Soybean plants infected with Bean pod mottle virus (BPMV) develop acute symptoms that usually decrease in severity over time. In other plant-virus interactions, this type of symptom recovery has been associated with degradation of viral RNAs by RNA silencing, which is accompanied by the accumulation of virus-derived small interfering RNAs (siRNAs). In this study, changes in the accumulation of BPMV siRNAs were investigated in soybean plants infected with BPMV alone, or infected with both BPMV and Soybean mosaic virus (SMV) and in transgenic soybean plants expressing SMV helper component-protease (HC-Pro). In many potyviruses, HC-Pro is a potent suppressor of RNA silencing. In plants infected with BPMV alone, accumulation of siRNAs was positively correlated with symptom severity and accumulation of BPMV genomic RNAs. Plants infected with both BPMV and SMV and BPMV-infected transgenic soybean plants expressing SMV HC-Pro exhibited severe symptoms characteristic of BPMVSMV synergism, and showed enhanced accumulation of BPMV RNAs and siRNAs compared to plants infected with BPMV alone and nontransgenic plants. Likewise, SMV HC-Pro enhanced the accumulation of siRNAs produced from a silenced green fluorescent protein gene in transient expression assays, while the P19 silencing suppressor of Tomato bushy stunt virus did not. Consistent with the modes of action of HC-Pro in other systems, which have shown that HC-Pro suppresses RNA silencing by preventing the unwinding of duplex siRNAs and inhibiting siRNA methylation, these studies showed that SMV HC-Pro interfered with the activities of RNA-induced silencing complexes, but not the activities of Dicer-like enzymes in antiviral defenses.
Cell therapy applied to wound healing or tissue regeneration presents a revolutionary realm to which principles of gene engineering and delivery may be applied. One promising application is the transplantation of cells into the wounded tissue to help the tissue repair. However, when cells are transplanted from in vitro to in vivo, immune rejection occurs due to the immune response triggered by the activation of T-cell, and the transplanted cells are destroyed by the attack of activated T-cell and lose their function. Immune suppressant such as FK506 is commonly used to suppress immune rejection during transplantation. However, such kind of immune suppressants not only suppresses immune rejection in the periphery of transplanted cells but also suppresses whole immune response system against pathogenic infection. In order to solve this problem, we developed a method to protect the desired cells from immune rejection without impairing whole immune system during cell transplantation. Previously, we reported the success of constructing glomerular epithelial cells for removal of immune complex, in which complement receptor of type 1 (CR1) was over-expressed on the membrane of renal glomerular epithelial cells and could bind immune complex of DNA/anti-DNA-antibody to remove immune complex through phagocy-tosis [1]. Attempting to apply the CR1-expressing cells to cell therapy and evade immune rejection during cell transplantation, we constructed three plasmids containing genes encoding a soluble fusion protein of cytolytic T lymphocyte associated antigen-4 (CTLA4Ig) and an enhanced green fluorescent protein (EGFP). The plasmids were transfected to the above-mentioned glomerular epithelial cells to express both genes simultaneously. Using the clone cells for cell transplantation showed that mice with autoimmune disease prolonged their life significantly as compared with the control mice, and two injections of the cells at the beginning of two weeks resulted in remarkable survivability, whereas it requires half a year and 50 administrations of proteins purified from the same amount of cells to achieve the same effect.
Park, Jeong-Jae;Cha, Seung-Ju;Ko, Myung-Seok;Cho, Wha-Ja;Yoon, Won-Joon;Moon, Chang-Hoon;Do, Jeong-Wan;Kim, Sung-Bum;Hebok Song
Journal of Microbiology
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v.40
no.4
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pp.295-300
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2002
Previously, we reported induced expression of developmentally regulated CTP-binding protein 2 (DRG2) in fish cells at the late stage of rhabdovirus infection. To investigate the biological role of fish DRG2 (fDRG2), we transfected CHSE-214 cells with an expression vector containing complete fDRG2 fused to the N-terminal end of an enhanced green fluorescent protein (EGFP). Low level expression of fDRG2-EGFP did not induce morphological change or cell death. However, a high level expression of fDRG2-EGFP induced cell rounding and caused depletion of the cell population in FACS analysis. Several truncated fragments were fused to EGFP. FACS analysis was conducted to determine the presence of cells expressing high levels of the resulting chimera. While cells expressing a high level of N-terminus were detected, those expressing high levels of the C-terminal fragment 243-290 containing the G4 motif were absent in FACS analysis. Based on these observations, we propose that overexpression of fDRG2 may induce cell rounding, a representative cytopathic effect of virus-infected cells in the late stage of infection and the C-terminus of the fDRG2 is essential for this function.
