This study aimed to investigate the effects of dietary Ptecticus tenebrifer on the fecal microbiomes of bichon frise. A total of 16 bichon frise dogs (average weight, 2 kg) were randomly allotted to 4 dietary treatments (4 dogs/group): general pet food, two types of domestic pet food containing Ptecticus tenebrifer, and one imported pet food containing Ptecticus tenebrifer. In the controls, Firmicutes accounted for the highest proportion (82%) at the phylum level in the fecal microbiomes. The Tax4Fun2's functional prediction program indicated that the control groups showed a relatively high amount of obesity-related microorganisms; the pathways included three types of carbohydrate metabolism. Among the treatments, Firmicutes abundances was the least in the treatments with the two types of domestic pet food containing Ptecticus tenebrifer; this did not affect the functional prediction of Tax4Fun2. In conclusion, the two types of domestic feed with Ptecticus tenebrifer were healthy and suitable for bichon frise; they could be beneficial in terms of obesity.
Among certain animals, gut microbiomes demonstrate species-specific patterns of beta diversity. This host-specificity is a potent driver of exogenous microbial exclusion. To overcome persistent translational limitations, translational microbiome research and therapeutic development must account for host-specific patterns of microbial engraftment. This commentary seeks to highlight the important implications of host-specificity for microbial ecology, Fecal Microbiota Transplantation (FMT), next-generation probiotics, and translational microbiota research.
Objective: To investigate the effect of host genetics on gut microbial diversity, we performed a structural survey of the fecal microbiota of four purebred boar pig lines: Duroc, Landrace, Hampshire, and Yorkshire. Methods: The V3-V4 regions of the 16S rRNA genes were amplified and sequenced. Results: A total of 783 operational taxonomic units were shared by all breeds, whereas others were breed-specific. Firmicutes and Bacteroidetes dominated the majority of the fecal microbiota; Clostridia, Bacilli, and Bacteroidia were the major classes. Nine predominant genera were observed in all breeds and eight of them can produce short-chain fatty acids. Some bacteria can secrete cellulase to aid fiber digestion by the host. Butyric, isobutyric, valeric, and isovaleric acid levels were highest in Landrace pigs, whereas acetic and propionic acid were highest in the Hampshire breed. Heatmap was used to revealed breed-specific bacteria. Principal coordinate analysis of fecal bacteria revealed that the Landrace and Yorkshire breeds had high similarity and were clearly separated from the Duroc and Hampshire breeds. Conclusion: Overall, this study is the first time to compare the fecal microbiomes of four breeds of boar pig by high-throughput sequencing and to use Spearman's rank correlation to analyze competition and cooperation among the core bacteria.
To investigate the diversity of gastrointestinal microflora and lignocellulose-degrading enzymes in wild Asian elephants, three of these animals living in the same group were selected for study from the Wild Elephant Valley in the Xishuangbanna Nature Reserve of Yunnan Province, China. Fresh fecal samples from the three wild Asian elephants were analyzed by metagenomic sequencing to study the diversity of their gastrointestinal microbes and cellulolytic enzymes. There were a high abundance of Firmicutes and a higher abundance of hemicellulose-degrading hydrolases than cellulose-degrading hydrolases in the wild Asian elephants. Furthermore, there were a high abundance and a rich diversity of carbohydrate active enzymes (CAZymes) obtained from the gene set annotation of the three samples, with the majority of them showing low identity with the CAZy database entry. About half of the CAZymes had no species source at the phylum or genus level. These indicated that the wild Asian elephants might possess greater ability to digest hemicellulose than cellulose to provide energy, and moreover, the gastrointestinal tracts of these pachyderms might be a potential source of novel efficient lignocellulose-degrading enzymes. Therefore, the exploitation and utilization of these enzyme resources could help us to alleviate the current energy crisis and ensure food security.
