Park, J.S.;Kim, I.H.;Hancock, J.D.;Wyatt, C.L.;Behnke, K.C.;Kennedy, G.A.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.16
no.2
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pp.248-256
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2003
Two experiments were conducted to determine the effects of expander processing and enzyme supplementation of wheat-based diets on growth performance and nutrient digestibility in finishing pigs. For Exp. 1, 60 finishing pigs (average initial BW of 49.5 kg) were fed meal, standard pellets and expanded pellets in a 70 d growth assay. From 49.5 to 79.0 kg, 79.0 to 111.8 kg, and overall (49.5 to 111.8 kg), ADG and ADFI were not affected by pelleting or standard vs expander conditioning (p>0.22). However, from 49.5 to 79.0 kg, pigs fed pellets have greater gain/feed than pigs fed mash (p<0.04), and pigs fed expanded pellets tended to have greater (p<0.10) gain/feed than pigs fed standard pellets. Overall (i.e. from 49.5 to 111.8 kg), gain/feed (p<0.02) and apparent fecal digestibilities of DM (p<0.001) and N (p<0.02) were improved by pelleting the diets. Also, expander processing further improved gain/feed (p<0.06) and digestibility of DM (p<0.04) compared to standard steam conditioning. Scores for keratinization (p<0.002) and ulceration (p<0.003) of the stomach were increased by pelleting, but the mean scores for the various treatments ranged only from 0.05 to 1.08 (i.e., low to mild keratosis and ulceration). For Exp. 2, 80 pigs (average initial BW of 54.1 kg) were fed mash and pellets (standard or expander) without and with xylanase. The enzyme was added to supply 4,000 units of xylanase activity/kg of diet. Adding xylanase to the mash diet improved gain/feed from 90.7 to 115.9 kg (p<0.04) of the growth assay and digestibility of DM (p<0.05) on d 39. However, in pelleted diets, adding the enzyme did not improve growth performance or digestibility of nutrients. Pelleting tended to increase scores for ulceration (p<0.06), and enzyme supplementation decreased stomach keratinization scores for pigs fed the standard pellets (p<0.01). However, as in Exp. 1, the mean scores for all treatment groups were quiet low (i.e., ranging from normal to mild). In conclusion, pelleting improved efficiency of growth, but additional benefits from expander conditioning were observed only in Exp. 1. Finally, xylanase tended to improve growth performance and nutrient digestibility, only in pigs fed mash diets but not in pigs fed pellets.
Kim, MinJu;Ingale, Santosh Laxman;Hosseindoust, Abdolreza;Choi, YoHan;Kim, KwangYeol;Chae, ByungJo
Animal Bioscience
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v.34
no.8
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pp.1365-1374
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2021
Objective: This study was conducted to investigate the synergistic effect of exogenous multienzyme and phytase on growth performance, nutrients digestibility, blood metabolites, intestinal microflora, and morphology in broilers fed corn-wheat-soybean meal diets. Methods: A 2×2 factorial design was used in this study. Four dietary treatments consisted of i) basal diets (corn-wheat-soybean meal based diets without multi-enzyme and phytase), ii) basal diets with phytase (0.05%), iii) basal diets with exogenous multi-enzyme (0.05%), and iv) basal diets with exogenous multi-enzyme including phytase (0.05%). A total of 480 broiler chickens (Ross 308 - one day old) were weighed and allotted to thirty-two cages (15 birds per cage), and chicks were randomly allocated to four dietary treatments. Results: The body weight gain and feed conversion rate were improved by supplementation of exogenous multi-enzyme containing phytase during the finisher period (p<0.05). The birds fed diets with exogenous multi-enzyme containing phytase had a significantly greater digestibility of dry matter, gross energy, crude protein, calcium, and phosphorus compared with birds fed non-supplemented diets (p<0.05). The chickens fed diets with exogenous multi-enzyme containing phytase showed a higher concentration of Ca and P in the serum (p<0.05). The population of Lactobacillus spp., Escherichia coli, and Clostridium were not affected in the ileum and cecum of chickens fed enzyme-supplemented diets. The dietary supplemental exogenous multi-enzyme containing phytase showed a significant improvement in villus height, crypt depth, and villus height and crypt depth ratio, compared to basal diets or dietary supplemental phytase (p<0.05). Conclusion: The supplementation of the exogenous multi-enzyme containing phytase synergistically improved the growth performance, nutrients digestibility, and villus height of the small intestine of broiler chickens fed a corn-wheat-soybean meal based diets.
