A 1-year and 8-month-old male, thoroughbred horse showed fever ($39.8^{\circ}C$), cardiac murmur, tachycardia up to 80 beats/min, anorexia, depression and lameness for about 2 months. The dead horse was referred to pathology laboratory at the College of Veterinary Medicine in Jeju National University. At necropsy, Severe protruding multiple rough cauliflower-like yellowish red nodules ranged $5{\sim}6{\times}2{\sim}3cm$ in size were attached on the mitral valve of the left heart. A yellowish red long stick-shaped thrombus $15{\times}3.5{\times}1.5cm$ in size was also present inside the right ventricle. Multifocal infarcts were scattered in the myocardium and renal cortex. Histopathologic examination revealed that morphologic diagnosis were vegetative endocarditis, thrombus in right ventricle, infarcts in myocardium and kidney, pulmonary congestion and edema, and splenic congestion. The isolated bacteria from vegetative lesions and thrombus were confirmed as Escherichia (E.) coli based on the bacterial culture and VITEK 2 system. Based on the gross and histopathologic features, and bacterial test, this case was diagnosed as vegetative endocarditis with thrombus formation associated by E. coli in a thoroughbred horse.
Thioredoxin is a multi-functional protein which is ubiquitous in microorganisms, animals and plants. Previously, expression of the E. coli thioredoxin gene was found to be negatively regulated by cAMP. In the present study, the effect of cAMP on two separate promoters of the E. coli thioredoxin gene was investigated. Cyclic AMP had a repressible effect on P1 and P1P2 promoter activity of the constructs. This effect was also observed in the cya strain. The P2 promoter construct gave very high -galactosidase activity, and its expression was not affected by exogenous cAMP. It was assumed that a cis-acting negative element, probably the cAMP-CRP binding site, might have been deleted in the P1 promoter construct. Repression of the thioredoxin gene expression by cAMP appeared to be independent of ppGpp.
The Escherichia coli mixed-function serC-aroA operon encodes biosynthethic enzymes for unrelated pathways leading to the syntheses of serine and aromatic amino acids. It has been proposed that the operon is expressed in a cAMP-dependent manner. In this work experiments were performed to investigate the cAMP-dependent expression of the operon. Exogenous cAMP increased ${\beta}$-galactosidase synthesis in the $cya^+$ and cya strains harboring the serC-aroA-lac fusion plasmid. This enhancement was more dramatic in the $cya^-$ strain grown in a minimal medium. In a dot blot assay the serC-aroA mRNA content increased in a concentration-dependent pattern after the addition of exogenous cAMP. The activity of phosphoserine aminotransferase, encoded by the serC gene, apparently increased in E. coli cells after the addition of cAMP. All results obtained confirmed that the expression of the E. coli serC-aroA operon is positively regulated by cAMP at the level of transcription.
A lactic acid bacterium producing an antimicrobial substance against Escherichia coli O157:H7 was isolated from raw milk and identified as Lactobacillus amylovorus ME-1. In addition to E. coli O157 :H7, the antimicrobial substance also inhibited the growth of Bacillus cereus, Listeria monocytogenes, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella typhimurium, Staphylococcus aureus, Streptococcus agalactiae, Streptococcus pyrogenes, and Yersinia enterocolitica. The antimicrobial substance was stable at pH 2-12 and $121^{\circ}C$ for 15 min and insensitive to proteinase K, protease, amylase, and catalase. Purification of the antimicrobial substance was conducted through methanol and acetonitrile/ethylacetate extraction, ultrafiltration with a 500 Da cutoff, thin layer chromatography (TLC) with silicagel 60, and high performance liquid chromatography (HPLC) with a $C_{18}$ reverse phase column. The ${\lambda}_{max}$ of the purified antimicrobial substance was determined as 192 nm by ultra violet (UV) scanning, while the molecular weight was estimated as 453 Da based on the mass spectrum. Accordingly, the current results suggest that the antimicrobial substance from the L. amylovorus ME-1 was not a bacteriocin, but rather a new non-proteinaceous substance distinct from acidophilin, acidolin, diacetyl, and reuterin.
Endoglucanase gene of Pseudomonas sp. LBC505 was previously cloned in pUCl9 to yield plasmid pLC1. overproduction of endoglucanase was attempted by following ways. First, the endoglucanase gene of Pseudomonas sp. LBC505 cloned in pUCl9(pLC1) was tandemly inserted, step by step, into a expression vector pKK223-3 in a directly repeated form to enhance productivity of endoglucanase. Escherichia coli containing pKCC30 among the resulting plasm ids showed the higher yield of the endoglucanase. Ecoli harboring pKCC30 which had three inserted endoglucanase genes expressed about 12.3 times as much CMCase activity as Ecoli harboring pLCl. Second, the endoglucanase gene was subcloned into Bacillus subtilis expression vector pgnt41 for both overproduction and extracellular secretion of the endoglucanase. A resulting plasmid pgntc15 in Bacillus subtilis expressed 4.3-fold higher levels of CMCase activity than that of E.coli harboring pLCl and the endoglucanase produced was entirely secreted into the culture medium.
