The semen collection process in the porcine is far from being a sterile procedure. Consequently, porcine ejaculates commonly contain bacterial contaminants. The aim of this study is to identify the bacteria in porcine semen and to find the antibiotics resistance of bacteria. Twelve porcine originating from four AI center were used to collect semen. Bacteria were identified by automated instrument for rapid organism identification system and bacterial sensitivities of 8 antibiotics were tested. The Bacterial contaminants of Staphylococcus genus(37.8%), Proteus genus(7.0%), Bacillus genus (6.1%), Pasteulla genus(5.7%), Acinetobacte genus(5.2%), Serratia genus(4.3%) and others(33.9%) were frequently isolated. However, amikacin showed higher antibiotic sensitivity than other antibiotics. General sanitation protocols can contribute partly to inhibit the bacterial contamination, with monitoring boar housing, semen collection areas and the extended semen. But, proper selection of preservative antibiotics by microbial sensitivities can minimize the influence of bacteria.
Park, Yoo-Jin;Song, Won-Hee;Kim, Yeon-Hee;Mohamed, E.A.;Oh, Shin-Ae;Pang, Myung-Geol
Reproductive and Developmental Biology
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v.32
no.1
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pp.59-64
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2008
The objective of this study was to estimate modification of semen quality during storage. Liquid boar semen samples extended in Beltsville Thawing Solution were stored at $17^{\circ}C$ up to 5 days. While % motility and linearity significantly decreased eon day 3 in extender, the qualitative motility patterns were maintained satisfactorily. Also the storage of boar semen up to 5 days before insemination did not significantly changed the acrosome intactness. However, acrosome changed sperm significantly increased and capacitated sperm significantly decreased from day 4. No significant modifications in acrosome integrity were showed during sperm storage; these results suggest that liquid boar semen may keep the quality in extender for 3 days.
Kim, Yong-Jun;Kim, Jin-Young;Kim, Sue-Hee;Lee, Young-Jun
Journal of Veterinary Clinics
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v.24
no.4
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pp.577-583
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2007
It is important to obtain semen with good quality for efficient fertilization and pregnancy. To obtain these semen, various methods have been developed but most of these methods are time consuming and require costly equipment. Therefore, the objective of this research is to investigate the usability of column filtration system as quick and simple method to get sperm with better quality. Ejaculates were obtained from 5 dogs and analyzed with basic quality parameters before each filtration. Sperm concentration was adjusted to $5{\times}10^7/ml$ after dilution. The experimental groups were divided into non-filtered group(control) and filtered groups(glass wool, Sephadex 5% and Sephadex 20%). Ejaculates were filtered through each filter system and assessed by recovery rate of sperm, motility, normal morphology, CFDA/PI stain and plasma membrane integrity(hypo-osmotic swelling test, HOST). The lowest recovery rate of spermatozoa was recorded in glass wool filtration group, followed by 20% Sephadex filtration group(p<0.05). There was no significant difference between control(non-filtered) and 5% Sephadex filtration poop. Also, there was no significant difference of sperm motility assessed under light microscope among experimental groups. Morphological normality of canine spermatozoa was the highest in the glass wool filtration group and the lowest in the 5% Sephadex filtration group with no significant differences versus 20% Sephadex filtration and control group, respectively(p<0.05). Viability of canine sperm assessed by CFCA/PI staining was the highest in the glass wool filtration poop with no significant difference versus the control group, and the lowest in the 20% Sephadex filtration group with no significant difference versus 5% Sephadex filtration group, respectively(p<0.05). HOS values of canine sperm was the highest in the 20% Sephadex filtration group with no significant difference versus 5% Sephadex filtration group, and the lowest in the control poop with no significant difference versus glass wool filtration group, respectively(p<0.05). Therefore, these results indicated that filtration treatment for extended canine sperm would be useful method to get sperm with better quality by trapping the damaged sperm, consequently filter would be physical barrier against injured or immotile sperm.
This study was carried out to cryopreserve and to investigate characteristics of semen in Hanwoo. Semen was obtained from bulls selected by Daekwanryeong Branch station. Semen was collected each morning of the experiment, placed in water jacketed tubes at 37$^{\circ}C$, and trans-ported to the research laboratory within 10 minutes. Semen was extended with Egg yolk-glycerol extender to contain 50${\times}$10$^{6}$ sperm/ml. Semen was cooled over a 6h period in water jacketed tubes from about 25 to 5$^{\circ}C$, Egg yolk-glycerol extender was added in one step at 5$^{\circ}C$. Semen was aspirated into 0.5ml straws, which were sealed with powder. Egg yolk-glycerol extender, which is used in Hanwoo sperm frozen and stored, semen from 13 Hanwoo bulls collected, the postthawed percentages of motile sperm were 65.7%. In semen characteristics of Hanwoo bulls, number of bulls volume are 5.7 ml and total cell count are 975${\times}$10$^{6}$ m1 ejaculate.