This review delved into the intricate relationship between the gastrointestinal microbiome and gastric cancer, particularly focusing on post-treatment alterations, notably following gastrectomy, and the effects of anticancer therapies. Following gastrectomy, analysis of fecal samples revealed an increased presence of oral cavity aerotolerant and bile acid-transforming bacteria in the intestine. Similar changes were observed in the gastric microbiome, highlighting significant alterations in taxon abundance and emphasizing the reciprocal interaction between the oral and gastric microbiomes. In contrast, the impact of chemotherapy and immunotherapy on the gut microbiome was subtle, although discernible differences were noted between treatment responders and non-responders. Certain bacterial taxa showed promise as potential prognostic markers. Notably, probiotics emerged as a promising approach for postgastrectomy recovery, displaying the capacity to alleviate inflammation, bolster immune responses, and maintain a healthy gut microbiome. Several strains, including Bifidobacterium, Lactobacillus, and Clostridium butyricum, exhibited favorable outcomes in postoperative patients, suggesting their potential roles in comprehensive patient care. In conclusion, understanding the intricate interplay between the gastrointestinal microbiome and gastric cancer treatment offers prospects for predicting responses and enhancing postoperative recovery. Probiotics, with their positive impact on inflammation and immunity, have emerged as potential adjuncts in patient care. Continued research is imperative to fully harness the potential of microbiome-based interventions in the management of gastric cancer.
본 연구에서는 남극 로스해 연안에 서식하는 아델리펭귄(Pygoscelis adeliae)과 황제펭귄(Aptenodytes forsteri)의 분변 시료를 기반으로 펭귄 장내 미생물 메타지놈 연구를 수행하였다. Taxonomy 분석 결과, 아델리펭귄과 황제펭귄의 장내 미생물에는 주로 7개의 문(phylum), 18개의 과(family)가 존재하는 것으로 나타났다. 또한 미생물 다양성을 평가하기 위해 Alpha diversity 및 OTU abundance 분석을 수행한 결과, 전반적으로 아델리펭귄의 장내 미생물 다양성이 황제펭귄보다 높은 것을 확인하였고, PCoA를 기반으로 한 Beta diversity 분석을 통해 두 개체군 간 장내 미생물 군집에 차이가 존재함을 확인하였다. PICRUSt를 활용한 기능적인 차원의 KEGG pathway 분석을 통해서는 아델리펭귄과 황제펭귄 시료에서 nucleoside and nucleotide biosynthesis pathway가 가장 많이 존재하는 것을 확인하였다. 본 연구를 통해 남극 아델리펭귄과 황제펭귄의 장내미생물 구성과 다양성을 비교분석 할 수 있었다. 본 연구 결과는 향후 펭귄의 먹이 섭식 관련 연구에 활용될 수 있으며, 더 나아가 다양한 남극 생물의 장내미생물 메타지놈 분석에 대한 기초가 될 수 있을 것이다.
숙주 동물과 동물의 장내 미생물의 건강 또는 생산성에 대한 연구결과를 미루어 볼 때, 가축 동물의 장내 미생물에 대한 연구는 매우 중요하다. 본 연구는 국내에서 사육되는 젖소 중 홀스타인 종과 저지종 젖소의 장내 미생물을 분석하고 차세대 염기서열 분석을 통해 젖소 종에 따른 장내 미생물 군집 구조의 차이를 규명하고자 하였다. 젖소의 원유 생산과 관련있는 것으로 알려진 종 풍부도와 종 다양성 지수 분석 결과 대부분의 풍부도 및 다양성 지수가 홀스타인 종 보다 저지 종에서 유의한 수준으로 높은 것으로 나타났으나, 종 간의 계통학적 거리를 합산하여 산출되는 phylogenetic diversity 지수는 낮은 것으로 나타났다. 미생물 분포 분석 결과 홀스타인과 저지 종의 두 집단 장내 미생물 군집 구조가 다른 것으로 나타났다. 두 종의 젖소에서 과(family) 수준의 다양한 장내 미생물간의 분포에 상관관계가 있는 것으로 나타났으며, 특히 저지 종의 장내 미생물은 다양한 미생물 분포 사이에 매우 유의한 수준의 상관관계가 있는 것으로 나타났다. 두 종의 젖소 장내 미생물 구조에 차이가 있는지 확인하기 위해 beta-diversity 분석을 수행하였으며, PCoA 분석과 UPGMA clustering 분석 결과 두 그룹의 cluster가 명확히 분리되는 것을 시각적으로 확인하였으며, PERMANOVA 분석 결과 두 종의 장내 미생물 군집 구조가 통계적으로 매우 유의한 수준의 차이가 있는 것으로 나타났다. 두 젖소 종의 장내 미생물 군집 구조 차이에 기여하는 미생물을 확인하기 위해 LEfSe 분석을 수행하였으며, 그 결과 Firmicutes, Bacilli, Moraxellaceae, Pseudomonadales 등의 상대적인 미생물 분포 차이가 두 그룹간 장내 미생물 군집 구조 차이에 가장 큰 영향을 미치는 것으로 나타났다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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