The generation of secretory IgA antibodies (Abs) for specific immune protection of mucosal surfaces depends on stimulation of the mucosal immune system, but this is not effectively achieved by parenteral or even oral administration of most soluble antigens. Thus, to produce a possible vaccine antigen against urinary tract infections, the uropathogenic E. coli (UPEC) adhesin was genetically coupled to the heat-labile Escherichia coli enterotoxin A2B (ltxa2b) gene and cloned into a pMAL-p2E expression vector. The chimeric construction of pMALfimH/ltxa2b was then transformed into E. coli K-12 TB1 and its nucleotide sequence was verified. The chimeric protein was then purified by applying the affinity chromatography. The purified chimeric protein was confirmed by SDS-PAGE and westem blotting using antibodies to the maltose binding protein (MBP) or the heat labile E. coli subunit B (LTXB), plus the N-terminal amino acid sequence was analyzedd. The orderly-assembled chimeric protein was confirmed by a modified $G_{M1}$-ganglioside ELISA using antibodies to adhesin. The results indicate that the purified chimeric protein was an Adhesin/LTXA2B protein containing UPEC adhesin and the $G_{M1}$-ganglioside binding activity of LTXB. thisstudy also demonstrate that peroral administration of this chimeric immunogen in mice elicited high level of secretory IgA (sIgA) and serum IgG Abs to the UPEC adhesin. The results suggest that the genetically linked LTXA2B acts as a useful mucosal adjuvant, and that adhesin/LTXA2A chimeric protein might be a potential antigen for oral immunization against UPEC.
Bacteroides fragilis and Escherichia coli, normal colonic inhabitants, are the most frequently isolated bacteria in infected tissues, particularly in intraabdominal abscesses. This study was designed to determine whether enteric bacteria may alter the B. fragilis-induced expression of pro inflammatory cytokines in mouse peritoneal tissue (MPT). After C57BL/6 mice were inoculated with abscess-forming mixture containing B. fragilis in the presence or absence of E. coli, RNA was extracted from MPT. Expression of interleukin (IL)-$1{\alpha}$ and tumor necrosis factor $(TNF){\alpha}$ mRNA was assessed using RT-PCR and standard RNA. Each cytokine protein was also measured by ELISA. The co-inoculation of E. coli into mouse peritoneal cavity advanced the onset of abscess development by B. fragilis infection. When mouse was co-infected with E. coli and B. fragilis intraperitoneally, there was a synergistic increase in the expression of IL-$1{\alpha}$ and $TNF{\alpha}$ mRNA in MPT and this was paralleled by increased cytokine protein secretion. Mixed inoculation of heat-killed E. coli and B. fragilis did not cause a synergistic increase in those cytokine mRNA expression. These results suggest that enteric bacteria may significantly affect proinflammatory cytokine signal produced by host peritoneal cavity in response to B. fragilis infection.
Escherichia coli O157 is an important pathogenic organism which causes diarrhea, haemorrhagic colitis, and haemolytic ureamic syndrome (HUS) in human. E. coli O157 KNIH317 was isolated form patients suffering with HUS in Korea. We designed a primer set for cloning shiga-like toxin (slt) gene. The amplified PCR product was used to Southern and colony hybridization as a probe. As a result, we cloned 4.5-kb KpnI fragment containing the slt gene encoding shiga-like toxin from chromosomal DNA of E. coli O157 KNIH317. This recombinant plasmid was named pOVT45. E. coli XL1-Blue harboring pOVT45 showed cytotoxicity in Vero cells. We sequenced the slt gene of this strain. The A-subunit gene of the slt was composed of 960 base pairs with ATG initiation codon and TAA terminationcodon. The B-subunit was composed of 270 base paris with ATG initiation codon and TGA termination codon. Nucleotide sequence comparison of the slt gene exhibited 100%, 98.4%, 93.7%, and 93.7% identity with that of shiga-like toxin type II (sltII) of E. coli bacteriophage 933W, variant slt of E. coli, slt of E. coli, and variant sltII of E. coli, respectively. From these results, it was concluded that the cloned slt gene belongs to SltII family and that the strain used in this study may be a lysogeny of E. coli bcteriphage 933W.
The inulin fructotransferse (depolymerizing) (IFTase, EC 2.4.1.93) gene of Arthrobacter sp. A-6 was cloned and expressed in Escherichia coli and Bacillus subtilis. The IFTase gene consisted of an ORF of 1.311 nucleotides encoding a polypeptide of 436 amino acids containing a signal peptide of 31 amino acids in the N-terminus. The molecular mass of the IFTase based on the nucleotide sequence was calculated to be 46.116 Da. The recombinant E. coli $DH5{\alpha}$ cells expressing the Arthrobacter sp. A-6 IFTase gene produced most of the IFTase intracelularly. In contrast, the recombinant B. subtilis DB 104 carrying the IFTas gene on a B. subtilis-E. Coli expression vector secreted the IFTase into the culture fluid efficiently.
In order to clarify the morphological changes in the mammary glands of cows affected with coliform (Escherichia coli) mastitis, histopathological observations were undertaken on the mastitis of the lactating rabbits which was experimentally induced with E. coli or its endotoxin isolated from cases of acute and chronic matitis in dairy cattle. In the bacterial suspension-infused groups the affected quarters of udder showed cloudy swelling, hyperemia and hemorrhage to local necrosis and firmness. The microscopic findings of early stage of the mastitis were appearance of large numbers of heterophils in the glandular lumina and ducts accompanied by degeneration, necrosis and desquamation of epithelial cells, and also infiltration of heterophils, hemorrhage and edema in the interstitial tissue, and destruction of alveoli. Later, proliferation of firoblasts, plasma cells, lymphocytes, eosinophils and histiocytes appeared in the glandular tissue and necrotic foci of glandular tissue were surrounded by highly proliferated connective tissue. Granuloma-like inflammatory changes could be observed in the glandular tissue on the 7th days after infusion. The inflammatory response in the group infused with E. coli strain isolated from the natural case of acute mastitis was rapid and severe as compared with that of chronic mastitis. In the endotoxin-infused group the morphological changes were similiar to those of the bacterial suspension-infused groups.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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