Kim, Y.S.;Lee, H.T.;Kim, I.C.;Ryu, J.W.;Kim, C.W.;Chung, K.H.
Journal of Embryo Transfer
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v.21
no.4
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pp.345-351
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2006
The objective of this study was to investigate the effects of preservation period of porcine liquid semen on bacterial contamination and in vitro production of embryo. Extended liquid semen was prepared by three mixture of boar's ejaculates from each farm without antibiotics, and were kept in $17^{\circ}C$ semen preservation incubator until use. Sperm motility was significantly (p<0.05) decreased as semen preservation time goes by (78.7$\pm$2.4% for 1 day vs. 71.1$\pm$2.4 and 64.8$\pm$2.4% for 3 and 5 days of presentation, respectively). Quantitative of bacteria in semen was significantly (p<0.05) higher in 5 days ($57.8\pm105.2\times10^4$ Cfu) compared to 0 and 3 days ($32.1\pm76.8\times10^4$ and $26.9\pm46.6\times10^4$ Cfu, respectively) of preservation. In terms of development of in vitro fertilization of porcine embryos inseminated by preserved semen, the rate of normal fertilization (2PN) was significantly (p<0.05) decreased in 5 days (56.0$\pm$2.6%) compared to 1 and 3 days (66.0$\pm$2.7 and 64.0$\pm$2.7%, respectively) of preservation. Cleavage rate was also significantly (p<0.05) affected by preservation period (75.0$\pm$4% for 1 day, 70.0$\pm$0.3 and 71.0$\pm$0.3% for 3 and 5 days, respectively). The in vitro developmental rate of blastocyst stage embryo was significantly (p<0.05) affected by semen preservation period (15.0$\pm$1.0% for 1 day vs. 11.0$\pm$0.9 and 8.0$\pm$0.9% for 3 and 5 days, respectively). It is concluded that more than 3 days of liquid semen preservation without antibiotics increased the quantity of bacteria resulted in detrimental effect on sperm motility and decreased both normal insemination rate and the developmental rate of blastocyst stage embryo.
This study was carried out to establish most suitable freezing condition, to evaluate the different glycerol concentration of freezing and thawing rates on motility, viability, membrane integrity and acrosome intecrity of frozen Korean Jeju Black Bull spermatozoa, Semen was collected from a Korean Jeju Black Bull using an artificial vagina and transported to the laboratory. The semen was extended gradually 1:5 then cooled slowly for 2 hrs to 4$^{\circ}C$. The semen was diluted 1:1 with cryoprotectant extenders (3%, 5% and 7% glycerol) and equilibrated for 2 hrs at cold chamber and packed to 0.5 ml straws. The semen straws were located above 3 cm of liquid nitrogen for 5 minutes, above 5 cm for 10 min and above 8 cm for 10 min. And then the frozen straw was plunged into LN$_2$. The presented straws were examined the viability and motility after thawed at 37$^{\circ}C$ water bath. The viability and membrane integrity immediately post-thawing were significantly higher in samples frozen in 7% glycerol than 3% and 5% glycerol (p<0.05). After CTC staining to assess acrosome integrity, F pattern was significantly increased, but B pattern was significantly decreased in 7% glycerol (p<0.05). Freezing distance of 5 cm from liquid nitrogen and pre-cooling for 10 min yield better survival and membrane integrity, but not significant difference. However, AR pattern according to CTC staining was significantly decreased in 3 cm for 5 min.
Kim, Yun-Hee;Park, Yoo-Jin;Yoon, Sung-Jae;Kwon, Woo-Sung;Kim, Sang-Hyun;Pang, Myung-Geol
Reproductive and Developmental Biology
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v.34
no.3
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pp.241-246
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2010
The objective of this study was to investigate the effect of storage time on fresh boar semen in Androhep and Beltsville Thawing Solution (BTS). Boar semen samples extended in each extender were stored at $17^{\circ}C$ up to 4 days. Sperm motility kinematics was evaluated by computer assisted sperm analyzer (CASA) and capacitation status by chlortetracycline (CTC)/Hoechst 33258 staining. Sperm motility (%) was not decreased during storage in BTS and Androhep. No significant difference between extenders was observed. Only significant differences in kinematic parameters on linearity during storage were found. The percentage of dead sperm significantly decreased during storage (p<0.05). Also the percentage of noncapacitated, capacitated, and acrosome-reacted sperm significantly modified during storage (p<0.05). However, there was no significant difference between extenders except proportion of capacitated sperm. This finding supported that modification in these parameters was not significantly different between extenders during this short-term storage. Our finding strongly indicated that both Androhep and BIS maintained favorable conditions for motility, motility kinematics, and capacitation status during short-term storage. Despite modifications in some parameters were apparent during sperm storage in extenders, these may not affect the fertilizing capacity of boar semen.