A total of 392 twenty eight week-old laying hens was used to study the effects of dietary inclusion of solvent-extracted palm kernel cake (PKC) (0%, 12.5% and 25%) and enzyme (mixture of mannanase, ${\alpha}$-galactosidase and protease) supplementation (0 kg/t, 1 kg/t and 2 kg/t) on the performance of laying hens. The levels of PKC did not significantly influence nitrogen corrected true metabolizable energy (TMEn) of the diets. Enzyme-supplemented PKC had significantly higher AME and TMEn values than PKC diets with no enzyme supplementation. Dietary inclusion of 12.5% and 25% PKC in the diets of laying hens did not adversely affect mean egg production or daily egg mass. However, layers consumed significantly more PKC-based diets and had significantly poorer feed conversion ratios (FCR) than controls. However, the feed intake and FCR of hens provided the 12.5% PKC-based diets with enzyme supplementation at 1 kg/t did not differ from the controls. Dietary inclusion of PKC or enzyme did not affect eggshell quality, but egg yolk colour was significantly paler when layers were fed the 25% PKC diet.
Shaaban, Mona I.;Abdelmegeed, Eman;Ali, Youssif M.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.6
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pp.887-892
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2015
Uricase is an important microbial enzyme that can be used in the clinical treatment of gout, hyperuricemia, and tumor lysis syndrome. A total of 127 clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa were tested for uricase production. A Pseudomonas strain named Ps43 showed the highest level of native uricase enzyme expression. The open reading frame of the uricase enzyme was amplified from Ps43 and cloned into the expression vector pRSET-B. Uricase was expressed using E. coli BL21 (DE3). The ORF was sequenced and assigned GenBank Accession No. KJ718888. The nucleotide sequence analysis was identical to the coding sequence of uricase gene puuDof P. aeruginosa PAO1. We report the successful expression of P. aeruginosa uricase in Escherichia coli. E. coli showed an induced protein with a molecular mass of about 58 kDa that was confirmed by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and Western blotting. We also established efficient protein purification using the Ni-Sepharose column with activity of the purified enzyme of 2.16 IU and a 2-fold increase in the specific activity of the pure enzyme compared with the crude enzyme.
A serine proteinase was purified from Acanthamoeba culbertsoni by 41~80% ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography, affinity chromatography and gel filtration chromatography. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be 108.0 kDa by gel filtration chromatography and 54.0 kDa by SDS-PAGE. Therefore, the purified enzyme seemed to be a dimer. Isoelectric point was 4.5. The enzyme activity was highly inhibited by the serine proteinase inhibitors diisopropyl fluorophosphate (OFP) and phenylmethyl sulfonylfluoride (PMSF). It had a narrow pH optimum of 6.5~7.5 with a maximum at pH 7.0. These data suggested that the purified enzyme was a neutral serine proteinase. Optimal temperature was $37^{\circ}C$. It was stable for at least 16 h at $4^{\circ}C$ and $37^{\circ}C$, but it was rapidly inactivated at $65^{\circ}C$ The activity of the purified enzyme was not influenced significantly by $Mg^{2+}$, $Mn^{2+}$, $Zn^{2+}$ or $Ca^{2+}$. However, the enzyme activity was highly inhibited by $Hg^{2+}$ The enzyme degraded type I collagen and fibronectin, but not BSA, hemoglobin, lysozyme, immunoglobulin A or immunoglobulin G.
Bacillus sp. strain K-l, which produces a strong fibrinolytic enzyme, was isolated from chongkukjang, a traditional Korean fermented soybean paste. The fibrinolytic enzyme was purified from chongkukjang base by using ammonium sulfate fractionation and chromatographic techniques. Purified enzyme, CK K-1 was demonstrated to be homogeneous by SDS-PAGE and isoelectric focusing electrophoresis, and has molecular mass of a 12.4 kDa and a pI of 8.0. The optimal reaction pH value and temperature were 8.0 and $40^{\circ}C$, respectively. Phenyl-methyl-sulfonyl-fluoride (PMSF; serine protease inhibitor), ethylene-diamine-tetra-acetic acid (EDTA; metallo protease inhibitor), copper ion, ferric ion and lead ion inhibited the enzyme activity. These results indicated that the fibrinolytic enzyme is a metallo-serine protease and different from nattokinase and chongkukjangkinase.
