to the results of batch culture. However, the RNA con- tent of 130 mg-RNA/g-dry cell weight of the fed-batch was lower than that of the batch culture (171 mg-RNA/g-dry cell weight) and other fed-batch cultures. When the specific growth rates in the fed-batch cultures were increased, the RNA contents increased. This result indicates that the RNA content is adversely proportional to the cell concen- tration. However, at the same specific growth rate, the RNA content was maintained at higher level in the intermit- tent fed-batch than in the constant fed-batch culture.
The effect of media feeding rate on cell growth and monoclonal antibody production in the fed-batch culture ot hybridoma A4W was studied. In the batch culture, the highest specific antibody production rate was observed at the begining of the culture period but its value tended to decrease rapidly with the culture time. The final antibody concentration and volumetric productivity was 65 $\mu g$/ml and 13 mg Mab/l/day, respectively. In the fed-batch culture, the specific antibody production rate, $q_p$ rebounded sharply within a few hours after the media feeding was started and it remained high until the end of culture if the media feeding was continued. The final antibody concentration was 220 $\mu g$/ml and the volumetric productivity was 45.1 mg/l/day. Further increase in final antibody concentration was achieved by applying a modified media of which component was fortified with glucose and glutamine, hence the final antibody concentration in this case was 270 $\mu g$/ml and the volumetric productivity was 51.8 mg/lday, which is as four tinlcs as high cuixparinf! to that of batch culture.
KIM, SU-JIN;GEUN-JOONG KIM;DON-HEE PARK;YEON-WOO RYU
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.13
no.2
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pp.175-181
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2003
The production of a carotenoid astaxanthin, a growth-associated principal pigment, is limited in a batch cultivation, because a high glucose concentration severely inhibits the cell growth and also influences the carotenoid production. Therefore, a fermentation strategy including effective chemicals for the high-level production of cells and astaxanthin by a mutant strain Phaffia rhodozyma AJ-6-1 was developed in a fed-batch culture. First, a production medium for maximizing the cell and astaxanthin yields was formulated and optimized. Using this optimized medium, the highest cell and astaxanthin concentrations obtained were about 38.25 g/1 and 34.77 mg/1, respectively. In addition, an attempt was made to increase the amount of astaxanthin using effective chemicals such as ethanol and acetic acid, which are known at an inducer and/or precursor of carotenoid synthesis. When either 10g/1 ethanol or 5 g/1 acetic acid was added to investigate the resulting astaxanthin content, a relatively high astaxanthin concentration or 45.62 mg/l and 43.87 mg/1, respectively, was obtained, and the cell concentrations also increased slightly under these conditions. Therefore, these results imply that a fed-batch culture of the mutant strain P. rhodozyma AJ-6-1 could be effectively employed in the commercial production of astaxanthin, although the factors affecting the productivity remain to be elucidated.
Kim, Chang-Yong;Lee, Jin-Ha;Kim, Byung-Hoon;Yoo, Sun-Kyun;Seo, Eun-Seong;Cho, Kab-Su;Donal F. Day;Kim, Doman
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.7
no.4
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pp.234-236
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2002
A process for the production of mannitol from fructose (5% to 25%) using Leuconostoc mesenteroides NRRL B-1149 was investigated. Fermentations were carried out In batch or fed-batch fermentations without aeration at 28$\^{C}$, pH 5.0. When 5% fructose was used In batch culture fermentation, the yield of mannitol was 78% of that expected theoretically. When the frurtose concentration was Increased to 10%, the yield dropped to 59.6% of the theoretical value. However, In the fed-batch culture, using 10% fructose, the yield was 81.9% of the theoretical value. In a 15% fruttose fed-batch culture, with 5% fructose being added initially and the other 10% fructose being added as a continuous supply the final yield was 83.7% of the theoretical yield. When 20% fructose was used In the same manner, the yield was 89.5% of theoretical yield.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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