$E^{rns}$ is an envelope glycoprotein of classical swine fever virus (CSFV) and has an unusual feature of RNase activity. In the present study, we demonstrate that $E^{rns}$ counteracts Newcastle disease virus (NDV)-mediated induction of IFN-$\beta$. For this purpose, $E^{rns}$ fused to the enhanced green fluorescent protein (EGFP) was transiently expressed in porcine kidney 15 (PK15) cells. In luciferase activity assay, $E^{rns}$-EGFP was found to prevent IFN-$\beta$ promoter-driven luciferase expression and block the induction of IFN-$\beta$ promoter mediated by NDV in a dose-dependent manner. Through IFN-specific semi-quantitative RT-PCR detection, obvious decrease of IFN-$\beta$ mRNA in NDV-infected PK15 cells was observed in the presence of $E^{rns}$-EGFP. In contrast, EGFP alone showed none of this block capacity. In addition, $E^{rns}$-EGFP mutations with RNase inactivation were also found to block NDV-mediated induction of IFN-$\beta$. These evidences establish a novel function for CSFV $E^{rns}$ glycoprotein in counteraction of the IFN-$\beta$ induction pathway.
DNA methyltransferases (DNMTs) are closely associated with the epigenetic change and the gene silencing through the regulation of methylation status in animal genome. But, the role of DNMTs in transgene silencing has remained unclear. So, we examined whether the knockdown of DNMT influences the reactivation of transgene expression in the transgenic quails. In this study, we investigated the expression of DNMT3a, and DNMT3b in blastoderm, quail embryonic fibroblasts (QEFs) and limited embryonic tissues such as gonad, kidney, heart and liver of E6 transgenic quails (TQ2) by RT-PCR. We further analyzed the expression of DNMT3a at different stages of whole embryos during early embryonic development by qRT-PCR. DNMT3a expression was detected in all test samples; however, it showed the highest expression in E6 whole embryo. Embryonic fibroblasts collected from TQ2 quails were treated with two DNMT3a-targeted siRNAs (siDNMT3a-51 and siDNMT3a-88) for RNA interference assay, and changes in expression were then analyzed by qRT-PCR. The siDNMT3a-51 and siDNMT3a-88 reduced 53.34% and 64.64% of DNMT3a expression in TQ2 QEFs, respectively. Subsequently the treatment of each siRNA reactivated enhanced green fluorescent protein (EGFP) expression in TQ2 (224% and 114%). Our results might provide a clue for understanding the DNA methylation mechanism responsible for transgenic animal production and stable transgene expression.
The overexpression of Phosphoprotein Enriched in Astrocytes (PEA15) gene is commonly found in human diabetic patients. The overexpression of this gene in skeletal muscle and fat tissues have been reported to cause insulin resistance, thereby impairing insulin stimulated glucose uptake. We introduced a gene of mouse PEA15 (mPEA15) and enhanced green fluorescent protein (EGFP) into fertilized one cell pig zygotes using microinjection, and produced a piglet that showed overexpression of mPEA15 in the muscle tissues and expression of EGFP in the ear tissues and hooves. RT-PCR RFLP, southern blot and FISH analysis showed that the tissues carried the transgene. Real-time RT-PCR and western blots demonstrated that PEA15 gene was overexpressed in the various tissues and muscle tissues, respectively. These fads suggest that expression vector system is normally expressed in the transgenic (TG) pigs. To use as animal diseases model for type 2 diabetes, further study is necessary to confirm whether diabetes occur in these TG pigs, especially insulin resistance.
Premature ovarian failure (POF) is a long-term adverse effect of chemotherapy treatment. However, current available treatment regimens are not optimal. Emerging evidence suggests that bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BMSCs) could restore the structure and function of injured tissues, but the homing and restorative effects of BMSCs on chemotherapy injured ovaries are still not clear. In this study, we found that granulosa cell (GC) apoptosis induced by cisplatin was reduced when BMSCs were migrated to granulosa cells (GCs) in vitro. Chemotherapy-induced POF was induced by intraperitoneal injection of cisplatin in rats. BMSCs labeled with enhanced green fluorescent protein (EGFP) were injected into the rats via the tail vein to investigate the homing and distribution of BMSCs in vivo. The number of BMSCs in the ovarian hilum and medulla was greater than in the cortex, but no BMSCs were found in the follicles and corpus lutea. In addition, the BMSCs treatment group's antral follicle count and estradiol levels increased after 30 days, compared with the POF group. Hence, our study demonstrates that intravenously delivered BMSCs can home to the ovaries, and restore its structure and function in POF model rats.