Porcine liver cysteinesulfinic acid decarboxylase was purified approximately 460-fold by means of ammonium sulfate fractionation and sequential column chromatographic separation with Sephadex G-100, DEAE-cellulose and hydroxylapatite. The enzyme has a flat pH profile with maximum activity occurring between pH 6.0 and 7.6. Pyridoxal 5'-phosphate must be present in all buffers used for purification procedures in order to stabilize the enzyme. Addition of sulfhydryl reagents such as 2-mercaptoethanol are also necessary to maintain maximum enzyme activity throughout purification. The absorption spectrum shows that cysteinesulfinic acid decarboxylase is a pyridoxal 5' -phosphate-containing protein. The major absorption is at 280 nm with two smaller absorption regions, one at 425 nm which is ascribed to a Schiffs base between pyridoxal phosphate and protein, and another at 325 nm which is thought to be due to the interaction of 2-mercaptoethanol with the Schiffs base. A number of divalent cations tested did not affect enzyme activity with the exception of mercury, copper, and zinc which are inhibitory. The partially purified enzyme has an apparent $K_m$ of 0.94 mM for cysteinesulfinate. Cysteic acid is a competitive inhibitor of the enzyme with a $K_i$ of 1.32 mM. The molecular weight of the enzyme was estimated to be about 79,600 by using Sephadex G-200 column chromatography.
Pullulanase was produced from the Klebisella pneumonias NFB_320 with the conmposition of 0.1% pullualn 1.5% yeast extract, 0.2% $K_2$HPO$_4$ and 0.02% MgSO$_4$.7$H_2O$(pH5.5). The optimum temperature for activity of the pulluanase was 3$0^{\circ}C$ and the highest yield of the enzyme was obtained after cell growth at 3$0^{\circ}C$ for 18hr, and maintained until 24hr cultivation. The pullulanase was successively purified 52.6 folds with 7.8% yield by acetone precipitation. DEAE-cellulose column chromatography and gel fitrations. The purified enzyme hydrolyzed pullulan into maltotriose exclusively. Chemical and physical properties of purified pullulanase from Klebisella pneumonias NFB-320 were examined. The optimum pH and temperature for enzyme activity were 5.0 and 6$0^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable between pH4 and 7, and up 5$0^{\circ}C$. The effect of mo-dification on the rate of enzyme reaction was studies with various chemicals and metal ions. The enzyme has been found to be inactivated by I$_2$ and N-bromosussinimide(NBS), which probably indicated the involve- ment of tryptophan residues in the active center of the enzyme.
Methionine aminopeptidase (MetAP) catalyzes the removal of an amino-terminal methionine from a newly synthesized polypeptide. The enzyme was purified to homogeneity from Bacillus stearothermophilus (KCTC 1752) by a procedure that involves heat precipitation and four sequential chromatographs (including DEAE-Sepharose ion exchange, hydroxylapatite, Ultrogel AcA 54 gel filtration, and Reactive red 120 dye affinity chromatography). The apparent molecular masses of the enzyme were 81,300 Da and 41,000 Da, as determined by gel filtration chromatography and sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), respectively. This indicates that the enzyme is comprised of two identical subunits. The MetAP specifically hydrolyzed the N-terminal residue of Met-Ala-Ser that was used as a substrate, and exhibited a strong preference for Met-Ala-Ser over Leu-Gly-Gly, Leu-Ser-Phe, and Leu-Leu-Tyr. The enzyme has an optimal pH at 8.0, an optimal temperature at $80^{\circ}C$, and pI at 4.1. The enzyme was heat-stable, as its activity remained unaltered when incubated at $80^{\circ}C$ for 45 min. The Km and Vmax values of the enzyme were 3.0mM and 1.7 mmol/min/mg, respectively. The B. stearothernmophilus MetAP was completely inactivated by EDTA and required $Co^{2+}$ ion(s) for activation, suggesting the metal dependence of this enzyme.
Kim, Seong-Tae;Yang, Kap-Seok;Seok, Yeong-Jae;Huh, Won-Ki;Kang, Sa-Ouk
Korean Journal of Microbiology
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v.32
no.4
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pp.315-321
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1994
Glyoxalase I was purified 2,294-fold from Pleurotus ostreatus by S-hexylglutathione affinity chromatography, Sephadex G-150 gel filtration chromatography and DEAE-sepharose A-50 CL-6B ion exchange chromatography with an overall yield of 21.7%. The molecular mass determined by gel filtration was found to be approx. 34 kDa. SDS-PAGE revealed that the enzyme consists of two identical subunits with a molecular mass of approx. 17 kDa. The K sub(m) values of this enzyme for methylglyoxal and phenylglyoxal were 0.39 mM and 0.22 mM, respectively. And this enzyme had a strong affinity for L-xylosone and hydroxypyruvaldehyde. The enzyme showed its optimal activity at pH 6.5-7.5 and at $40^{\circ}C$. $^1H$-NMR spectroscopic analysis of enzymic reaction showed that this enzyme catalyzes intramolecular proton transfer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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