Lee Jung-Won;Kim Heui-Eun;Kim Nam-Soo;Choi In-Hyuk
Journal of Veterinary Clinics
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v.8
no.2
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pp.183-190
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1991
Pellet and straw methods in canine semen freezing are compared with respect to motility, viability and acrosome demage of sperm during each of the two major processing steps, to prior-freezing and to frozen-thawing. Senen was extended with a tris-buffered egg yolk contained 4% glycero1 Pellet freezing in the hole of dry ice and straw freezing on the surface of liquid nitrogen were carried out, respectively. The frozen semen 10 days after storage in liquid nitrogen container. wao thawed. In the comparison of two freezing methods, the straw freezing method with 42.7% in motility. 49.2% in viability and 0.186 acrosome score after thawing seems to be superior to the pellet freezing method with 31.2%, 34.5% and 0.314%, respectively. Sperm motility of processing step to frozen-thawing against decrease rate 12.67% to Prior freezing appeared of 33.84% and 49.37% in straw and pellet freezing and increase of 0.02 in acrsomal score to prior freezing appeared of 0.08 and 0.21 in straw and pellet freezing method to frozen-thawing
Jha, Pankaj Kumar;Paul, Ashit Kumar;Rahman, M. Bozlur;Tanjim, M.;Bari, Farida Yeasmin;Alam, M. Golam Shahi
Journal of Embryo Transfer
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v.28
no.1
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pp.31-39
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2013
Alpha-tocopherol as an antioxidant acts in preservation of chilled semen by preserving cell membrane damage from lipid peroxidation. Optimum concentrations of ${\alpha}$-tocopherol in egg yolk-citrate (EYC) extender need to be studied in crossbred bull's semen. Different concentrations of ${\alpha}$-tocopherol viz. 0, 1, 2, 4 and 6mg per ml of extender were used. Semen was collected once a week from four bulls used to regular collection, aged 4 to 7 years, weighing 320 to 450 kg, and with body condition score 4 to 4.5 and scrotal circumference 23 to 32 cm. Semen was evaluated routinely and sperm morphology was viewed under light microscope at ${\times}1,000$ magnification after fixing with buffered formal saline. Over 90% had normal head, acrosome, mid-piece and tail. Semen was diluted with egg-yolk-citrate extender to produce $15{\times}10^6$ spermatozoa/ml and 0, 1, 2, 4 and 6 mg/ml ${\alpha}$-tocopherol were added. The semens amples were kept at $8^{\circ}C$. Sperm motility and viability were examined daily up to 5 days under light microscopy at ${\times}200$ magnification. Sperm viability was acceptable (${\geq}40%$) up to the $4^{th}$ day with all concentrations of ${\alpha}$-tocopherol and up to the $5^{th}$ day with 2 mg/ml ${\alpha}$-tocopherol. Sperm motility was acceptable (${\geq}40%$) up to the $3^{rd}$ day irrespective of ${\alpha}$-tocopherol concentration, and up to the $4^{th}$ day with 2 mg/ml ${\alpha}$-tocopherol. It is suggested that the lifespan of chilled semen may be extended up to 4 days by adding 2mg/ml ${\alpha}$-tocopherol.
Damaged spermatozoa are supposed to be trapped in glass wool. In the respect of this, two glass wool filtration spermatozoa groups (0.5 cm, 1 cm depth) were compared with control group to assay sperm motility, HOS values, and vital rate by CFDA/PI staining method following glass wool filtration. The motility of canine sperm extended with PBS+PVP after glass wool filtration was lower in both filtrated groups than that of the control group (p<0.01) and the same significant difference was also shown in canine semen extended with Tris buffer (p<0.01). The motility of canine sperm diluted with PBS+PVP was higher than that diluted with Tris buffer in the same experimental groups (p<0.05). The motility of control group was not significantly decreased until 2 hours immediately after extending, however, the motility of both glass wool filtrated spermatozoa were significantly decreased as time passed until 2 hours after filtration (p<0.01). At each time for assay (immediately, 30 min, 2 hours after filtration), the motility of canine sperm of control group was higher than the filtrated groups (p<0.05), whereas the motility of 0.5 cm depth group was higher than 1 cm depth group at the immediate time after filtration (p<0.05), 30 minutes later (p<0.05) with no difference at 2 hours. No difference was shown among the experimental groups in HOS values of canine sperm after glass wool filtration. The vital rate assayed by CFDA/PI staining of both filter groups was higher than the control group (p<0.05).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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