Hur, Dong Hoon;Choi, Woo Sung;Kim, Tae Yong;Lee, Sang Yup;Park, Jin Hwan;Jeong, Ki Jun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.30
no.9
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pp.1430-1435
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2020
Bacterial cellulose (BC) has outstanding physical and chemical properties, including high crystallinity, moisture retention, and tensile strength. Currently, the major producer of BC is Komagataeibacter xylinus. However, due to limited tools of expression, this host is difficult to engineer metabolically to improve BC productivity. In this study, a regulated expression system for K. xylinus with synthetic ribosome binding site (RBS) was developed and used to engineer a BC biosynthesis pathway. A synthetic RBS library was constructed using green fluorescent protein (GFP) as a reporter, and three synthetic RBSs (R4, R15, and R6) with different strengths were successfully isolated by fluorescence-activated cell sorting (FACS). Using synthetic RBS, we optimized the expression of three homologous genes responsible for BC production, pgm, galU, and ndp, and thereby greatly increased it under both static and shaking culture conditions. The final titer of BC under static and shaking conditions was 5.28 and 3.67 g/l, respectively. Our findings demonstrate that reinforced metabolic flux towards BC through quantitative gene expression represents a practical strategy for the improvement of BC productivity.
Kim, Yoon-Young;Ku, Seung-Yup;Park, Yong-Bin;Oh, Sun-Kyung;Moon, Shin-Yong;Choi, Young-Min
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.36
no.4
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pp.283-292
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2009
Objective: Human embryonic stem cells (hESCs) can proliferate indefinitely and differentiate into all kinds of cell types in vitro. Therefore, hESCs can be used as a cell source for cell-based therapy. Transduction of foreign genes to hESCs could be useful for tracing differentiation processes of hESCs and elucidation of gene function. Thus, we tried to introduce enhanced green fluorescent protein (eGFP) gene to hESCs, XX and XY cell lines in this study. Methods: Lentivirus containing eGFP was packaged in 293T cells and applied to hESCs to transduce eGFP. Expression of transduced eGFP was evaluated under the fluorescence microscope and eGFP positive population was analyzed by FACS. Expression of undifferentiation state markers such as Oct4, Nanog, SSEA4 and Tra-1-81 was examined by RT-PCR and/or immunofluorescence in eGFP-hESCs after transduction. In addition, the ability of eGFP-hESCs to form embryoid bodies (EBs) was tested. Results: eGFP was successfully transduced to hESCs by lentivirus. eGFP expression was stably maintained up to more than 40 passages. eGFP-hESCs retained expression patterns of undifferentiation state markers after transduction. Interestingly, disappearance of transduced eGFP was notably observed during spontaneous differentiation of eGFP-hESCs. Conclusion: We established eGFP expressing hESC lines using lentivirus and showed the maintenance of undifferentiation characteristics of these eGFP-hESCs. This reporter-containing hESCs could be useful for tracing the processes of differentiation of hESCs and other studies.
There are many methods to introduce exogenous DNA into embryo to produce transgenic animals. Exogenous gene can be integrated into oocyte by sperm vector. In this study, sperm was used as a vector for a transgene, which is encoding enhanced green fluorescent protein (EGFP). The objective of this study was to investigate the expression of exogenous gene in bovine embryos after injection of spermatozoa cocultured with EGFP DNA fragment. Spermatozoa were plunged into liquid nitrogen and thawed several times or shook in 0.2% Triton X-100 to remove sperm membrane followed by DTT treatment. The injected oocytes were co-cultured with vero cells in CR1aa, and expression of EGFP gene was observed under fluorescent microscope. Blastocyst formation rates of oocytes injected with sperm treated with DTT, DTT-freezing or DTT-Triton X-100 were 34.7, 39.4 and 31.9%, respectively. The rates of EGFP expression in oocytes injected with 54 ng DNA after DTT-treated, DTT-freezing and DTT-Triton X-100-treated sperm were 0, 19.1 and 13.9%. On the other hands, expression rate of oocytes injected with sperm cocultured with 13.5, 27 and 63.5 ng of EFGP DNA were 6.7, 9.0 and 5.1%, respectively. When intact sperm was mixed with 63.5 ng/${mu}ell$ EGFP DNA fragment, and then electroporated before injection, the expression rate of injected oocyte was 2%. Unexpectedly, electro-poration could not increase the expression rate. These results suggest that sperm can be used as a transgene vector, even if the efficiency was low (19.1%).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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